micosis

1. MICOSIS SUPERFICIALES

2. INFECCIONES ASOCIADAS A
Malassezia
Fase Micelial
Fase Levaduriforme
Pitiriasis versicolor
Caspa
Dermatitis seborréica
Foliculitis
Dacriocistitis obstructiva
Infección sistémica
Intertrigo por Malassezia
Papilomatosis confluente
y reticulada

3. Lesiones hipercromiantes Lesiones hipocromiantes
Coalescen en grandes parches
Pitiriasis versicolor

4. Pitiriasis versicolor

5. Toma de la muestra
(escamas finas fácilmente
desprendidas) con cinta
adhesiva

6. Detección del hongo
Observación
directa
•a) En fresco
•b) Biopsias
Cultivo *NO NECESARIO
• Aislamiento
• Purificación
• Identificación
Morfología colonial y
microscópica
Diagnóstico de laboratorio
Pitiriasis versicolor

7. Pitiriasis VersicolorPitiriasis Versicolor
Diagnóstico de LaboratorioDiagnóstico de Laboratorio
Examen en fresco con KOH al 10%Examen en fresco con KOH al 10%
## Presencia de lev aduras en racimos (lev aduras
monogemantes con collarete) y f ilamentos cortos angulares
y no ramif icados.
Presencia de lev aduras en racimos (lev aduras
monogemantes con collarete) y f ilamentos cortos angulares
y no ramif icados.
Cinta adhesiva transparenteCinta adhesiva transparente
Luz de Wood: fluoresencia de color verde
amarillenta
Luz de Wood: fluoresencia de color verde
amarillenta
Cultivo en SDA adicionado de aceite de oliva
(5-15%) y Asparagina
Cultivo en SDA adicionado de aceite de oliva
(5-15%) y Asparagina
## No es una técnica rutinaria y no es necesaria si el examen
en f resco es positiv o.
No es una técnica rutinaria y no es necesaria si el examen
en f resco es positiv o.

9. PITIRIASIS VERSICOLOR
Malassezia furfur
Malassezia sympodialis

11. 1.- Colonia de Malassezia furfur. En agar Dixon, 2.-Lesiones faciales hipocromiantes,
3.- Colonias de M. furfur en SDA, 4.-Levaduras de Malassezia furfur., observación en
fresco KOH 10%

12. INFECCIONES ASOCIADAS A
Malassezia
Fase Micelial
Fase Levaduriforme
Pitiriasis versicolor
Caspa
Dermatitis seborréica
Foliculitis
Dacriocistitis obstructiva
Infección sistémica
Intertrigo por Malassezia
Papilomatosis confluente
y reticulada

13. CASPA
DERMATITIS
SEBORRÉICA
FOLICULITIS DACRIOCISTITIS OBSTRUCTIVA

14. INFECCIÓN SISTÉMICA INTERTRIGOS AXILARES

16. Malassezia globosa
Malassezia restricta Malassezia sympodialis

17. Malassezia globosa
Especies de Malassezia
Malassezia furfur
Malassezia sympodialis Malassezia restricta

18. Especies de Malassezia
Malassezia obtusa Malassezia sloofiae
M. pachydermatis

19. Detección del hongo
Observación
directa
•a) En fresco
•b) Biopsias
Cultivo
• Aislamiento
• Purificación
• Identificación
Morfología colonial y
microscópica
Diagnóstico de laboratorio
Dermatofitosis

22. 1. 1. Examen directo (fresco)
2. Muestra de escamas o pelos
3. KOH, DMSO, Negro de clorazol
Blanco de calcoflúor
2. 2. Cultivo
3. Muestra de escamas o pelos
4. Saboraud, Micosel
5. 3. Luz de Wood

23. Solución de KOH al 10%
Hidróxico de potasio 10 g
Glicerol 20 ml
Agua destilada 80 ml
Agar micobiótico
Dextrosa 20 g
Neopeptona 10 ml
Agar 15 g
Cloranfenicol 500 mg
Cicloheximida 500 mg
Agua destilada c.b.p. 1000 ml

24. Micelio
ramificado
hialino
FASE PARASITARIA
Tinea corporis
Micelio ramificado
hialino y
artroconidios

25. DTM Dermatophyte Test
Medium
Agar micobiótico + HCl
+ rojo de fenol
Prueba +
Prueba +
FASE VEGETATIVA

26. Trichophyton rubrum
En PDA pigmento difusible color rojo
vino (prueba diferencial entre T.
rubrum y T. mentagrophytes)
FASE VEGETATIVA

