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Género Strongyloides
Julieth Alexandra Ducuara Suarez
Leidy Alejandra Giraldo Martínez
Taxonomía
Reino Animalia
Phylum Nematoda
Clase Secernentea
Orden Rhabditida
Superfamilia Rhabditoidea
Familia Strongyloididae
Género Strongyloides
S. stercoralis
www.freevectors.net
S. westeri
S. papillosus
S. ransomi
(Bowman, 2014).
Morfología
L1
L3
(Bowman, 2014).
(Viney, & Lok, 2015).
Huevos larvados
Morfología
Hembra de vida libre
Macho de vida libre
(Viney, & Lok, 2015). (Bowman, 2014).
Epidemiología
● Ampliamente distribuido en regiones tropicales y subtropicales.
● Humedad
● Temperatura: 15 °C - 34 °C.
Prevalencia
Autor y año Título Ubicación Metodología Resultados
Chaparro-
Gutiérrez, J.,
Ramírez-
Vásquez, N.,
Piedrahita, D.,
Strauch, A.,
Sánchez, A.,
Tobón, J., &
Villar-Argaiz, D.
(2018)
Prevalencia de
parásitos
gastrointestinales en
equinos y
factores de riesgo
asociados en varias
zonas de Antioquia,
Colombia
Antioquia 664 muestras
fecales de
caballos.
Se realizó la
prueba de
McMaster
modificado de
tres cámaras, la
prueba de
Baermann y la
prueba de
Graham.
3,9%
Strongyloides
spp. (26/664)
Autor y
año
Título Ubicación Metodología Resultados
Pinilla, J.,
Flórez, P.,
Sierra, M.,
Morales, E.,
Sierra, R.,
Vásquez, M.
C., & Ortiz, D.
(2018)
Prevalencia del
parasitismo
gastrointestinal en
bovinos del
departamento Cesar,
Colombia
Cesar 862 muestras
fecales de bovinos.
Técnicas
coprológicas de
McMaster, Dennis y
Baermann.
10,8%
Strongyloides
spp. (93/862)
Corredor, D.,
Anaya, A., &
Medellín, M.
(2018)
Prevalencia y factores de
riesgo asociados a la
presencia de parásitos
gastrointestinales en
bovinos del municipio de
Ventaquemada (Boyacá)
Boyacá 372 muestras de
materia fecal de
bovinos.
Técnica de formol-
éter o Ritchie
modificada.
1.9%
Strongyloides
spp. (7/372)
Autor y
año
Título Ubicación Técnicas Resultados
Peralta, R.,
Mazamba, M.,
Reyes, P., &
Zambrano, T.
(2017)
Strongyloides spp.
en caninos de una
zona rural del
Guayas y el riesgo
en Salud Pública
Ecuador 120 muestra de heces
de caninos. Técnica
coproparasitaria de
flotación y método de
Baermann modificado.
Incidencia del
8,33% de
Strongyloides
spp. (10/120)
Giraldo, M.,
García, N., &
Castaño, J.
(2005)
Prevalencia de
helmintos
intestinales
en caninos del
departamento del
Quindío
Quindío 324 muestras
de heces caninas.
Encuesta
epidemiológica, método
modificado de Ritchie.
Strongyloides
stercoralis, 4%
(13/324)
Ciclo Biológico
Genética de los strongyloides
Lesiones
Mucosa duodenal de un cachorro Yorkshire terrier de 10 semanas de edad
que padecía una infección por S. stercoralis (Dillard et al., 2007)
Histopatología de los pulmones de ratas en un modelo
experimental de estrongiloidiasis (Tefé-Silva et al., 2012)
Lesiones
- Infiltración leucocitaria de la dermis
- Dermatitis
- Edema
- Urticaria
- Hemorragia
- Descamación de la superficie epitelial
- Congestión
- Enfisema
- Petequias
- Equimosis en pulmones
(Barriga, 2002)
Acción: Traumática, expoliatriz,
mecánica, inoculadora y tóxica.
SIGNOS
● Larva currens.
● Prurito.
● Sibilancias.
● Dolor epigástrico
● Diarrea.
● Vómito
● Pérdida de peso.
● Erupciones cutáneas.
● Diarrea hemorrágica.
● Dolor abdominal severo.
● Fiebre.
vetstream.com
Híper infección
● Cuadro pulmonar.
