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PARQUE ZOOLOGICO BENITO JUAREZ
SEMINARIO DE FAUNA SILVESTRE 48 ANIVERSARIO ZOO MORELIA
QFB Rufino Osorio Márquez
Área de Diagnostico Clínico PZBJ
Contacto: omrock182@gmail.com
octubre 2018
TALLER:TECNICAS
PARA EL ESTUDIO
COPROLOGICO Y
HEMATOLOGICO
EN FAUNA
SILVESTRE
TALLER:TECNICAS PARA EL ESTUDIO COPROLOGICO Y HEMATOLOGICO EN FAUNA
SILVESTRE
• Objetivos generales
. Conocer la relación entre la fase preanalítica y el correcto diagnostico
clínico.
.-Tener un acercamiento a los procesos analiticos realizados a animales
silvestres en cautiverio.
.- Realizar análisis clínicos básicos e animales en general.
.- Identificar algunas estructuras parasitarias, cristales y fibras.
Objetivo: Observar el funcionamiento adecuado del sistema digestivo
de los ejemplares y en su caso identificar procesos patológicos en
desarrollo, correlacionándolo con la historia clínica.
Examen Coprológico
• Antecedentes epidemiológicos: procedencia, hábitos, numero de
habitantes por albergue, tipo y condiciones de albergue, calidad del
agua, procesamiento de los alimentos, suelo y eliminación de
excretas.
• Antecedentes clínicos: signología, datos hematológicos, edad, sexo,
estado nutricional, estado inmunológico.
Generalidades del examen Coprológico:
• Frasco estéril para muestras clínicas, bien
tapado e identificado.
• Si se colecta con guante este debe ser de vinil (cuando se toma
directamente del recto).
• Las heces deben de ser de los últimos 30 min.
• Si se colecta del suelo debe de mencionarse, y tomar la porción
central, para evitar falsos positivos por contaminación.
Recolección de la muestra
• Cantidad: 10 gramos o del tamaño de una nuez.
• Para un diagnóstico más objetivo, se recomienda
realizar las muestras seriadas.
Observación en fresco con tinción de
lugol.
Técnica de Flotación con ZnS04 o reactivo
de Sheater.
Técnica de concentración por
centrifugación, (sedimentación).
Observación en fresco con
NaCl 0.9 %
Técnica de concentración por flotación
(Faust)
Organoléptico
Tinción con tinta china.
Coprológico
Organoléptico:
a).- Consistencia.
b).- Color
c).- Olor
d).- Presencia de sangre y moco.
e).- Presencia de larvas.
f).- Restos alimenticios.
Coprológico
2.- Observación en fresco con NaCl al 0.9 %.
Coprológico.
Homogenizar la muestra
con ayuda de un aplicador de
madera .
Colocar una gota de solución
fisiológica en un portaobjetos y
aplicar una cantidad suficiente de
muestra
Homogenizar , colocar
cubreobjetos y observar al
microscopio, de seco débil a seco
fuerte.
3.-Observacion con tinción de lugol.
Coprobiológico
Colocar cantidad suficiente de
muestra en portaobjetos con
ayuda de aplicador de
madera.
Agregar una gota de lugol a la
muestra y mezclar.
Colocar cubreobjetos y
observar al microscopio.
4.-Tecnica de flotación con ZnS04.
• v
Coprobiológico
Colocar muestra en tubo de ensaye y
agregar solución de ZnSO4 hasta
formar un menisco inverso.
Colocar en el menisco un
cubreobjetos , evitando presencia
de burbujas, esperar 10 min.
Colocar una gota de lugol a un
portaobjetos y sobreponer el
cubreobjetos utilizado en la
flotación. Observar al
microscopio.
5.-Tecnica de concentración por centrifugación.
Coprobiológico
Colocar muestra en un tubo de
ensaye y agregar sol NaCl 0.9% ,
centrifugar a 1500 rpm de 3-5 min
Desechar el sobrenadante y colocar
en un cubreobjetos la suspensión
obtenida, mezclarlo con una gota
de lugol.
Observar al microscopio y reportar.
6.- Técnica de concentración por sedimentación
Coprológico
Homogenizar 10 gr de
muestra con solución
fisiológica y tamizar con
ayuda de gasas.
Colocar la muestra en un
tubo de ensaye y
centrifugar a 1500 rpm
durante 3-5min.
Desechar sobrenadante
de ser necesario, volver a
centrifugar, aplicar técnica
de flotación con ZnSO4 y
observar
Sospecha de Criptosporidiasis
Tinción con tinta china
Coproparasitoscópico
• Fibras vegetales semidigeridas
Algunos hallazgos
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Negro •Hemorragia digestiva alta (esófago,
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Rojo •Hemorragia digestiva baja
Marrón oscuro Dieta rica en carnes
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Amarillo pálido, blanco, gris •Obstrucción del conducto biliar
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Pútrido fétido Suele ser un olor amoniacal.
