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PLAN DE MANEJO DE PREDIOS ASOCIADOS
PROFO ASOCIATIVO PRODUCTOS AGRÍCOLAS DEL OASIS DE
PICA, CÓDIGO 15 PROFO – 46925 – 3
PRODUCTOR FERNANDO MIRANDA
EJECUTA: ASESORÍAS DIAGUITA
PROFESIONAL: EDUARDO GALLARDO ACUÑA
31 DE OCTUBRE 2019

EJECUTA: ASESORÍAS DIAGUITA 1
PLAN DE MANEJO DE PREDIOS DE ASOCIADOS: PRODUCTOR FERNANDO MIRANDA
ÍNDICE
1. INTRODUCCIÓN ………………………………………………………………………………………………… 2
2. OBJETIVOS ………………………………………………………………………………………………………… 3
3. ANÁLISIS AGRONÓMICOS …………………………………………………………………………………. 4
4. EVALUACIÓN INDICADORES DESDE AL AÑO 2017 AL AÑO 2019 ……………. 37
5. PROPUESTAS DE MEJORAS AL PLAN DE MANEJO ……………………………………. 41
6. CONCLUSIONES ……………………………………………………………………………………………… 44

1. INTRODUCCIÓN
El presente informe, busca sistematizar los aprendizajes obtenidos de la aplicación del plan
de manejo aplicado al predio del productor FERNANDO MIRANDA, luego de que en el año
2017, se realizaran análisis agronómicos que sirvió como línea de base. En el presente año
2019 se realizaron nuevamente análisis agronómicos, con el propósito de evaluar de manera
científica la aplicación del plan de manejo, ver su efecto en la fertilidad del cultivo y la
salinidad acumulada en el suelo.
La metodología utilizada es presentar el proceso de muestreo con sus respectivos resultados,
obtenidos en el año 2019 y luego realizar un cuadro comparativo con los datos obtenidos en
el año 2017, para poder tener una visión científica y cuantitativa del proceso desde la
aplicación del plan de manejo, y como se pueden aplicar mejoras a ese plan de manera de
aumentar la rentabilidad del cultivo, considerando que el grupo de productores quieren
comenzar un proceso de certificación orgánica y para esto solo podrían utilizar productos
naturales y orgánicos, para fertilizar sus cultivos y controlar plagas y enfermedades.

2. OBJETIVOS
2.1. GENERAL: Evaluar la aplicación del plan de manejo del predio del productor
Fernando Miranda, con recomendaciones técnicas basados en datos científicos,
obtenidos de los resultados de los análisis agronómicos realizados, comparándolos
con los datos obtenidos en el año 2017, además de las orientaciones productivas del
agricultor.
2.2. ESPECÍFICOS:
2.2.1. Presentar los resultados de los análisis de fertilidad del suelo.
2.2.2. Presentar los resultados de los análisis salinidad de suelo.
2.2.3. Presentar e interpretar los resultados del análisis foliar.
2.2.4. Presentar los resultados del análisis bacteriológico realizado al pozo de
extracción de agua.
2.2.5. Presentar los resultados de los análisis bacteriológicos realizados al estanque
de acumulación de aguas.
2.2.6. Presentar e interpretar los resultados del análisis multi residual realizado a los
frutos.
2.2.7. Comparar los resultados obtenidos en el año 2017 y contrastarlos con los
datos obtenidos en el año 2019.
2.2.8. Realizar propuestas de mejoras al plan de manejo predial.

