Este documento proporciona instrucciones detalladas para la obtención, manejo y transporte de muestras de laboratorio para análisis bacteriológicos, hematológicos, de química sanguínea y otros. Explica los procedimientos correctos para tomar muestras de hisopados, orina, heces, sangre y otros fluidos corporales para garantizar la integridad y viabilidad de las muestras para su análisis.

1. EXTRACCION Y
TRANSPORTE DE MUESTRAS
DE LABORATORIO

2. Introduccion
Una buena muestra es la base para un buen análisis y para un
resultado confiable, de ahí la importancia de los cuidados
que debemos observar en la toma y manipulación de las
muestras.
Una buena muestra debe ser representativa, no viciada,
adecuada al procedimiento a ejecutar y tener el tamaño que
permita hacer el análisis y alcanzar resultados confiables .

3. Bacteriología
 Generalidades
La muestra clínica debe ser material del sitio real de la
infección y debe recogerse con un mínimo de
contaminación a partir de tejidos, órganos o
secreciones adyacentes.

4. Obtención de muestras para
coprocultivo
 Hisopado rectal
La muestra se obtiene con un hisópo de algodón estéril, el
cual debe lubricarse previamente a su uso, introduciendolo
en el medio de transporte y luego introducirlo en el esfinter
anal. El hisopo con lamuestra se introduce hasta el fondo del
tubo que contiene el medio de transporte.
 Si la muestra es a partir de una evacuacion, la muestra debe
transportarse directamente al laboratorio.

5.  Manejo y transporte de la muestra de heces
Los tubos conteniendo la muestra, deben de
conservarse y transportarse a temperatura ambiente
deben ser identificados correctamente con el registro
del paciente e ir acompañado de su boleta
correspondiente

6. Obtencion de muestras para urocultivo
 Obtencion de la muestra de orina
Lavar los organos genitales externosco63n 5jabon y abundante
agua, secar con toalla limpia y obtener la muestra de medio chorro
de la miccion de la mañana.
En caso de niños pequeños utilizar bolsas recolectoras esteriles
adheridas al area genital.
 Transporte de la muestra
Debe ser llevada de inmediato al laboratorio, en caso de no ser
posible refrigerarla de 2-8 °C no más de 2 horas.

7. Obtencion de muestras para cultivo faringeo
 Toma de la muestra
Localizar el fondo de la garganta y en las amigdalas: areas de
enrojecimiento, inflamación , pus, úlceras y con un hisopo
esteril frote firmemente las lesiones.
Introducirlo en el medio de transporte correspondiente.
 Transporte de la muestra
Debe ser llevada inmediatamente al laboratorio con su
respectiva boleta.

8. Obtencion de la muestra de LCR
 Es realizada por un medico a partir de una punción
lumbar en condiciones asepticas.
 Transporte de la muestra
Debe ser transportada inmediatamente al laboratorio
en un tubo de vidrio esteril con tapa de rosca a
temperatura ambiente y debidamente identificado.

9. Obtencion de muestras de secreciones
 Toma de muestras
 Secreciones de piel
Escoger una lesión intacta, limpiar con algodón con
alcohol, puncionar a manera de obtener pus y con un
hisopo esteril obtener la muestra.
 Secrecion de ojos
Bajar el parpado inferior haciendo presion hacia abajo.
Frotar la conjuntiva con el hisopo con movimientos
rotatorios hacia afuera.

10. Obtencion de muestras de secreciones
Secrecion de oido
Limpiar el oido externo con hisopo esteril con
alcohol, con otro hisopo esteril introducirlo en el
canal auditivo interno, rotarlo y extraerlo.

11. Obtencion de muestras de liquidos
corporales
 Toma de muestra
como la mayoria de estos liquidos son exudados y tienen
cierta tendencia a coagularse deben tomarse en tubos de
vidrio tapon de rosca y esteriles conteniendo una mezcla
esteril de anticoagulante.
 Transporte de la muestra
Debe llevarse inmediatamente al laboratorio para su
procesamiento con su respectiva boleta.

12. Obtencion de muestras para hemocultivo
 Toma de muestra
Desinfectar el sitio de venopuncion con alcohol etilico al 70% y luego
con una preparacion de yodo limpiar haciendo circulos, espera a que el
yodo seque y realice la puncion sin palpar de nuevo el sitio elegido.
Colectar la cantidad de sangre que indica el frasco en el cual se va a
depositar.
 Transporte de la muestra
Debe llevarse inmediatamente al laboratorio con su respectiva boleta.