27. T. rubrum
Macroconidios de
pared lisa en forma
de basto y
presencia
clamidoconidios
Abundantes
microconidios en
forma de lágrima,
dispuestas
alternativamente a
los lados de la hifa.
FASE VEGETATIVA

28. Trichophyton mentagrophytes
Colonias de crecimiento rápido,
planas con centro granuloso de
color crema, algunos con el centro
oblongado, bordes blancos de
aspecto velloso o granuloso, al
reverso color rojo obscuro.
T. mentagrophytes var.
mentagrophytes
T. mentagrophytes var. interdigitale
SDA
FASE VEGETATIVA

29. 1.- Trichophyton mentagrophytes se observan predominantemente microconidios esféricos y
macroconidios multiseptados., 2.-En agar Micobiotic, colonia blanca, plana, polvorienta., 3.-
Anverso de colonia de T. mentagrophytes en agar Mycobiotic de color rojo-café. 4.- Otra
característica; muy particular de este patógeno; es la formación de micelio en espiral.

30. Abundantes microconidios
esféricos dispuestos en
racimos, hifas en espiral.
Macrocodios cilíndricos de
paredes lisas, fragmentados
T.mentagrophytes

31. Abundantes
microconidios
esféricos
dispuestos en
racimos, hifas
en espiral.
Macrocodios
cilíndricos de
paredes lisas,
fragmentados
T.mentagrophytes

33. Prueba diferencial de perforación de pelo in vitro
Permite diferenciar T. rubrum de T. mentagrophytes. Se depositan
pelos estériles de caballo o niño y se infectan , de 2-3 semanas se
observa el crecimiento del hongo alrededor de los pelos, al
microscopio T. mentagrophytes invade los pelos formando
perforaciones

34. T. tonsurans
Abundantes microconidios de
diferentes tamaños y formas, algunos
globosos, arreglados en cruz de
lorena, presenta clamidoconidios.
Los macroconidios son escasos
FASE
VEGETATIVA
Colonias de crecimiento lento,
superficie plegada sobre el medio

35. 1.- Trichophyton tonsurans invadiendo cabello, se observan artroconidios en cadena. 2.- La
colonia varia en color, va desde un blanca hasta crema o café, plana, vellosa. 3.- Anverso de la
colonia, de color que va desde un amarillo a un café obscuro. 4.- Micelio grueso, septado,
abundantes microconidios alternados, escasos macroconidios.

36. 1.- Microsporum canis presenta macroconidios multiseptados, pueden
producir celulas en raqueta. 2.- Causa lesiones circulares con bordes
eritematosos característicos de la tiña causada por este patógeno., 3.- En
agar Micobiotic, colonia aterciopelada de color que va de amarillo a café.,
4.- En el anverso se observa la producción de pigmento que va de amarillo
a amarillo dorado.

37. Microsporum canis
Macroconidios con >6 septos, con
extremos agudos, ornamentaciones y
con doble pared.

39. Microsporum canis FASE VEGETATIVA
Macroconidios con >6 septos, con extremos agudos,
ornamentaciones y con doble pared.

40. 1.- Microsporum gypseum infección en cabello de tipo ectótrix, se observan
macroconidios., 2.- Colonia polvorosa, color crema a ligero café., 3.- No se
observa producción de pigmento., 4.- Macroconidios con menos de 6septos,
microconidios escasos.

41. Macroconidios fusiformes regulares , con 4 a 6 septos, paredes
pegadas y finamente rugosas, extremos redondeados

42. 1.- Epidermophyton flocosum no presenta microconidios, macroconídios
escasamente segmentados., 2.- Colonia de color café a beige, irregular,
3.- En el anverso no produce pigmento., 4.- Tiña pedis causada por este
patógeno.
E. floccosum

43. Clamidoconidios
Clamidoconidios
Predominio de macroconidios, presenta hifas y clamidoconidios.
Macroconidios en forma oval alargada, la mayoria con 2-4 septos,
paredes delgadas, frecuentemente producidos en racimos de 2-3
**Ausencia de
microconidios
Epidermophyton floccosum FASE VEGETATIVA