Ácido penetrante El desarrollo de flora que
degrada carbohidratos y
rompe el equilibrio de la flora
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Presencia de sustrato La muestra viene impregnada con algunos residuos propios del
albergue . No es de importancia clínica.
Presencia de colágeno La muestra contiene pelo, ya sea del propio ejemplar o de sus
presas. No es de importancia clínica.
Presencia de uratos Propios del proceso metabólico en aves y reptiles. No es de
importancia clínica en estos ejemplares.
Presencia de sangre Es indicativo de hemorragia del tubo digestivo bajo, debido a
que no ha sido digerida. Las posibles causas son disentería
amebiana, fisura anal, obstrucción intestinal, infecciones
baterianas, cáncer, cirrosis hepática, pólipos colorrectales,
uncinariasis, prolapso rectal, hemorroides.
Presencia de moco Es posible indicativo de inflamación del intestino, úlcera e
infección por Shigella
Parásitos adultos Depende de la especie del parásito ya que algunos solo son
visibles microscopicamente
Informe
• Por campo
EN UN OBJETIVO DE 40X
+ ESCASO DE 1 A 5
++ MODERADO DE 6 A 9
+++ ABUNDANTE > 10
Bacterias
Su hallazgo es significativo dependiendo de la cantidad que logremos
observar y además la presencia de leucocitos y de alimento
semidigerido.
• ⇧Bacterias+leucocitos: posible infección bacteriana.
• ⇩Bacterias+alimento semidigerido: problemas de digestibilidad.
Hongos y levaduras
• Hongos: No es común encontrarlos
Conidioforos: No poseen gran importancia clínica, pero pueden
provocar alergias.
Hifas: Común encontrarlos en aves y reptiles . Son de importancia
clínica Aspergillus spp. y Candida spp.
• Levaduras: Puede ser de la flora normal.
No tienen valor diagnóstico, a menos que su cantidad se encuentre
aumentada.
Hemoglobina
• No es común encontrarla ya que se presenta en casos de hemorragias
digestivas altas.
• Cuando la observamos en microscopio es necesario realizar una
prueba de confirmación: sangre oculta en heces (no se realiza en el
ADC).
•Eritrocitos:Indican una hemorragia del tracto digestivo bajo.
• Generalmente se manifiesta como sangre evidente en el examen
macroscópico.
Cristales
• Se forman debido a la dieta, ya que algunos están presentes en los
tejidos de frutas y verduras, y se excretan en las heces fecales, y
además debido al pH.
• Algunos son comunes (en poca cantidad) en la orina y/o heces,
mientras que algunos otros son indicativo de un proceso patológico.
Cristales
• Patologías hepáticas: Leucina y tirosina
• Patologías renales: Fosfatos, cistina, carbonatos, oxalatos.
• Charcot- Leyden: Producidos tras la degranulación de los eosinofilos.
Por lo que su presencia nos indica infección parasitaria o Alergia.
Leucocitos
• Se observan, sobre todo neutrófilos en colitis ulcerosa y disentería
bacteriana. Su observación es prueba preliminar para sospechar de
infección bacteriana por Salmonella, Shigella, Campylobacter, Yersinia
y Escherichia coli enteroinvasiva.
• Bacterias que causan diarrea por producción de toxinas como
Staphylococcus aureus, especies de Vibrio, virus y parásitos no
reclutan leucocitos fecales.
Almidón
• Proviene de la dieta, y de acuerdo a la coloración que
toma con Lugol, se considera digerido (acrodextrina,
amarillo), parcialmente digerido (eritrodextrina, rojo)
y sin digerir (morado o negro).
• La presencia de almidón puede indicar deficiencia de
amilasa causada por una insuficiencia pancreática
exocrina.
Grasa
• Los lípidos al examen microscópico incluyen grasas neutras
(triglicéridos), sales de ácidos grasos (jabones), ácidos grasos y
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• «La alegría de ver y entender el mundo es el mas perfecto don de la
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  • 1. PARQUE ZOOLOGICO BENITO JUAREZ SEMINARIO DE FAUNA SILVESTRE 48 ANIVERSARIO ZOO MORELIA QFB Rufino Osorio Márquez Área de Diagnostico Clínico PZBJ Contacto: omrock182@gmail.com octubre 2018 TALLER:TECNICAS PARA EL ESTUDIO COPROLOGICO Y HEMATOLOGICO EN FAUNA SILVESTRE
  • 2. TALLER:TECNICAS PARA EL ESTUDIO COPROLOGICO Y HEMATOLOGICO EN FAUNA SILVESTRE • Objetivos generales . Conocer la relación entre la fase preanalítica y el correcto diagnostico clínico. .-Tener un acercamiento a los procesos analiticos realizados a animales silvestres en cautiverio. .- Realizar análisis clínicos básicos e animales en general. .- Identificar algunas estructuras parasitarias, cristales y fibras.
