2. Queesquímica
sanguínea.??
Pruebas espectrofotométricas: El Espectrofotómetro debe
encenderse antes de realizarse una prueba y se deber
verificar las condiciones de T° tiempo y longitud de onda de
cada prueba y controlar de manera obligatoria.
La química sanguínea es un análisis de la sangre realizado
en un laboratorio para medir cantidades de ciertas
sustancias en el organismo como sales, enzimas, grasas o
lípidos, hormonas, azúcar o glucosa, proteínas, vitaminas y
minerales.
3. Muestra.
Muestra de sangre en tubo tapa roja sin anticoagulante,
para obtener el suero. Las técnicas pueden variar según
la casa comercial de los reactivos usados.
4. 1 # toma de
muestra.
La toma de muestra de sangre depende directamente de
la especie a analizar sobre la cual debe buscarse la vena
de referencia que permita la toma de una mejor
muestra con el mínimo traumatismo del paciente. De
esta manera debe tenerse en cuenta la prueba a
realizar, el calibre de la aguja y las condiciones de
sujeción del paciente a criterios de los encargados del
procedimiento
5. Es necesario tener en cuenta las normas básicas de bioseguridad
para el personal médico, por lo tanto, se exige el uso de
guantes, bata blanca, ropa en material anti fluidos y tapabocas;
así mismo el uso de material estéril para la toma de las
muestras. Previamente se debe tener organizado el equipo para
toma de muestra con alcohol, agua oxigenada, agujas, algodón,
torniquete, pinzas, bozal para los pacientes y todo el equipo de
protección y bioseguridad del operario.
La posición adecuada y sujeción efectiva del animal son
esenciales para un muestreo con éxito. Un poco de tiempo
empleado haciendo amigos, ganando la confianza del animal,
son generalmente bien recompensados.
6. La práctica apacible y suave deberá minimizar la
necesidad de manejo físico humano, debemos tener en
cuenta que la sangre tomada de un animal asustado,
adrenalizado, puede originar resultados equivocados en
varios análisis.
7. El sitio de punción debe estar limpio y libre de
patógenos, esto incluye recortar el pelo, lavarlo con
jabón, detergente o solución yodada en dos veces y
después realizar una limpieza con alcohol. El corte de
pelo puede ser indeseable en animales de exhibición por
lo que es necesario pedir el consentimiento del dueño,
en caso de que el corte no sea posible por algún motivo
la limpieza debe ser más estricta.
8. La asepsia debe realizarse en sentido contrario al
crecimiento del pelo del animal y en forma circular del
centro hacia la periferia. Después de la punción el sitio
debe dejarse seco, limpio y libre de sangre ya que
cualquier humedad o materia orgánica favorece las
infecciones.
9. La cantidad de muestra obtenida debe estar de acuerdo
al tamaño, peso y condición del paciente. Se requiere de
una muestra superior a 2 cc y no mayor a 5 cc.
Homogenizar 4 veces .
La muestra obtenida se debe rotular con los datos del
paciente o el número consecutivo asignado por el
laboratorio.
13. UREA:
La urea es un compuesto orgánico relativamente
simple producido por los mamíferos en el hígado como
producto final del catabolismo de las proteínas.
La urea se aumenta en sangre por trastornos renales
como la insuficiencia renal crónica y aguda; por
obstrucción de las vías urinarias; excesiva destrucción de
proteínas como en estados de fiebre, toxicidad o sepsis
extensa. También se pueden aumentar los niveles de
urea por una hemoconcentración debida generalmente a
graves vómitos o diarreas.
14. CREATININA:
La Creatinina está en el cuerpo principalmente en forma
de fosfato de alta energía. En los músculos es fuente de
energía. En animales jóvenes de crecimiento se encuentra
en mayores cantidades. La Creatinina es una substancia
muy difusible y distribuida de manera uniforme en el agua
corporal.
