Microsporum veterinaria

1. Instituto Politécnico Nacional.
Escuela Nacional de Ciencias Biológicas.
Departamento de Microbiología.
Microbiología Veterinaria.
Género
Microsporum
INFECCIONES DE LA PIEL Y FANERAS

2. Queratina
Según su
complejidad
Queratinas
α
Presenta
Cys +++
Piel y
Faneras
Queratinas
β
Presenta
Cys +
Tela araña
Mayor número de alfa
hélices. α
Mayor número de beta
plegadas. α
Queratina. Lee et al., 2020.

3. Dominio
• Eukarya
Reino.
• Fungi.
Phylum.
• Ascomycota.
Clase.
• Eurotiomycetes.
Orden.
• Onygenales.
Familia.
• Arthrodermataceae.
Género.
• Microsporum (ANAMORFA).
• Arthroderma (Nannizzia) (TELEOMORFA).
Especie.
• Diversas.
NCBI, 2021.
Clasificación
taxonómica
Fase anamorfa
Fase teleomorfa

4. Clasificación ecológica
Ascomiceto
Queratina
Parásitos
Facultativos.
Obligados.
Ajello, 1953.

5. Dermatofitos
Afinidad por la queratina. Complejidad vegetal. Simplicidad parasita.
Zoofílicos
Geofílicos.
Según tejido afectado y su hábitat.
Sohnle, 1993.

6. Caracteristicas generales
de crecimiento
Microsporum canis,
Bonifaz, 2012.
Crecimiento lento moderado de 6 a 10 días.
Textura: bordes vellosos, centro aterciopelado.
Superficie: depende de la especie plana, plegada,
acuminada.
Color anverso: depende la especie Blanco/Café/Beige.
Color reverso: generalmente es hialino (confusión con
pigmento).
Pigmento difusible al medio: depende de la especie.
Indranil, 2015.

7. Morfología microscópica
Micelio macrosifonado
septado hialino.
Macroconidios (macroaleuroconidios)
fusiformes u ovoides (+++).
6-25 por 6-160 µm, septos de 1 a 15 o más.
(Carácter taxonómico de identificación)
Microconidios (Microaleuroconidios) de
3-4 por 4-7 µm (+).
Cepero-de García, 2012
& Indranil, 2015.

8. M. canis
A. otae
ANVERSO
REVERSO
M. canis var. canis,
PDA, 30ºC, 7 días.
Textura: Aterciopelada con bordes
vellosos.
Superficie: Ligeramente aplanada o
Acuminada.
Color anverso: Blanco, ligeramente
amarillento.
Color reverso: Hialino
Pigmento amarillo difusible al medio
Walsh, 2018.
Colonias
Zoofílico.

9. M. canis
Morfología
microscópica
Macroconidios
10-25 por 35-110
µm.
Más de 6
compartimentos
Rugosos, paredes
gruesas, puntas
estrechas
Microconidios
En forma de mazo,
paredes lisas.
Pueden estar en
racimos.
Walsh, 2018.
Hifas en raquetas*

10. M. gypseum
(Nannizzia gypsea)
A. gypseum
REVERSO
M. gypseum, PDA-
SDA, 30ºC, 7 días.
Textura: Pulverulenta con bordes
vellosos.
Superficie: Umbilicada.
Color anverso: Beige, marrón a canela.
Color reverso: Hialino.
Pigmento amarillo que se puede tornar
rojo parduzco, hasta violáceo.
ANVERSO
Colonias
Walsh, 2018.
Geofílico.

11. Morfología
microscópica
Macroconidios
8-16 por 22-60 µm.
No más de 6
compartimentos
Abundantes,
simétricos y
rugosos.
Microconidios
En forma de mazo,
paredes lisas.
M. gypseum
Walsh, 2018.

12. M. nanum, SDA,
30ºC, 7 días.
Textura: Aterciopelada (pulverulenta) con bordes
vellosos.
Superficie: Plana.
Color anverso: Blanco a amarillento.
Color reverso: Hialino.
Pigmento difusible al medio color naranja
M. nanum
(Nannizzia nana, 2018)
A. obtusum
ANVERSO
REVERSO
Colonias
Walsh, 2018.
Zoofílico.

13. Morfología
microscópica
Macroconidios
4-8 por 12-18 µm.
De 1 a 3
compartimentos
Abundantes, pared
lisa a rugosos.
Forma de huevo
Microconidios
En forma de mazo
M. nanum
Walsh, 2018.