13. Obtencion de muestra para baciloscopia
 El envase debe ser rigido para evitar que se aplaste durante
el traslado, boca ancha. Debe explicarse al paciente la
importancia de tomar una buena muestra de esputo.
 Transporte de la muestra
Deben transportarse al laboratorio cuanto antes, despues de
su obtencion, de lo contrario deben refrigerarse o mantener
en un lugar lo mas fresco posible.

14. Toma de muestras para cultivo BAAR
 Esputo
Debe recolectarse en el mismo recipiente de baciloscopia y
enviarse inmediatamente al laboratorio.
 Liquidos corporales
Se recomienda remitirlas para su cultivo
 Orina
Se recomienda la orina de la primera miccion de la mañana, una
muestra en tres dias consecutivos.

15. Toma de muestras para cultivo BAAR
 Lavado gastrico
Se recomienda tomar tres muestras en dias
consecutivos.
 LCR
Esta muestra debe enviarse en frasco de vidrio tapon de
rosca, esteril para sembrarla de inmediato y sin previo
tratamiento porque son muy pobres en micobacterias.

16. Toma de muestras para cultivo BAAR
 Biopsias
El envase debe ser esteril y no debe agregarse
preservantes para mantener la viabilidad del bacilo.
 Transporte de las muestras
Si las muestras para cultivo no se pueden enviar
inmediatamente al laboratorio pueden mantenerse
durante tres a cuatro dias, en refrigeracion, entre 4-8!C.

17. Transporte de las muestras
 Es necesario que las muestras sean transportadas
empleando la cadena de frio en un termo con
refrigerantes.
Toda muestra enviada para cultivo debe ir acompañada
de su boleta debidamente llena y con los resultados de
las ultimas baciloscopias realizadas a ese paciente e
indicando el motivo por el cual se envia el cultivo.

18. Hematologia
 Generalidades
En esta area se realizan observaciones y mediciones de
componentes o sistemas relacionados con la sangre y
organos hematopoyeticos.
En esta area es necesario mantener una adecuada
proporcion entre el anticoagulante y el volumen de
sangre extraida.

19. Toma de muestras para Hg, plaquetas, FSP y
reticulocituos
 Debe tomarse la cantidad de muestra indicada en el
frasco tapon morado con anticoagulante EDTA,
mezclarse inmediatamente para evitar que se coagule.
 Rotular la muestra con el registro del paciente.
 Llevar inmediatamente al laboratorio con su respectiva
boleta.

20. Toma de muestra para TP, TTP y Fibrinogeno
 Debe tomarse la cantidad de muestra indicada en el
tubo tapon celeste con anticoagulante citrato de sodio
de 3.2-3.8%.
 Agregar inmediatamente al frasco y mezclar por
inversion al menos 15 veces.
 Llevar al laboratorio inmediatamente con su respectiva
boleta.

21. Toma de muestra para eritrosedimentacion
 Tomar la cantidad de sangre indicada en el tubo con
anticoagulante citrato de sodio al 3.2 %.
 Mezclar por inversion al menos 15 veces
 Identificar la muestra correctamente
 Llevar al laboratorio inmediatamente con su respectiva
boleta.

22. Toma de muestra para celulas L.E
 Tomar en un tubo tapon rojo 10cc de sangre.
 Identificar la muestra
 Llevar inmediatamente al laboratorio con su
respectiva boleta.

23. Toma de muestra para Concentrado de
Strout
 Tomar 5cc de sangre en tubo tapon rojo
 Identificar la muestra correctamente
 Llevar inmediatamente al laboratorio con su
respectiva boleta

24. Quimica sanguinea y Gasometria
 Generalidades

25. Toma de muestras para quimica sanguinea
 Tomar de 3-5 cc de sangre y depositarlos en tubo tapon
rojo por las paredes del tubo.
 Identificar correctamente la muestra
 Llevar inmediatamente al laboratorio con su respectiva
boleta.
 Para Hb. Glicosilada tomar muestra en tubo tapon
morado, identificarlo y llevarlo al laboratorio.

26. Toma de muestra para gases arteriales
 Realizada por el personal medico
 Debe ser transportada estrictamente en cadena de frio
 En la boleta debe especificarse el FIO2

27. Toma de muestras para inmunologia y
pruebas especiales
 Tomar 3-5 cc de sangre y depositarla en tubo tapon
rojo.
 Identificar correctamente la muestra
 Llevar inmediatamente al laboratorio con su respectiva
boleta