El documento proporciona directrices sobre la toma, conservación y envío de muestras biológicas de animales, así como prácticas de bioseguridad y clasificación de riesgo. Se detallan los métodos específicos para el manejo de diversas muestras como sangre, orina y tejidos, además de las consideraciones para condiciones clínicas especiales. También se discuten las fases analíticas y la canalización de resultados hacia diferentes entidades y profesionales.

1. Universidad de CuencaFacultad de Ciencias Agropecuarias Escuela de Medicina Veterinaria y ZootecniaBacteriología y Micología

2. Toma, conservacióny envío de muestras de animales

3. Bioseguridad

4. Recipientes aprobados para desperdicios de riesgo biológico

8. RELACIÓN DE LOS GRUPOS DE RIESGO CON NIVELES DE BIOSEGURIDAD TIPO DE LABORATORIO, PRÁCTICAS Y EQUIPOS

14. Examen (laboratorio)

15. FASES EN LA REALIZACION Fase Pre analítica

16. Fase Analítica

17. Fase Post analíticaFASE PRE-ANALITICA Evaluación del paciente o especímenes

18. Solicitud de pruebas.

19. Selección del especimen: recolección, conservación, empaque, envío, transporte y recepción de muestras en el laboratorioFASE ANALÍTICARevisión y ejecución de métodos y técnicas de laboratorio e interpretación de los resultadosFASE POST- ANALÍTICAIntroducción de resultados, mediante diferentes formas de producción científica: informes, ensayos, casos clínicos, monografía, tesina, tesis, etc.

20. Canalización de los resultados a diferentes instituciones, empresas, como también a profesionales con trabajo independiente.Normas generalesIdentificación de las muestrasConsideraciones generales

21. HistoriaclínicaVestimentaProcedimientosInstrumental

23. Empaque

24. Hielo: seco, naturalConservaciónGel refrigeranteDoble cajaExterna e interna

35. AMIESPara coprocultivoPara bacterias anaerobiasMEDIOS DE TRANSPORTECarbón activado y sin carbón activadoCARY BLAIRFORMOL AL 10% AMORTIGUADOTIOGLICOLATO SÓDICOPara histopatología

37. MEDIOS DE TRANSPORTEHisopo con muestra (medio Stuart)

38. MEDIOS DE TRANSPORTE

40. Toma de muestras con hisopos cloacales para ver la prevalencia de Campylobacter en granjas de broilers

42. RECIPIENTES SEGÚN TIPO DE MUESTRAS PARA CULTIVOSangre: en botella de hemocultivo/ en tubo estéril con anticoagulanteOtros (LCR, articulares, pleurales, etc): en tubo estéril/ en medio de cultivo (BHI caldo)/ en jeringa estéril con aguja sellada (caucho o corcho).Orina: frasco estéril en refrigeraciónLeche: tubo estéril en refrigeraciónTejidos y órganos: frasco estéril en refrigeración/ solución estéril de glicerina al 50% en solución salina.Coprocultivos: hisopo (cotonete) de heces en recipiente (tubo) con medio de CARY BLAIR

49. Bolsas de Riesgo Biológico

50. Envío

56. MUESTRAS PARA CULTIVO BACTERIOLÓGICOTejidos y órganosHisoposHecesLecheOrinaCerebro

57. ENFERMEDADES QUE REQUIEREN CONSIDERACIONES ESPECIALESAntrax (carbón bacteridiano)Pierna negra (carbón sintomático)Edema malignoMetritis equina contagiosaEnterotoxemia clostridialParatuberculosis (Enfermedad de Johne)MicoplasmosisDisentería porcinaCampilobacteriosisBrucelosis

58. Micosis superficialesCultivos micóticosMicosis profundasMuestras de alimentos

59. HEMOCULTIVOS

60. CULTIVOS ANAEROBIOSCONDICIONES CLÍNICAS QUE SUGIEREN UNA INFECCIÓN POR ANAEROBIOSExudados mal olientes.

61. Infecciones profundas causadas por la penetración de una mucosa o piel.

62. Tejido necrótico, gangrena o formación de una pseudomembrana.

63. Gas en el tejido o exudado.

64. Endocarditis con hemocultivo negativo.

65. Infección asociada con una condición maligna u otra enfermedad que produce destrucción de tejido y afecta la circulación.