● Infección de cerebro
● Oclusión intestinal
paralítica
● Hemoptisis
● Eosinopenia
● Compromiso hepático
drrondonpediatra.com
Estrongiloidosis,
diarrea negra,
verminosis
gastrointestinal
Diagnóstico
● Técnicas de flotación
● Coprocultivo
www.rvc.ac.uk
● Técnica de Baermann
● Examen posmortem
● Criptosporidiosis
● Coccidiosis
● Ascariosis porcina
Diagnóstico diferencial
WormBoss
acopba.blogspot.com vet.uga.edu
razasporcinas.com
Tratamiento
S. stercoralis
S. westeri
S. papillosus
S. ransomi
- Dietilcarbamazina, 100 mg / kg Oral
- Ivermectina, 0.2 mg / kg Oral
- Mebendazol, 20 mg / kg Oral 24 h × 3-14 d
- Ivermectina, 0.2 mg / kg Oral
- Oxibendazol, 10 mg / kg Oral
- Eprinomectina, 0.5 mg / kg pour on
- Ivermectina, 0.2 mg / kg SC
- Doramectina, 0.3 mg / kg IM
- Ivermectina, 0.3 mg / kg, SC o en alimento
- Levamisol, 5-8 mg / kg (después del ayuno
nocturno)
- Limpieza de las instalaciones
- Desinfección con agua hirviendo o con sustancias químicas (Formalina 5%)
- Evitar encharcamientos y aguas residuales.
Control y prevención
Bibliografía
Barriga, O. O. (2002). Las enfermedades parasitarias de los animales domésticos en la América Latina. Editorial Germinal.
Bowman, D. (2014). Georgis' Parasitology for Veterinarians-E-Book. Elsevier Health Sciences.
Chaparro-Gutiérrez, J., Ramírez-Vásquez, N., Piedrahita, D., Strauch, A., Sánchez, A., Tobón, J. & Villar-Argaiz, D. (2018). Prevalencia de parásitos
gastrointestinales en equinos y factores de riesgo asociados en varias zonas de Antioquia, Colombia. CES Medicina Veterinaria y Zootecnia, 13(1), 7-
16.
Corredor, D., Anaya, A., & Medellín, M. (2018). Prevalencia y factores de riesgo asociados a la presencia de parásitos gastrointestinales en bovinos del
municipio de Ventaquemada (Boyacá). Infometric@-Serie Ingeniería, Básicas y Agrícolas, 1(1).
Dillard, K. J., Saari, S. A., & Anttila, M. (2007). Strongyloides stercoralis infection in a Finnish kennel. Acta Veterinaria Scandinavica, 49(1), 37.
Giraldo, M., García, N., & Castaño, J. (2005). Prevalencia de helmintos intestinales en caninos del departamento del Quindío. Biomédica, 25(3), 346-52.
Peralta, R., Mazamba, M., Reyes, P., & Zambrano, T. (2017). Strongyloides spp. en caninos de una zona rural del Guayas y el riesgo en Salud Pública.
RECIMUNDO, 1(5), 271-287.
Pinilla, J., Flórez, P., Sierra, M., Morales, E., Sierra, R., Vásquez, M. & Ortiz, D. (2018). Prevalencia del parasitismo gastrointestinal en bovinos del
departamento Cesar, Colombia. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 29(1), 278-287.
Taylor, M., Coop, R., & Wall, R. (2007). Veterinary parasitology. Elsevier Health Sciences.
Tefé-Silva, C., Machado, E. R., Faccioli, L. H., & Ramos, S. G. (2012). Hyperinfection syndrome in Strongyloidiasis. In Current Topics in Tropical Medicine.
InTech.
Viney, M., & Lok, J. (2015). The biology of Strongyloides spp. WormBook, 16, 1-17.

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Género Strongyloides

  • 1. Género Strongyloides Julieth Alexandra Ducuara Suarez Leidy Alejandra Giraldo Martínez
  • 2. Taxonomía Reino Animalia Phylum Nematoda Clase Secernentea Orden Rhabditida Superfamilia Rhabditoidea Familia Strongyloididae Género Strongyloides S. stercoralis www.freevectors.net S. westeri S. papillosus S. ransomi (Bowman, 2014).