3. ANÁLISIS AGRONÓMICOS
3.1. ANÁLISIS DE SUELO: El objetivo de tomar muestras de suelos y enviarlas a analizar es
poder conocer con certeza los elementos de importancia agronómica que
componen el suelo, para este caso se han tomado muestras que luego se analizaron
desde 2 perspectivas, uno analizando la fertilidad del suelo y la otra es analizando la
salinidad del suelo.
METOLOGIA UTILIZADA: Considerando que las muestras serán enviados a analizar a
un laboratorio autorizado y certificado, como lo es el caso de AGROLAB LTDA, se
consideró sus pautas de muestreo para poder obtener las muestras de suelo
necesarias.
SELECCIÓN DE LA UNIDAD DE MUESTREO:
Los sectores a muestrear se deben dividir en unidades de características similares en
cuanto a topografía, profundidad, textura, cultivo anterior y manejo. Es
recomendable que cada unidad de muestreo, cuartel o potrero, no abarque una
superficie mayor a 5 hectáreas (máximo 10 ha.).
TOMA DE LA MUESTRA:
Cada muestra se compone de al menos 3 submuestras por ha. (Mínimo 25 sub
muestras para una unidad de muestreo de 10 ha.), las que se toman recorriendo el
cuartel o potrero en forma representativa (en X, zigzag, etc.).
No se debe muestrear en sectores alterados como bordes de caminos, entradas,
orillas, acequias, etc.
Las sub muestras se extraen con una pala o barreno. Si el suelo presenta vegetación,
pastos u otros, ésta debe ser eliminada raspando la superficie. Luego hacer un corte
en “V” hasta la profundidad determinada (ver profundidad de muestreo) y tomar la
sub muestra, teniendo la precaución de eliminar el suelo que se encuentra en los
bordes laterales de la pala.
Las sub muestras se colocan en un balde o una bolsa limpia.
Al finalizar la toma de sub muestras se mezcla el contenido del balde y se saca
aproximadamente un kilo, el que se traspasa a una bolsa plástica limpia y ésta es la
que finalmente constituye una muestra.

PROFUNDIDAD DE MUESTREO
La profundidad a la cual se toman las muestras depende de la especie y/o manejo:
- Suelos con riego por goteo: Tomar las muestras en la zona media del bulbo de
mojado
- Frutales y Vides: 0 a 70 cm. Por estratas u horizontes hasta la profundidad de
las raíces
- Utilizar un barreno o hacer calicatas.
ENVÍO DE MUESTRAS
 La bolsa con la muestra debe identificarse claramente, indicando el
nombre del potrero o cuartel y fecha del muestreo. Además, debe
adjuntar los siguientes antecedentes:
 Nombre del productor y del predio
 Ubicación del predio: dirección, localidad, comuna, región
 Datos para la facturación: Rut, razón social, dirección, comuna, giro,
teléfono
 Análisis solicitado y teléfono, celular y/o mail para contacto
ENVÍO AL LABORATORIO:
Las muestras deben ser enviadas al laboratorio lo antes posible, o bien
almacenarlas en un lugar fresco.
Imagen N° 1: Registro fotográfico momento toma muestras de suelo.

Imagen N° 2: Formulario de ingreso de muestras.

3.1.1. RESULTADOS ANÁLISIS DE SUELO
3.1.2. ANÁLISIS DE FERTILIDAD DEL SUELO
Imagen N° 3: Resultados laboratorio análisis fertilidad

Imagen N° 4: Interpretación análisis de fertilidad del suelo
Los suelos del productor, de acuerdo a los análisis de laboratorio tiene una textura
franco arenosa, lo que da ciertas condiciones al suelo, como la gran profundidad y
alto grado de infiltración del agua de riego.
Uno de los elementos relevantes que presentan los datos del análisis, es su PH
excesivamente alto, lo que dificulta la absorción de nutrientes.
Los macro elementos como el nitrógeno y fosforo se encuentran en un bajo nivel del
suelo.
El boro es un elemento necesario para los cultivos, pero al presentarse en altas
concentraciones genera toxicidad en el cultivo que se traduce en una baja en el
rendimiento.
ANÁLISIS SUELO FERTILIDAD
AGRICULTOR VALORES NO FERNANDO MIRANDA
FECHA DE MUESTREO UNIDAD ADECUADOS* 13/10/2019
PREDIO LOTE 9
pH > 7,5 8,6 EXCESIVO
C.E. dS/m <2 - 4> 1,1 MEDIO
MATERIA ORGÁNICA <0,81 - 1,5> 0,6 BAJO
NITRÓGENO DISPONIBLE <21 - 40> 20 BAJO
FOSFORO DISPONIBLE <21 - 40> 9 BAJO
POTASIO DISPONIBLE <120 - 200> 504 ADECUADO
CATIONES INTERCAMBIABLES
CALCIO meq/l <6,1 - 7,0> 5,1 MEDIO
MAGNESIO meq/l <1,1 - 1,75> 0,57 MEDIO
POTASIO meq/l 1,3 ADECUADO
SODIO meq/l 0,78 MEDIO
MICROELEMENTOS DISPONIBLES
HIERRO meq/l > 8,0 7,2 MEDIO
MANGANESO meq/l > 0,7 3,1 ADECUADO
ZINC meq/l 0,58 MEDIO
COBRE meq/l > 20,0 0,2 BAJO
BORO meq/l > 1,0 2,9 ALTO
CLASE TEXTURAL ARENOSA FRANCA
ESTADO

