Micoplasmosis aviar La Micoplasmosis aviar es una enfermedad que primeramente involucra al aparato respiratorio, seguido del sistema reproductivo y luego el articular. La micoplasmosis es causada por varias especies de bacterias patógenas del género de Mycoplasma (Gonzales, 2016).

2. Integrantes
Yessica Ramírez Amaya - 710928
Astrid Jimena Ortiz Galvis - 710955
Astrid Dayana Mora Angarita – 710925
Docente
Miriam Meza Quintero
Universidad Francisco de Paula Santander Ocaña
Facultad de Ciencias Agrarias y del Ambiente
Zootecnia
Ocaña, Colombia Abril, 2022
MICOPLASMOSIS AVIAR

3. La Micoplasmosis aviar es una enfermedad que
primeramente involucra al aparato respiratorio,
seguido del sistema reproductivo y luego el articular.
La micoplasmosis es causada por varias especies de
bacterias patógenas del género de Mycoplasma
(Gonzales, 2016).
Micoplasmosis aviar
Género: Mycoplasma
Familia: gallisepticum
Fuente: KEPRO (2022)

4. • Enfermedad Respiratoria Crónica. C.R.D. E.R.C.
2. Sinónimos

5. 3. Importancia Económica
Las cepas de MS con tropismo en el oviducto en las
ponedoras comerciales. En los lotes infectados con
estas cepas de MS se observa un mayor número de
huevos rotos y rajados (Sitio Avícola 2020).
Efecto en la Producción de Huevo Efecto en la Calidad de la Cáscara del Huevo
Si el lote está expuesto a MS durante el
período de crecimiento, generalmente hay
poco efecto en la producción de huevo (Sitio
Avícola 2020).
Fuente: Freejpg (s.f)
Fuente: Nutricionanimal (2022)

6. 4.Reseña Histórica
1943
El término enfermedad respiratoria crónica se mencionó por primera vez en el título de un
informe científico. La publicación presentaba una enfermedad en pollos con signos
respiratorios y baja tasa de diseminación.
Se estableció que la sinusitis infecciosa en pavos y la enfermedad respiratoria crónica en
pollos eran causadas por un microorganismo parecido al agente de la pleuroneumonía
(PPLO, Mycoplasma spp.)
1988
1950
Los episodios más importantes en la historia de las infecciones por Mycoplasma
gallisepticum fueron el establecimiento de la función de los patógenos secundarios, como
E. coli y algunos virus
Dinev , (2015)

7. 4.Especies Susceptibles
Han demostrado su patogenicidad en pollos, pavos, faisanes, patos, gansos,
perdices, pavos reales y codornices y han sido aislados de patos, gansos, loros
y flamencos (Gonzales, 2016).
Fuente: Mundo Pecuario (2022)
Fuente: El sitio avícola (2021)
Fuente: Dinev (s.f)
Fuente: Diagnóstico Veterinario (s.f)

8. 6. Incidencia Y Distribución
La incidencia de la infección por este microorganismo
está favorecida por la intensificación de la producción
actual.
La existencia de áreas geográficas con poblaciones avícolas muy
densas hace el control de M. gallisepticum muy difícil. Además,
el auge de las granjas de edades múltiples trae como
consecuencia que una vez que ocurra la infección por este
microorganismo en las granjas (Cayoja 2020). Fuente: Zoom.me (2021)
Fuente: Magnet.xataka (2019)

9. 7. Etiología
Los micoplasmas son su tamaño 0.3 a 0.8 μm y
la carencia de pared celular que los clasifica
como organismos procariotes (Robit, 2007).
Fuente: Fenavi (2016)
Fuente: Fenavi (2016)

10. 8. Periodo de incubación
Período de incubación Las aves de corral
infectadas por medios experimentales
desarrollan los síntomas después de 6 a 21
días. Las aves infectadas pueden ser
asintomáticas durante varios días o meses
hasta que sufren estrés (Robit, 2007).
Fuente: Avicolatoscana, (2019)
Fuente: Olcese, (2009)
Fuente: Mundo Pecuario (2022)

11. 9. Transmisión
Vertical
La transmisión vertical probablemente se
inicia por el contacto del ovario con sacos
aéreos infectados o es posterior a bacteriemia.
Es posible que una situación similar se
presente con los testículos de los machos
(FENAVI, 2016).
Horizontal
En huevos fértiles contaminados con
MG se presenta baja en la eclosión
(FENAVI, 2016).
Los pollitos de un día
infectados van a la granja
donde se inicia la transmisión
horizontal (FENAVI, 2016).
Fuente: Fenavi (2016)
Fuente: Fenavi (2016)

12. 10. Síntomas
En pollos de engorde y pollitas (4-8
semanas):
• Signos respiratorios más pronunciados que en adultos
• Estertores
• Chasqueo de pico
• Lagrimeo (abundantes exudados oculares), como consecuencia de
conjuntivitis severa
• Disminución en el consumo de alimento.
• Crecimiento retardado.
• Mortalidad variable, puede ser alta si se tiene un mal manejo de las
aves (FENAVI, 2016).
Pollo de engorde
Fuente: Fenavi (2016)