  • 3. Morfología L1 L3 (Bowman, 2014). (Viney, & Lok, 2015). Huevos larvados
  • 4. Morfología Hembra de vida libre Macho de vida libre (Viney, & Lok, 2015). (Bowman, 2014).
  • 5. Epidemiología ● Ampliamente distribuido en regiones tropicales y subtropicales. ● Humedad ● Temperatura: 15 °C - 34 °C.
  • 6. Prevalencia Autor y año Título Ubicación Metodología Resultados Chaparro- Gutiérrez, J., Ramírez- Vásquez, N., Piedrahita, D., Strauch, A., Sánchez, A., Tobón, J., & Villar-Argaiz, D. (2018) Prevalencia de parásitos gastrointestinales en equinos y factores de riesgo asociados en varias zonas de Antioquia, Colombia Antioquia 664 muestras fecales de caballos. Se realizó la prueba de McMaster modificado de tres cámaras, la prueba de Baermann y la prueba de Graham. 3,9% Strongyloides spp. (26/664)
  • 7. Autor y año Título Ubicación Metodología Resultados Pinilla, J., Flórez, P., Sierra, M., Morales, E., Sierra, R., Vásquez, M. C., & Ortiz, D. (2018) Prevalencia del parasitismo gastrointestinal en bovinos del departamento Cesar, Colombia Cesar 862 muestras fecales de bovinos. Técnicas coprológicas de McMaster, Dennis y Baermann. 10,8% Strongyloides spp. (93/862) Corredor, D., Anaya, A., & Medellín, M. (2018) Prevalencia y factores de riesgo asociados a la presencia de parásitos gastrointestinales en bovinos del municipio de Ventaquemada (Boyacá) Boyacá 372 muestras de materia fecal de bovinos. Técnica de formol- éter o Ritchie modificada. 1.9% Strongyloides spp. (7/372)
  • 8. Autor y año Título Ubicación Técnicas Resultados Peralta, R., Mazamba, M., Reyes, P., & Zambrano, T. (2017) Strongyloides spp. en caninos de una zona rural del Guayas y el riesgo en Salud Pública Ecuador 120 muestra de heces de caninos. Técnica coproparasitaria de flotación y método de Baermann modificado. Incidencia del 8,33% de Strongyloides spp. (10/120) Giraldo, M., García, N., & Castaño, J. (2005) Prevalencia de helmintos intestinales en caninos del departamento del Quindío Quindío 324 muestras de heces caninas. Encuesta epidemiológica, método modificado de Ritchie. Strongyloides stercoralis, 4% (13/324)
  • 10. Genética de los strongyloides
  • 11.
  • 12. Lesiones Mucosa duodenal de un cachorro Yorkshire terrier de 10 semanas de edad que padecía una infección por S. stercoralis (Dillard et al., 2007) Histopatología de los pulmones de ratas en un modelo experimental de estrongiloidiasis (Tefé-Silva et al., 2012)
  • 13. Lesiones - Infiltración leucocitaria de la dermis - Dermatitis - Edema - Urticaria - Hemorragia - Descamación de la superficie epitelial - Congestión - Enfisema - Petequias - Equimosis en pulmones (Barriga, 2002) Acción: Traumática, expoliatriz, mecánica, inoculadora y tóxica.
  • 14. SIGNOS ● Larva currens. ● Prurito. ● Sibilancias. ● Dolor epigástrico ● Diarrea. ● Vómito ● Pérdida de peso. ● Erupciones cutáneas. ● Diarrea hemorrágica. ● Dolor abdominal severo. ● Fiebre. vetstream.com Híper infección ● Cuadro pulmonar. ● Infección de cerebro ● Oclusión intestinal paralítica ● Hemoptisis ● Eosinopenia ● Compromiso hepático drrondonpediatra.com Estrongiloidosis, diarrea negra, verminosis gastrointestinal
  • 15. Diagnóstico ● Técnicas de flotación ● Coprocultivo www.rvc.ac.uk ● Técnica de Baermann ● Examen posmortem
  • 16. ● Criptosporidiosis ● Coccidiosis ● Ascariosis porcina Diagnóstico diferencial WormBoss acopba.blogspot.com vet.uga.edu razasporcinas.com
  • 17. Tratamiento S. stercoralis S. westeri S. papillosus S. ransomi - Dietilcarbamazina, 100 mg / kg Oral - Ivermectina, 0.2 mg / kg Oral - Mebendazol, 20 mg / kg Oral 24 h × 3-14 d - Ivermectina, 0.2 mg / kg Oral - Oxibendazol, 10 mg / kg Oral - Eprinomectina, 0.5 mg / kg pour on - Ivermectina, 0.2 mg / kg SC - Doramectina, 0.3 mg / kg IM - Ivermectina, 0.3 mg / kg, SC o en alimento - Levamisol, 5-8 mg / kg (después del ayuno nocturno)
  • 18. - Limpieza de las instalaciones - Desinfección con agua hirviendo o con sustancias químicas (Formalina 5%) - Evitar encharcamientos y aguas residuales. Control y prevención
  • 19.