  • 3. Objetivo: Observar el funcionamiento adecuado del sistema digestivo de los ejemplares y en su caso identificar procesos patológicos en desarrollo, correlacionándolo con la historia clínica. Examen Coprológico
  • 4. • Antecedentes epidemiológicos: procedencia, hábitos, numero de habitantes por albergue, tipo y condiciones de albergue, calidad del agua, procesamiento de los alimentos, suelo y eliminación de excretas. • Antecedentes clínicos: signología, datos hematológicos, edad, sexo, estado nutricional, estado inmunológico. Generalidades del examen Coprológico:
  • 5. • Frasco estéril para muestras clínicas, bien tapado e identificado. • Si se colecta con guante este debe ser de vinil (cuando se toma directamente del recto). • Las heces deben de ser de los últimos 30 min. • Si se colecta del suelo debe de mencionarse, y tomar la porción central, para evitar falsos positivos por contaminación. Recolección de la muestra
  • 6. • Cantidad: 10 gramos o del tamaño de una nuez. • Para un diagnóstico más objetivo, se recomienda realizar las muestras seriadas.
  • 7. Observación en fresco con tinción de lugol. Técnica de Flotación con ZnS04 o reactivo de Sheater. Técnica de concentración por centrifugación, (sedimentación). Observación en fresco con NaCl 0.9 % Técnica de concentración por flotación (Faust) Organoléptico Tinción con tinta china. Coprológico
  • 8. Organoléptico: a).- Consistencia. b).- Color c).- Olor d).- Presencia de sangre y moco. e).- Presencia de larvas. f).- Restos alimenticios. Coprológico
  • 9. 2.- Observación en fresco con NaCl al 0.9 %. Coprológico. Homogenizar la muestra con ayuda de un aplicador de madera . Colocar una gota de solución fisiológica en un portaobjetos y aplicar una cantidad suficiente de muestra Homogenizar , colocar cubreobjetos y observar al microscopio, de seco débil a seco fuerte.
  • 10. 3.-Observacion con tinción de lugol. Coprobiológico Colocar cantidad suficiente de muestra en portaobjetos con ayuda de aplicador de madera. Agregar una gota de lugol a la muestra y mezclar. Colocar cubreobjetos y observar al microscopio.
  • 11. 4.-Tecnica de flotación con ZnS04. • v Coprobiológico Colocar muestra en tubo de ensaye y agregar solución de ZnSO4 hasta formar un menisco inverso. Colocar en el menisco un cubreobjetos , evitando presencia de burbujas, esperar 10 min. Colocar una gota de lugol a un portaobjetos y sobreponer el cubreobjetos utilizado en la flotación. Observar al microscopio.
  • 12. 5.-Tecnica de concentración por centrifugación. Coprobiológico Colocar muestra en un tubo de ensaye y agregar sol NaCl 0.9% , centrifugar a 1500 rpm de 3-5 min Desechar el sobrenadante y colocar en un cubreobjetos la suspensión obtenida, mezclarlo con una gota de lugol. Observar al microscopio y reportar.
  • 13. 6.- Técnica de concentración por sedimentación Coprológico Homogenizar 10 gr de muestra con solución fisiológica y tamizar con ayuda de gasas. Colocar la muestra en un tubo de ensaye y centrifugar a 1500 rpm durante 3-5min. Desechar sobrenadante de ser necesario, volver a centrifugar, aplicar técnica de flotación con ZnSO4 y observar
  • 16. • Fibras vegetales semidigeridas Algunos hallazgos
  • 22. Cristales de oxalato de calcio Cristales de Charcot - Leyden
  • 28. • Cyclospora spp Subclase coccidia: Isospora belli Eimeria spp
  • 29. • Hymenolepis spp. Céstodos Taenia spp Cápsula ovígera Dipillidium spp
  • 31. • Huevos de Ascaridos
  • 32. Gnatosthoma spp, Enterobius spp, Oxiuris spp
  • 35. Interpretación Organoleptico (macroscopico) Color Causa posible Negro •Hemorragia digestiva alta (esófago, estomago o duodeno) •Tratamiento con hierro •Carbón vegetal •Bismuto (antiácidos) Rojo •Hemorragia digestiva baja Marrón oscuro Dieta rica en carnes Verde •Biliverdina •Dieta rica en verduras Amarillo pálido, blanco, gris •Obstrucción del conducto biliar •Ingesta de sulfato de bario
  • 36. Olor Posibles causas Pútrido fétido Suele ser un olor amoniacal. Ácido penetrante El desarrollo de flora que degrada carbohidratos y rompe el equilibrio de la flora intestinal, produce diarrea ácida con gases. Nauseabundo Se presenta en procesos de descomposición Consistencia Posibles hallazgos Heces sólidas Quistes, ooquistes y huevos Heces semisólidas Huevos, trofozoitos, larvas, quistes, ooquiste. Heces líquidas Trofozoitos, huevos.