14. M. gallinae, SDA,
30ºC, 7 días.
Textura: Aterciopelada con bordes vellosos.
Superficie: Plana/Plegada (en el centro).
Color anverso: Blanco a rosada.
Color reverso: Hialino.
Pigmento difusible al medio color
naranja//rojizo.
REVERSO
M. gallinae
(Lophophyton gallinae, 2016).
Arthroderma grubyi
ANVERSO
Colonias
Walsh, 2018.
Zoofílico.

15. M. gallinae
Morfología
microscópica
Macroconidios
6-8 por 15-150 µm.
De 4 a 10
compartimentos.
Abundantes, pared
lisas y delgadas.
Curva distintiva con
base roma.
Microconidios
En forma de mazo
Walsh, 2018.

16. Factores de virulencia
Ecasa
(Queratinasa).
Carboxipeptidasas
Preniltransferasas
pcPTasa
Desacetilasas de
polisacáridos
tipo I
LysM +
ENZIMAS
SULFITO
(BOMBAS)
Dipeptidil
peptidasa (DppIV,
DppV)
Alta tasa de
reproducción.
Glicoproteínas de
Mannan.
Otras enzimas.
Indranil, 2015.
GRUPOS
PRENILOS

17. Adhesión por
glicoproteínas de Mannan.
Germinación del
conidios.
Reconocimiento inmunológico.
Crecimiento y formación
de esporas, caída de pelo.
Inflamación (por
metabolitos) y
crecimiento
circular.
Lesiones.
Avance de la enfermedad
Piel sana
Extrínsecos: Humedad alta,
Temperatura,
Infecciones por ácaros y
Traumatismo.
Intrínsecos: Jóvenes,
Inmunosupresión,
Deficiencia nutricionales.
Interacción
no efectiva
Patogenia. Indranil, 2015.
Factores
predisponentes

18. Catepsina B Liberacion de K+ 
Producción de ROS  Inflasoma
NLRP3 
Induce la producción de IL-1β
(Potencializa la inflamación)
Th1
(Muy importantes en reacciones de
hipersensibilidad y recuperación de
infecciones por Microsporum)
Th2
(Ayudan a activar a LcB)
Producción de Ac.
Papel fungistático, activadoras de complemento.
(No tan importantes)
Si no se regula genera cuadros
clínicos más severos.
Si no existe habrá cuadros
diseminados o atípicos
PRR (TLRs DECTINA 2)-
Manoproteínas (PAMPs)
Indranil, 2015.
INMUNIDAD ADAPTATIVA NO ACLARADA
INMUNIDAD INNATA

19. Transmisión.
Animales nuevos
Portadores
Hacinamiento
Suelo
Collares
Cosas de aseo
Indranil, 2015.

20. EPIZOOTIOLOGÍA

21. Distribución
geográfica

22. Ganado bovino
(Bos).
Tiña bovina.
M. canis
M. gypseum
Indranil, 2015.
Terneras de 8
meses.
Prevalencia del 12.5%
(Garcia et al., 2012).
Mortalidad no
reportada.

23. Signos. Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
Cabeza, Cuello y
Patas.
Flanco, Espalda y
Extremidades.
Indranil, 2015.
Circulares, blancas,
indoloras, gruesas y
dispersas.
Pérdida de
pelo,
descamación de
piel.

24. Tiña o dermatofitosis caprina y ovina
M. gypseum

25. Signos. Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
Lesiones
gruesas
nodulares
Zonas
alopécicas
Las lesiones pueden ser extensas, se
puede observar después de la trasquila.
Puede dar paso a perdida de peso
Cuello
Cara

26. Equinos
(Equus).
M. gypseum
Indranil, 2015.
Dermatofitosis equina.
Menores de
2 años.
Cifras
epidemiológicas no
reportadas

27. Signos. Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
Lesiones secas,
escamosas y
múltiples.
Lesiones grandes que
parecer ser fibrosas.
Cualquier parte, pero
mayormente en zonas
con pelo largo.
Indranil, 2015 & López-
Guerrero et al., 2008.

28. Aves de corral.
Gallus.
M. gallinae.
Favus
Peine blanco.
Aves de todas las
edades son
susceptibles.
(Mal manejo).
Indranil, 2015.

29. Lesiones blanquecinas
en la cresta.
Pueden invadir plumas
y orificio respiratorio.
Lesiones necróticas con
masa amarillenta.
Cresta
Tracto respiratorio
(Tráquea)
Tracto digestivo
Plumas
Signos.
Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
Indranil, 2015 &
Valladares–de la Cruz,
2014.

30. Ganado porcino
(Sus).
Tiña porcina
Dermatofitosis.
M. nanum,
M. canis,
M. gypseum.
Raza más
susceptible es
Yorkshire.
Todas la edades
Indranil, 2015.