  • 20.
  • 21.
  • 22. Bibliografía Barriga, O. O. (2002). Las enfermedades parasitarias de los animales domésticos en la América Latina. Editorial Germinal. Bowman, D. (2014). Georgis' Parasitology for Veterinarians-E-Book. Elsevier Health Sciences. Chaparro-Gutiérrez, J., Ramírez-Vásquez, N., Piedrahita, D., Strauch, A., Sánchez, A., Tobón, J. & Villar-Argaiz, D. (2018). Prevalencia de parásitos gastrointestinales en equinos y factores de riesgo asociados en varias zonas de Antioquia, Colombia. CES Medicina Veterinaria y Zootecnia, 13(1), 7- 16. Corredor, D., Anaya, A., & Medellín, M. (2018). Prevalencia y factores de riesgo asociados a la presencia de parásitos gastrointestinales en bovinos del municipio de Ventaquemada (Boyacá). Infometric@-Serie Ingeniería, Básicas y Agrícolas, 1(1). Dillard, K. J., Saari, S. A., & Anttila, M. (2007). Strongyloides stercoralis infection in a Finnish kennel. Acta Veterinaria Scandinavica, 49(1), 37. Giraldo, M., García, N., & Castaño, J. (2005). Prevalencia de helmintos intestinales en caninos del departamento del Quindío. Biomédica, 25(3), 346-52. Peralta, R., Mazamba, M., Reyes, P., & Zambrano, T. (2017). Strongyloides spp. en caninos de una zona rural del Guayas y el riesgo en Salud Pública. RECIMUNDO, 1(5), 271-287. Pinilla, J., Flórez, P., Sierra, M., Morales, E., Sierra, R., Vásquez, M. & Ortiz, D. (2018). Prevalencia del parasitismo gastrointestinal en bovinos del departamento Cesar, Colombia. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 29(1), 278-287. Taylor, M., Coop, R., & Wall, R. (2007). Veterinary parasitology. Elsevier Health Sciences. Tefé-Silva, C., Machado, E. R., Faccioli, L. H., & Ramos, S. G. (2012). Hyperinfection syndrome in Strongyloidiasis. In Current Topics in Tropical Medicine. InTech. Viney, M., & Lok, J. (2015). The biology of Strongyloides spp. WormBook, 16, 1-17.

Notas del editor

  1. Reino Animalia: Organismos eucariotas multicelulares. Phylum Nematoda: (Nematelmintos) Poseen cuerpo cilíndrico, fusiforme, sin segmentaciones, con simetría bilateral. Aparto digestivo completo, tubular, que genera un espacio entre la cutícula y el tubo digestivo, llamado pseudoceloma. Clase Secernentea: numerosas papilas caudales y un sistema excretor que posee canales laterales. Presenta integumento, apertura genital y las hembras son más grandes que los machos. Presentan reproducción asexual, son dioicos y hermafroditas simultáneos. Orden Rhabditida: normalmente viven en el suelo y se alimentan de microorganismos. La mayor parte son de vida libre. Son pequeños, Esófago con 3 divisiones: cuerpo, itsmo y bulbo. Superfamilia Rhabditoidea: ánfidios  pequeños. Abertura bucal pequeña, Hermafroditas , de sexos separados o partenogénicos . Eliminan huevos larvados en la materia fecal. Familia Strongyloididae: Tienen una generación libre saprofítica  y otra parásita en el intestino de los vertebrados, Son heterogenéticos  Género Strongyloides  invaginaciones inervadas de la cutícula en los nematodos. Principales órganos olfato-sensitivos de los nematodos.  aparato reproductivo mixto capaz de producir gametos masculinos y femeninos  reproducción asexual en la que el crecimiento y el desarrollo de los embriones se producen sin la fertilización . Ddesarrollo de un embrión a partir de una célula de óvulo no fertilizado  se alimentan la absorción de sustancias orgánicas por lo general derivados de la materia orgánica en descomposición   . Reproducción por un proceso sexual y asexual alternativamente