La medición de los niveles de Creatinina en sangre
proporciona la misma información para el diagnóstico y
pronóstico de la función renal que la obtenida por la
medición del nitrógeno ureico.
15. •Alanina transaminasa (ALT). La ALT es una enzima que se encuentra en el hígado y que ayuda a
convertir las proteínas en energía para las células hepáticas. Cuando el hígado está dañado, se libera ALT
al torrente sanguíneo y aumentan sus niveles.
•Aspartato transaminasa (AST). La AST es una enzima que ayuda a metabolizar los aminoácidos. Al igual
que la ALT, la AST normalmente está presente en la sangre en niveles bajos. Un aumento en los niveles de
AST puede indicar daño o enfermedad del hígado o daño muscular.
•Fosfatasa alcalina (ALP). La ALP es una enzima que se encuentra en el hígado y los huesos y es
importante para descomponer las proteínas. Si los niveles de ALP son más altos de lo normal, es posible
que el hígado presente alguna enfermedad o daño, como una vía biliar obstruida o ciertas enfermedades
óseas.
16. •Fosfatasa alcalina (ALP). La ALP es una enzima que se encuentra en el hígado y los huesos y
es importante para descomponer las proteínas. Si los niveles de ALP son más altos de lo normal,
es posible que el hígado presente alguna enfermedad o daño, como una vía biliar obstruida o
ciertas enfermedades óseas.
•Albúmina y proteína total. La albúmina es una de las diversas proteínas producidas en el
hígado. El cuerpo necesita estas proteínas para combatir infecciones y realizar otras funciones. Si
los niveles de albúmina y de proteína total son más bajos de lo normal, es posible que el hígado
presente alguna enfermedad o daño.
18. Se deben encender en el orden: 1) UPS, 2) Computador y 3) BS-120 mindray
19. Encendido de la UPS.
Conectar el cable de alimentación de la UPC al toma corriente, luego mantener oprimido el botón ON/MUTE
hasta que aparezca ON en la pantalla del equipo y se escuche un pitido. De igual forma para apagarlo
mantener presionado OFF/ENTER y se escuche el pitido.
Oprimir el botón de Encender/Apagar de la torre hardware del computador y encender el monitor o pantalla.
20. Tan pronto este en marcha la UPS y el PC, procedemos a encender el equipo BS-120.
Nos dirigimos a la parte trasera presionamos el interruptor de alimentación principal (se escucha el ruido de
los ventiladores del equipo al oprimirlo) luego, en la parte lateral izquierda del equipo, accionamos el switch de
alimentación y abrimos la tapa principal del equipo.
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21. Iniciación del software BS-120
Paso 1. Nos dirigimos al escritorio (pantalla principal de Windows), clic derecho y abrir al programa BS120.
Paso 2. El programa empezara una serie de pasos automáticos hasta llegar a “Descargue primer segmento
cubeta”. Aquí, retiramos la cubeta número 1 del disco de reacción y oprimimos “OK”.
22. Comenzará a medir el fondo de lámpara y nos solicitará ingresar una cubeta nueva en la posición 1 y damos
“OK” para que se mida el blanco de la cubeta. Luego nos dará la opción de seguir midiendo los blancos de las
otras cubetas en las diferentes posiciones del disco de reacción, si no lo deseamos, damos “Sigu” para
continuar al siguiente paso.
23. Paso 3. El software solicitara adicionar una cubeta con detergente en la posición 35 del disco de reactivos y
oprimimos “OK” para iniciar el lavado o en “Sigu” para saltar este paso. También debemos colocar una cubeta
con agua destilada en la posición 36, la cual usara el equipo como diluyente en las reacciones.
Nota: Estas cubetas deben ser cambiadas con una frecuencia semanal para evitar la formación de
precipitados que puedan interferir.
24. El detergente usado es hipoclorito de sodio, el cual se prepara haciendo una solución de 28 mL de hipoclorito
concentrado y 12 mL de agua destilada, para un volumen total de 40 mL en la respectiva cubeta.