31. Signos.
Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
Lesiones pequeñas,
circulares y levemente
inflamadas
Se vuelven rojas y
costrosas.
No hay alopecia.
Indranil, 2015.
Todo el cuerpo
Paletilla.
Jamón
Cabeza y
aguja.
Panceta.
Costillas

32. Gatos (Felis).
Tiña felina.
Todas las edades, se dice que
mas del 60% se encuentran
colonizado por este organismo.
Más frecuente en
individuos
estequimniátricos.
M. canis
Inmunodeficientes.
Actúan como
reservorios de la
enfermedad.
Indranil, 2015.

33. Lesión circular
con alopecia (3-6
cm)
Descamación,
eritema.
Dermatofitosis
miliar.
Alopecia
Eritema
Pruritis
Costras
Signos.
Inmunocompromiso.
Indranil, 2015.
Tiña anular.
Infecciones
secundarias.

34. Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
Rostro
Cuello/Tronco
Lomo
Extremidades
Pseudomicetoma
Otitis
Indranil, 2015.
Onicomicosis

35. Caninos (Canis).
Dermatofitosis
canina o tiña.
M. canis
M. gypseum
Todas las edades.
Más frecuente en
individuos
estequimniátricos.
Indranil, 2015.
Prevalencia del 22-
30%.

36. Lesión circular
con alopecia (2.5
cm)
Son zonas secas y
escamosas.
Signos. Zonas dañadas con
mayor frecuencia.
CODOS
PATAS
ROSTRO
Indranil, 2015.
Onicomicosis

38. Diagnóstico diferencial

39. Diagnóstico.
Observación de
animales
infectados/sanos.
Observación con
luz de Wood.
Toma de muestra
de animales.
Proceso de
muestras en el
laboratorio.
Emisión de
resultados.
Indranil, 2015.
*Toma de muestras de
suelo

40. Toma de muestras, estudios previos.
Aguilar-Bautista, 2021

41. Resultados de luz de Wood.
aúna, 2021 & Romero-Nuñez, 2020.
Fluorescencia amarillo-verdosa, debido a metabolitos
derivados del triptófano  pteridina en M. canis.
Pteridina
Falsos positivos
Yodo.
Jabones
Tópicos.

42. Aguilar-Bautista, 2021
SDA + Cicloheximida +
Cloranfenicol +
Gentamicina.
PDA.
25-30ºC.

43. aúna, 2021 Segal et al., 2013

44. Prevención y control
Espacios y prácticas con higiene.
No aglomeraciones.
Evitar alta humedad.
Monitoreo de suelo.
Evitar introducir fauna nueva
(portadora, hacinada).
Indranil, 2015.

45. Cepa inmunogénica inactivada de
Microsporum canis. 500,000 formas
veg./mL
Panacea, 2020.
Profilaxis: 2 dosis de 1 mL, primer dosis a cualquier
edad, segunda dosis 14-21 días.
Revacunación anual 1 dosis de 1mL.
Terapéuticos: 3 dosis en intervalos de 14-21 días
entre dosis.
Vacuna

46. Tratamiento
Autolimitante Azoles
Polienol
Alilamina
Indranil, 2015.

47. Bibliografía
• Ajello, L. (1953). The Dermatophyte, Microsporum Gypseum, As A Saprophyte and Parasite1. Journal of
Investigative Dermatology, 21(3), 157–171. https://doi.org/10.1038/jid.1953.86.
• BIOCAN M X 1 DS VAC.C/TINA - PANACEA. (2021). E-Panacea2.com.ar. http://www.e-
panacea2.com.ar/arsa/1226-biocan-m-x-1-ds-vacc-tina.html.
• National Center of Biotechnology Information. (2021). Taxonomy browser (Microsporum). Nih.gov.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?mode=Info&id=34392
• Bonifaz-Trujillo, A.J. (2012). Micología Médica Básica. (4º Ed.) México: McGraw Hill Education.
• Indranil, S. (2015). Micology veterinary. Argentina: SpringerBooks.
• Cepero-deGarcia, M. C., et al., (2012). Biología de hongos. Colombia: Ediciones Uniandes.
• Walsh, T. J., Randall T. & Larone, D. H. (2018). Medically Important Fungi A Guide to Identification. (6ta ed.).
USA: AMS PRESS.
• De Caso, E., Bondou, P., Rosa, I., & Rodríguez, A. (n.d.). UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA FACULTAD DE
CIENCIA ANIMAL DEPARTAMENTO DE VETERINARIA. https://core.ac.uk/download/pdf/35166869.pdf

48. Gracias