  2. https://www.semanticscholar.org/paper/The-biology-of-Strongyloides-spp.-Viney-Lok/ed56e9bc280c0ae6a45b7d8ed22ecdacdf756512 Huevo: Los huevos son elipsoides, de 40–85μm de longitud, con una pared delgada que contiene una larva. Larva 1: Cavidad bucal muy corta, esófago rabditiforme, primordio genital. Larva 3: Esófago filariforme de aproximadamente la mitad de la longitud de la larva, extremo posterior bifurcado. Hembra parasitaria: Mide de 2 a 9 mm de longitud. Esófago alargado, de lados rectos (filariformes), que ocupa aproximadamente un tercio de la longitud del cuerpo. Vulva ubicada en el último tercio. Hembra de vida libre: 1 mm de longitud, es un poco más grande que el macho. Esófago rabditiforme. Vulva ubicada en el punto medio del cuerpo. Macho de vida libre: Extremo posterior enroscado. Esófago rabditiforme.
  3. https://www.semanticscholar.org/paper/The-biology-of-Strongyloides-spp.-Viney-Lok/ed56e9bc280c0ae6a45b7d8ed22ecdacdf756512
  4. Prepatencia 1 semana Hembras partenogenéticas. Residen en intestino delgado. Huevos embrionados eclosionan en criptas o luz intestinal. L1 (rabditiformes) se anulan en las heces y dan lugar a L3i (filariformes) o se desarrollan a nematodos adultos libres. L3i ingresa al perro vía percutánea. L3i ingresa al perro vía oral Las larvas migran al intestino delgado y mudan primero a L4 y luego a la hembra adulta partenogénica. Los cachorros pueden infectarse a través de la leche si la perra tiene L3 migratorias. Las larvas rabditiformes no infecciosas se desarrollan en machos y hembras adultos libres que producen huevos. Las larvas rabditiformes no infecciosas que salen de los huevos se desarrollarán en L3i. A través del tracto intestinal del huésped, las larvas rabditiformes pueden mudar rápidamente en L3i. Las larvas pueden penetrar la pared del intestino grueso o la piel perianal del huésped, lo que resulta en una migración que termina en el intestino delgado. Las cepas caninas de S. stercoralis infectan a los humanos. Ciclo de vida de S. stercoralis. Todos los parásitos adultos son hembras partenogenéticas (1) que residen en las criptas del intestino delgado. Sus huevos embrionados (2) eclosionan en las criptas o en la luz intestinal. Las larvas rabditiformes L1 se anulan en las heces (3) y dan lugar a larvas filariformes infecciosas L3 (L3i) o se desarrollan a nematodos adultos vivos libres dependiendo de las condiciones ambientales. El L3i no desarrolla más si no obtiene acceso a un nuevo host. El L3i ingresa al perro por vía percutánea (4) peroralmente (5). Las larvas migran al intestino delgado y mudan primero a L4 y luego a la hembra adulta partenogénica (6). Los cachorros pueden infectarse a través de la leche si la perra tiene larvas L3 migratorias (7). La infección transplacentaria no ocurre. Este ciclo de vida parasitario de S. stercoralis se conoce como ciclo de vida homogónico. Si las condiciones ambientales son óptimas, puede tener lugar una ruta alternativa de ciclo de vida (ciclo de vida heterogónico). Las larvas rabditiformes no infecciosas se desarrollan en gusanos macho y hembras adultos libres (8) que producen huevos. Las larvas rabditiformes no infecciosas (9) que salen de los huevos se desarrollarán en L3i (10). Durante el paso a través del tracto intestinal del huésped, las larvas rabditiformes pueden experimentar muda rápidamente en L3i. Estas larvas pueden penetrar a través de la pared del intestino grueso o la piel perianal del huésped, lo que da como resultado una migración que termina en el intestino delgado (11). El proceso se llama autoinfección y se prefiere especialmente en los hospedadores neonatales o inmunocomprometidos. Se sabe que las cepas caninas de S. stercoralis infectan a los humanos (12). El ciclo de vida fue dibujado en base a la información obtenida de las siguientes referencias: [2,4,16-18].