66. Heridas causadas por mordedura.

67. Abscesos o infecciones que no responden a terapia con gentamicina u otros aminoglucósidos.

68. Pleuritis séptica, neumonía por aspiración.

69. Fracturas asociadas con trauma grave de tejidos.

70. Infecciones asociadas con cirugías del sistema gastrointestinal.

71. Procesos sépticos como el piometra.MUESTRAS ADECUADAS PARA CULTIVO ANAEROBIOLíquidos corporales normalmente estériles (pleural, peritoneal, LCR, bilis, líquido articular).

72. Muestras quirúrgicas de lugares normalmente estériles.

73. Muestras de abscesos y aspirados de heridas profundas.

74. Aspirados trans-traqueales.

75. Sangre recolectada apropiadamente.RECIPIENTES PARA ANAEROBIOSHisopos con atmósfera anaerobiaViales y tubos con atmósfera anaerobia y base de agar con indicador para transporte de líquidos o hisoposTubos con atmósfera anaerobia y medio de transporte prerreducido para líquidos e hisopos

76. MUESTRAS NO ADECUADAS PARA CULTIVO ANAEROBIOSaliva

77. Muestras cervicales o vaginales.

78. Heces.

79. Exudados traqueales, naso traqueales y faríngeos.

80. Efluentes de ileostomía y colestomía.

81. Piel y exudados de heridas superficiales.

82. Muestras de orina excepto las obtenidas por punción.ANÁLISIS DE AGUAMUESTRA DEAGUAEvitando al máximo la contaminaciónFrascos estériles de boca ancha

83. ANÁLISIS DE AGUASi el tiempo de traslado de la muestra de agua al laboratorio excede más de seishoras, mantener a tº entre 6-10 ºC;Esto evita valores falsos

84. TOMAY ENVÍO DE MUESTRAS DE LECHE AL LABORATORIOPara estudio bacteriológico: Lavar, enjuagar y secar la ubre.

85. Con una solución de alcohol al 70% desinfectarse las manos.

86. Con la misma solución y utilizando algodón desinfectar los pezones. Dejar secar durante dos minutos.

87. Ordeñar recogiendo 3 mL aproximadamente, en un recipiente estéril sin tocar los bordes, tomando proporcionalmente de todos los cuartos.

88. En casos de que la infección esté plenamente localizada en uno de los cuartos, o se requiera localizar el cuarto afectado, siguiendo las mismas recomendaciones, tomar 2 a 3 mL de leche del cuarto afectado, o de cada uno por separado.

89. Identificar las muestras correctamente y mantenerlas refrigeradas hasta su llegada al laboratorio.TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE HERIDAS ABIERTAS Y EXUDADOS AL LABORATORIO

90. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE ABSCESOS, EDEMAS Y LÍQUIDO ARTICULAR AL LABORATORIO

91. TOMA Y ENVÍO DE ÓRGANOS Y TEJIDOS AL LABORATORIO

92. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE EXUDADO PREPUCIAL AL LABORATORIO

93. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE SEMEN AL LABORATORIO

94. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE FETO Y PLACENTA AL LABORATORIO

95. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE SECRECIÓN VAGINAL AL LABORATORIO

96. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE HECES FECALES AL LABORATORIO

97. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE TEJIDOS (HISTOPATOLOGÍA) AL LABORATORIO

98. TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE ORINA AL LABORATORIO

99. TOMA Y ENVÍO DE SANGRE AL LABORATORIOConsideraciones generales para la toma de muestras de sangre.

100. Para exámenes hematológicos.

101. Frotis sanguíneo.

102. Para estudio químico o serológico

103. Para estudio bacteriológico

104. Para pruebas de coagulación

106. Sangre

114. Cerdos

117. Método para obtener sangre de la vena cava superior de un cerdo

118. VenaMarginal

119. Bovinos

120. Yugular

122. Coccígea

124. Ovinos

125. Yugular

126. 231

128. 45

130. 6

131. Equinos

132. Yugular

134. Perros

135. Yugular

136. Método para obtener sangre de la vena yugular de un perro

138. Cefálica

139. Método para obtener sangre de la vena cefálica de un perro

140. Método para obtener sangre de la vena cefálica de un perro

141. Gatos

142. Femoral

143. Método para obtener sangre de la vena femoral de un gato

144. Conejos

145. Auricular

147. Aves

148. Yugular

151. Radial