13. • Estertores
• Chasqueo de pico
• Lagrimeo (abundantes exudados oculares), como
consecuencia de conjuntivitis severa
• Disminución en el consumo de alimento.
• Caída en la producción de huevos, la producción permanece
baja después del problema respiratorio.
• Baja mortalidad.
• MS causa anormalidad en la calidad externa del huevo,
caracterizada por acumulación de grumos en la cáscara y
cambio de coloración en el ápice (FENAVI, 2016).
Ponedoras
Fuente: Fenavi (2016)
Fuente: Fenavi (2016)

14. 11. Lesiones
Entre las lesiones causadas por MG se observa
marcado engrosamiento de la membrana mucosa de
los tejidos afectados, ya sea por o con infiltración
de células mononucleares e hiperplasia de las
glándulas mucosas (Marroquin, 2005).
Lesiones microscópicas
Fuente: Fenavi (2016)
Fuente: Fenavi (2016)

15. En las primeras etapas de sinovitis infecciosa, las aves presentan
exudado gris a cremoso que afecta a las membranas sinoviales de
las cubiertas tendinosas, articulaciones y bolsa del esternón.
También se ha encontrado hepatoesplenomegalia. Los riñones
presentan inflamación, además de una coloración pálida, en
ocasiones de aspecto moteado (Marroquin, 2005).
Lesiones macroscópicas
Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Valencia (2017)
Fuente: Valencia (2017)

16. 12. Diagnostico
• Bronquitis infecciosa,
• Enfermedad de Newcastle
• Gripe aviar.
• También se deben descartar las infecciones por
Hemophilus paragallinarum, Pasteurella multocida y
Mycoplasma synoviae (FENAVI, 2016).
Diagnostico diferencial
Fuente: Faneite (2020)
Fuente: Soriano (2020)

17. Las infecciones por M. gallisepticum se pueden diagnosticar cultivando al
agente en medios para micoplasma. Los análisis bioquímicos pueden resultar
útiles en la identificación preliminar, pero la identificación definitiva se
realiza por IFA (inmunofluorescencia indirecta), coloración de
inmunoperoxidasa, prueba de inhibición del crecimiento, inhibición del
metabolismo o por PCR (FENAVI, 2016).
Análisis de Laboratorio
Fuente: Fenavi (2016)
Fuente: Fenavi (2016)
Fuente: De la Torre (2021)

18. 13. Control
Planes de
vacunación
Seguimiento regular
de parámetros
productivos
Análisis frecuente de
los datos de la planta
de incubación
Bioseguridad
Fuente: AVISCOLATA (2018)
Fuente: Avicolatoscana, (2019)
(FENAVI, 2016).

19. 14. Tratamiento
Evitar el uso de antibióticos que actúen en la pared
celular, los micoplasmas no poseen pared celular.
Tilosina, Tiamulina y Tilmicosina (FENAVI, 2016).
Las infecciones por micoplasma pueden
ser tratadas con antibióticos para evitar
infecciones secundarias y aliviar signos
clínicos (FENAVI, 2016).
Fuente: CC Laboratorios (2020) Fuente: Mundo Pecuario (2022)

20. 15. Bibliografía
Gonzales, G. (2016). Ficha técnica - Micoplasmosis. Obtenido de:
https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/f_tecnica_micoplasmosis_v2-2016.pdf
Sitio Avícola (2020). Micoplasma Sinoviae (MS). Obtenido de:
https://www.elsitioavicola.com/articles/3000/micoplasma-sinoviae-ms/
Dinev, I. (2015). LA MICOPLASMOSIS AVIAR. Sitio Argentino de Producción Animal. Obtenido de:
https://www.produccion-animal.com.ar/produccion_aves/enfermedades_aves/55-micoplasmosis.pdf
CAYOJA TORDOYA, A. S. (2020). VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA DE MYCOPLASMOSIS AVIAR EN
REPRODUCTORAS DE UN DÍA DE EDAD IMPORTADOS EN EL DEPARTAMENTO DE COCHABAMBA.
Obtendo de:
http://ddigital.umss.edu.bo:8080/jspui/bitstream/123456789/20857/1/CAYOJA%20TORDOYA%20ANGELICA%20
SUSANA.pdf

21. Robit, A. (2007). Micoplasmosis aviar (Mycoplasma gallisepticum). Obtenido de:
https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/micoplasmosis_aviar.pdf
FENAVI (2016). Cartilla de complejo respiratorio Aviar - Mycoplasma.Obtenido de:
https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/COMPLEJO-RESPIRATORIO-AVIAR-
MYCOPLASMA.pdf
Marroquin, G. (2005). IMPLEMENTACIÓN DEL DIAGNÓSTICO DE Mycoplasma galiisepticum
Y Mycoplasma synoviae MEDIANTE PCR-RFLP EN AVES DE PRODUCCIÓN. Obtenido de:
http://riacti.uanl.mx/72/1/1080068127.PDF