  5. Haploide ( desarrolla machos libres). Diploides de cromosomas ( larvas infectantes directamente o hembras libres ). Triploides cromosomas (hembras parasitarias) (Tan sólo un 1-4% de los huevos puestas por las hembras partenogenéticas son 1n y 2n generación dioica). La evolución de estos huevos depende de factores externos (sustrato, pH, relación O2/CO2) sexuales.
  6. A:Hembra partenogenética B:machos y hembras de vida libre E:Esofago AN:Ano SP:Espícula TE:Testículo IN:Intestino N:Anillo nervioso PG:primordio genital ER: Esofago rabditoide V:Vaina EF: Esofago filariforme BI: Extremo caudal bifurcado UT: Útero con huevos OV: Ovario
  7. a: una micrografía que muestra numerosas larvas de S. stercoralis y óvulos (flechas) dentro de la mucosa intestinal. En la mucosa hay una moderada infiltración difusa de linfocitos y células plasmáticas b: Una micrografía de primer plano con S. stercoralis hembra . El tamaño pequeño del parásito, el intestino grueso relativamente (in) y el tracto genital pareado (gt) se ven fácilmente en esta hembra de sección longitudinal. pulmón: algunos focos hemorrágicos con larvas en los espacios alveolares https://actavetscand.biomedcentral.com/articles/10.1186/1751-0147-49-37 https://www.intechopen.com/download/pdf/32506
  8. Edema: acumulación de líquido en el espacio intercelular o intersticial, además de las cavidades del organismo Urticaria: lesiones cutáneas edematosas, de contornos delimitados y con un halo eritematoso, generalmente evanescentes y cambiantes. La urticaria va acompañada, generalmente, de prurito Enfisema: agrandamiento permanente de los espacios aéreos distales a los bronquiolos terminales, con una destrucción de la pared alveolar, Petequia: pequeñas manchas puntiformes, de color rojo violáceo, que aparecen en la superficie cutánea o en la membrana serosa por extravasación sanguínea. Equimosis: lesión subcutánea de características hemorrágicas que se produce por la extravasación de sangre.
  9. vetstream.com Cuando se presenta el ciclo de autoinfección, con el síndrome de hiperinfección resultante, los parásitos pueden invadir otros órganos, causando cambios similares e infecciones bacterianas secundarias. El pulmón es el órgano extraintestinal más frecuentemente comprometido en estas circunstancias (46). Asma, infiltrados transitorios o neumonía franca son comúnmente encontrándose en la hiperinfección(18). Igualmente se ha reportado compromiso hepático, con infiltrado periportal de tipo eosinofílico y la presencia de parásitos adultos y larvas, observándose también granulomas. Así mismo, se han encontrado larvas de S. stercoralis en el cerebro, con reacción inflamatoria mínima alrededor y excepcionalmente un absceso cerebral causado por el parásito el cual fue identificado en el material purulento, del absceso (47). Finalmente se ha aislado este parásito del aspirado gástrico, líquido ascítico, líquido cefalorraquídeo, orina y en biopsia de lesiones de piel (48) y más recientemente en sangre periférica (49). hemoptisis incluye la expectoración de esputo hemoptoico o de sangre fresca procedente del aparato respiratorio, más concretamente de la zona subglótica Eosinopenia es el descenso porcentual de los eosinófilos en el plasma sanguíneo. https://www.cambridge.org/core/journals/parasitology/article/strongyloides-spp-infections-of-veterinary-importance/0E052A0C75B34441289883C1A4DDBC51/core-reader http://www.journalofparasitology.org/doi/abs/10.1645/0022-3395(2002)088%5B0536%3ATTOSSI%5D2.0.CO%3B2 https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/19530801064 https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/19470800120 http://www.worldgastroenterology.org/UserFiles/file/guidelines/management-of-strongyloidiasis-spanish.pdf