.
25. Paso 4. Se abrirá la interfaz del software BS-120, este nos alerta con un mensaje en la parte superior e
inferior en caso de hallar algún problema, por ejemplo; cuando no hay suficiente agua desionizada en el bidón
de agua del equipo. Nota: Estos mensajes de error se pueden quitar en la opción “Eliminar” de la parte inferior
derecha de la interfaz.
.
26. Cambio de segmentos de cubeta del disco de reacción
El disco de reacción tiene capacidad para ocho (8) segmentos de cubeta, las cuales deben ser reemplazadas
luego de su uso. Puede comprobarse el estado de cada una de estas en la pestaña “Estado”, “Disc reacción”.
.
27. Para solicitar el cambio de los “seg cubeta”, nos dirigimos a la pestaña “Remplaz” y damos “OK”. Comenzará a
girar el disco de reacción y aparecerá la ventana “Remplaz”. Retiramos la cubeta de la posición actual,
reemplazamos por una nueva y damos en “Remplaz”.
.
28. Controles de calidad
Los controles de calidad se deben procesar antes de analizar una muestra.
Paso 1. Poner atemperar los controles de calidad CC (Normal y Patológico); 15 minutos en refrigeración y
15 min a temperatura ambiente.
Nota: Los kits comerciales de los controles de calidad vienen en estado liofilizado y para su preparación se
deben reconstituir con 5 mL de agua destilada o como lo indique la casa comercial, luego se mezclan
haciendo movimientos circulares suaves evitando la formación de burbujas, posteriormente se dejan reposar
15 minutos a temperatura ambiente y se sirven 200 uL de cada control en tubos Eppendorf® de 1,5 mL. Se
guardan bajo congelación (-15 °C a – 20 °C). Se recomienda llevar seguimiento a la fecha de preparación y
fecha de vencimiento.
29. Paso 2. Los controles de calidad N y P se ubican en el disco de muestras en la posición S3 y S4,
respectivamente.
30. Paso 3. Se introducen los kits de reactivos de las pruebas que se van a realizar como se indica en “Estado”,
“Disco de react”. Por ejemplo; para los reactivos R1 y R2 de ALT, el equipo nos señala que se deben ubicar en
la posición 9 y 10, respectivamente. Así sucesivamente para los reactivos de cada prueba.
.
31. Paso 4. Para solicitar el análisis de los controles nos dirigimos a la pestaña “Solicit CC”. Se eligen los ensayos
deseados dando clic izquierdo sobre ellos y oprimiendo “OK”.
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32. Paso 5. Luego de seleccionar los ensayos damos clic en “Iniciar”, saldrá la ventana “Iniciar test”,
seleccionamos el disco de muestra No. 1 y oprimimos “OK”. Aquí el equipo empezara la lectura de los
controles de calidad para establecer los rangos de normal y patológico.
.
33. Paso 6. Una vez finalizada la lectura de los controles, nos dirigimos a la pestaña “CC”, “Resu CC” y en la
opción “Control” seleccionar “ControlN o ControlP” y darle en “Actualizar”. Aquí podremos ver los resultados
arrojados en los controles los cuales debemos comparar con el intervalo de referencia (Result real vs Interv.
Ref).
Nota: Si los controles de calidad no están en el intervalo de referencia, se deberán calibrar las pruebas
solicitadas.
34. CALIBRACIÓN
La calibración se realiza cuando se cambian de lote los reactivos (abrimos nueva caja o cambiamos de casa
comercial) y cuando los controles de calidad están por fuera del intervalo de referencia.
Paso 1. Se coloca atemperar el calibrador (en caso de tenerlo ya preparado); 15 min en refrigeración y 15 min
a temperatura ambiente.