  • 37. Presencia de sustrato La muestra viene impregnada con algunos residuos propios del albergue . No es de importancia clínica. Presencia de colágeno La muestra contiene pelo, ya sea del propio ejemplar o de sus presas. No es de importancia clínica. Presencia de uratos Propios del proceso metabólico en aves y reptiles. No es de importancia clínica en estos ejemplares. Presencia de sangre Es indicativo de hemorragia del tubo digestivo bajo, debido a que no ha sido digerida. Las posibles causas son disentería amebiana, fisura anal, obstrucción intestinal, infecciones baterianas, cáncer, cirrosis hepática, pólipos colorrectales, uncinariasis, prolapso rectal, hemorroides. Presencia de moco Es posible indicativo de inflamación del intestino, úlcera e infección por Shigella Parásitos adultos Depende de la especie del parásito ya que algunos solo son visibles microscopicamente
  • 38. Informe • Por campo EN UN OBJETIVO DE 40X + ESCASO DE 1 A 5 ++ MODERADO DE 6 A 9 +++ ABUNDANTE > 10
  • 39. Bacterias Su hallazgo es significativo dependiendo de la cantidad que logremos observar y además la presencia de leucocitos y de alimento semidigerido. • ⇧Bacterias+leucocitos: posible infección bacteriana. • ⇩Bacterias+alimento semidigerido: problemas de digestibilidad.
  • 40. Hongos y levaduras • Hongos: No es común encontrarlos Conidioforos: No poseen gran importancia clínica, pero pueden provocar alergias. Hifas: Común encontrarlos en aves y reptiles . Son de importancia clínica Aspergillus spp. y Candida spp. • Levaduras: Puede ser de la flora normal. No tienen valor diagnóstico, a menos que su cantidad se encuentre aumentada.
  • 41. Hemoglobina • No es común encontrarla ya que se presenta en casos de hemorragias digestivas altas. • Cuando la observamos en microscopio es necesario realizar una prueba de confirmación: sangre oculta en heces (no se realiza en el ADC). •Eritrocitos:Indican una hemorragia del tracto digestivo bajo. • Generalmente se manifiesta como sangre evidente en el examen macroscópico.
  • 42. Cristales • Se forman debido a la dieta, ya que algunos están presentes en los tejidos de frutas y verduras, y se excretan en las heces fecales, y además debido al pH. • Algunos son comunes (en poca cantidad) en la orina y/o heces, mientras que algunos otros son indicativo de un proceso patológico.
  • 43. Cristales • Patologías hepáticas: Leucina y tirosina • Patologías renales: Fosfatos, cistina, carbonatos, oxalatos. • Charcot- Leyden: Producidos tras la degranulación de los eosinofilos. Por lo que su presencia nos indica infección parasitaria o Alergia.
  • 44. Leucocitos • Se observan, sobre todo neutrófilos en colitis ulcerosa y disentería bacteriana. Su observación es prueba preliminar para sospechar de infección bacteriana por Salmonella, Shigella, Campylobacter, Yersinia y Escherichia coli enteroinvasiva. • Bacterias que causan diarrea por producción de toxinas como Staphylococcus aureus, especies de Vibrio, virus y parásitos no reclutan leucocitos fecales.
  • 45. Almidón • Proviene de la dieta, y de acuerdo a la coloración que toma con Lugol, se considera digerido (acrodextrina, amarillo), parcialmente digerido (eritrodextrina, rojo) y sin digerir (morado o negro). • La presencia de almidón puede indicar deficiencia de amilasa causada por una insuficiencia pancreática exocrina.
  • 46. Grasa • Los lípidos al examen microscópico incluyen grasas neutras (triglicéridos), sales de ácidos grasos (jabones), ácidos grasos y colesterol.
  • 47. • «La alegría de ver y entender el mundo es el mas perfecto don de la naturaleza» Albert Einstein • Muchas gracias