  10. Técnicas de flotación: basados en la propiedad que tienen las soluciones de densidad mayor (sobresaturadas) de hacer flotar objetos menos densos (huevos). Coprocultivo: cultivo de las heces para posterior identificación de diferentes formas parasitarias. Técnica de Baermann: La técnica de Baermann se basa en la migración activa o movimiento de las larvas. Las heces son suspendidas en agua. Las larvas se mueven hacia el agua. Se hunden hacia el fondo, donde pueden ser colectadas para su identificación. Drenar unos cuantos mililitros de fluido por el cuello del embudo hacia un tubo de ensayo. Después: Dejar sedimentar por lo menos durante 30 minutos. o si se dispone de una centrífuga, el fluido puede centrifugar a 1000 rpm por 2 minutos. Usar una pipeta Pasteur para transferir una gota pequeña del sedimento a un portaobjetos. Añadir una gota de yodo para fijar la larva y colocar cuidadosamente un cubreobjetos sobre la gota. Examen posmortem https://www.rvc.ac.uk/review/parasitology_spanish/Baermann/Examination.htm
  11. Criptosporidiosis: Es una enfermedad producida por especies de protozoos pertenecientes al género Cryptosporidium. Ocasiona síndrome de malabsorción y diarrea que se manifiesta principalmente en animales jovenes. Coccidiosis: Enfermedad causada por Eimeria. Animales jovenes. Diarrea negra. Ascari suum: Es una infestación causada por la presencia y acción de Áscaris suum principalmente en animales jóvenes. Los estados larvarios actúan fundamentalmente a nivel de hígado y pulmón y los adultos en el intestino delgado. Clínicamente se traduce por un retardo en el crecimiento y algunas veces con problemas digestivos, respiratorios y nerviosos. los vermes adultos causan diarrea, ictericia como consecuencia de la obstrucción del flujo biliar, algunas veces obstrucción intestinal debida a ovillos de gusanos, sobre todo en los animales jóvenes.
  12. La ivermectina es el fármaco de elección para el tratamiento. Sin embargo, la preocupación por confiar en el tratamiento con un solo fármaco hace que la identificación de nuevas moléculas sea una prioridad. Los análogos de alquilfosfolípidos, incluida la edelfosina, son un grupo de compuestos sintéticos que han mostrado actividad contra algunos parásitos. El objetivo fue evaluar la actividad in vitro e in vivo de edelfosina, miltefosina, perifosina contra Strongyloides venezuelensis . Además, se estudió el mecanismo similar a la apoptosis en las larvas después del tratamiento. Edelfosine mostró la actividad más alta y el mejor índice de selectividad en comparación con la miltefosina o la perifosina. Las L3 después del cultivo con edelfosina no pudieron desarrollar una infección en ratones. El tratamiento de ratones con edelfosina mostró una reducción del 47% en las hembras parasitarias asignadas en el intestino. Además, la fragmentación del ADN se observó mediante tinción con TUNEL en larvas tratadas con edelfosina. Estos resultados sugieren que la edelfosina podría ser un fármaco eficaz contra la strongiloidiasis, probablemente a través de la inducción de muerte celular similar a la apoptosis. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0001706X18305242
  13. Las larvas de S. venezuelensis L3 tratadas con edelfosina 100 M durante 72 h se analizaron para determinar la inducción de una supuesta muerte similar a la apoptosis mediante el uso de la técnica de marcaje de extremo (DUNP) mediada por deoxinucleotidil transferasa terminal (TUNEL) para detectar la fragmentación del ADN. El etiquetado de los extremos 3-OH del ADN fragmentado con fluoresceína-12-dUTP permitió la visualización de células de tipo apoptótico. Las células se permeabilizaron y se tiñeron con yoduro de propidio para visualizar los núcleos de células apoptóticas y no apoptóticas en rojo, mientras que las células positivas a TUNEL, que representan células apoptóticas, se tiñeron en verde. Como se muestra en la Fig. 6, se encontró una potente y extensa fragmentación a lo largo de todo el parásito, lo que sugiere una respuesta similar a la apoptosis en larvas L3 de S. venezuelensis tratadas con edelfosina a lo largo de todo el parásito. En conclusión, la actividad strongyloidicida de la edelfosina alquilfosfolípida contra S. venezuelensis se demostró utilizando cultivos de L3 y un modelo murino de strongyloidiasis, posiblemente a través de la inducción de la muerte celular tipo apoptosis. El tratamiento oral con edelfosina condujo a reducciones significativas en la carga de huevos, y por lo tanto estos datos justifican una investigación adicional en otros para establecer el papel de la edelfosina como un fármaco terapéutico en infecciones helmínticas transmitidas por el suelo