Nota: El calibrador es un kit comercial (Multi Sera Calibrator®) que se reconstituye adicionando 3 mL de agua
destilada, se mezcla suavemente haciendo círculos y previniendo la formación de burbujas, posteriormente se
deja reposar a temperatura ambiente durante 15 minutos, se sirven 200 uL en tubos de Eppendorf® de 1,5 ml
y se almacenan en congelador (-15 °C a -20 °C). Se recomienda hacer seguimiento a la fecha de preparación
y fecha de vencimiento del lote.
35. Paso 2. Colocar el blanco (agua desionizada) y el calibrador en la posición S1 y S2 del disco de muestras,
respectivamente
.
36. Paso 3. Se introducen los kits de reactivos de las pruebas que se van a calibrar como se indica en “Estado”,
“Disco de react”. Por ejemplo; para los reactivos R1 y R2 de ALT, el equipo nos señala que se deben ubicar en
la posición 9 y 10, respectivamente. Así sucesivamente para los reactivos de cada prueba.
.
37. Paso 4. Solicitar los análisis en la pestaña “Calibrac”, “Solicitud de calibrac”, seleccionando las pruebas
deseadas y luego presionamos “OK”.
.
38. Paso 5. Se habilitará la opción “Iniciar”, damos clic y se abrirá la ventana “Iniciar test”, nos aseguramos de que
el “disco muest” este asignado en el No. 1 y presionamos “OK”.
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39. Paso 6. Nos dirigimos a la pestaña “Result”, seleccionamos la opción “Historia” y en “Test” elegimos la prueba
según fecha de realización, seguidamente en la parte inferior damos clic en “Curv cali” para ver la tendencia,
la cual debe ser lineal para una correcta calibración.
40. MONTAJE DE LAS MUESTRAS
Paso 1. Ubicar las muestras en el disco de muestras el cual está limitado para hasta ocho (8) muestras al
tiempo.
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41. Paso 2. Solicitar los análisis deseados en la pestaña “Mues Sol”, seleccionar “N*2 o N*3 disco muest” en la
opción “Disco muest”, agregar la identificación de la muestra en la ventana “Pacient”, por ejemplo; SA 18045-
20, elegir las pruebas a realizar y damos “OK”, se agregara una nueva ventana para asignar una segunda
muestra y repetir el proceso con hasta 8 muestras por disco.
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42. Paso 3. Después de solicitar las pruebas damos clic en “Iniciar”, seleccionamos el disco de muestra No. 2 o
No. 3 (de acuerdo a donde se hallan solicitado en el paso 2) y damos “OK” para empezar el análisis. El equipo
mostrara un tiempo estimado para finalizar la prueba.
.
43. Paso 4. Los resultados se visualizan en la pestaña “Resultados”, sea en la opción “Actual o Histori”, aquí
tenemos dos opciones “por muestra” o “por test”, seleccionamos el nombre o número de muestra y la
“Concentración” será nuestro resultado.
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44. BIBLIOGRAFIA
Jean francois bach –philipe lesuareeditorial
massonInmunología, MANUAL DE
HEMAOLOGIARAUL ALTAMIRANO ACEVES,
paginas- 289.
Codex del laboratorio clínico. Fuentes X. Castiñeiras
M.J. Ferré M. Elsaiver. España. 2003.
Iovine, E. y A.A. Selva. El laboratorio en la clínica. 3
de., Panamericana, buenos Aires, Argentina, 1985.
45. PREGUNTAS?
1 – QUE TUBOS SE USAN PARA TOMAR QUIMICA
SANGUINEA ?
2 –MENCIONE 3 PRUEBAS DE QUIMICA SANGUINEA
QUE SE HACEN EN EL LABORATORIO.
3—QUE SE HACE ANTES DE PASAR LAS MUESTRAS
DEL PACIENTE POR EL EQUIPO DE QUIMICAS ?
4– NOMBRE UN CRITERIO DE RECHAZO DE
MUESTRA PARA QUIMICA SANGUINEA ?
5– POR QUE ES IMPORTANTE MARCAR DE MANERA
CORRECTA LA MUESTRA ??