3.1.3. ANÁLISIS DE SALINIDAD DEL SUELO
Imagen N° 5: Resultados de laboratorio análisis salinidad suelo

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Imagen N° 6: Interpretación análisis de salinidad del suelo
De acuerdo a los análisis de laboratorio, el PH es un elemento que es alto y afecta la
absorción de nutrientes.
Los demás elementos están dentro de un rango medio a adecuado.
ANÁLISIS SUELO SALINIDAD
FECHA DE MUESTREO UNIDAD ADECUADOS* 18/07/2017
PREDIO
pH > 8,5 7,6 ALTO
C.E. dS/m > 4,0 1,1 MEDIO
RAS > 15 4,5 ADECUADO
CALCIO meq/l 3,4 ADECUADO
MAGNESIO meq/l 0,6 ADECUADO
POTASIO meq/l 0,58 ADECUADO
SODIO meq/l > 30,0 6,3 MEDIO
CLORURO meq/l > 30,0 2,2 BAJO
SULFATO meq/l 4,8
BICARBONATO meq/l > 8,5 4,7 ADECUADO
BORO meq/l > 3,0 2 ADECUADO
ESTADO

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3.2. ANÁLISIS DE AGUA: El objetivo del análisis de agua, es poder determinar la calidad
de la misma, desde un punto de vista de sus componentes químicos y otros desde
un punto de vista de la cantidad de elementos patógenos que están presentes en él.
3.2.1. ANÁLISIS FÍSICO QUÍMICO DEL AGUA DE RIEGO
AGROLAB define la forma de hacer un muestreo al agua para riego depende de la fuente
de agua y el tipo de análisis requerido.
ENVASES:
Para un análisis físico químico de rutina se recomienda el uso de botellas limpias de
polietileno de alta densidad con capacidad para 1 litro. Si se requieren análisis de metales
totales u otros elementos, como cianuro, solicitar al laboratorio los envase con los
preservantes adecuados.
TOMA DE LA MUESTRA:
Según la fuente de agua, seleccionar el punto de muestreo y el procedimiento de acuerdo
a la siguiente tabla:

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El envase se debe llenar completamente con la muestra, luego cerrarlo herméticamente
y verificar la ausencia de aire en el envase. Esto evita modificaciones en el contenido de
anhídrido carbónico y por lo tanto variaciones en el pH y ayuda a retardar otros cambios
físicos químicos o biológicos que pueden ocurrir entre la toma de la muestra y el análisis.
Si queda aire o se detectan burbujas, debe descartar la muestra y tomar otra.
Si además del análisis físico químico de rutina requiere analizar metales totales u otros
elementos, debe recolectar otra muestra en un envase con un preservante adecuado al
análisis. Al recolectar muestras en envases con preservantes, estos no deben llenarse
completamente con muestra (dejar un espacio de 1% de la capacidad del envase).
IDENTIFICACIÓN Y ANTECEDENTES
Los envases con las muestras deben identificarse claramente, indicando la localización
del punto de muestreo (nombre del río, canal, pozo, etc.), fecha y hora del muestreo,
preservación realizada, nombre del recolector de la muestra. Además, deben adjuntarse
los siguientes antecedentes:
- Nombre del productor y del predio
- Ubicación del predio: dirección, localidad, comuna, provincia, región
- Datos para la facturación: Rut, razón social, dirección, comuna, teléfono, giro
- Análisis solicitado
- Nombre y teléfono, celular o mail de la persona de contacto
ALMACENAMIENTO:
Inmediatamente después del muestreo, colocar los envases herméticamente cerrados
en el refrigerador o en una caja aislante con hielo. Mantener las muestras refrigeradas,
pero sin congelar (2-5°C) y protegidas de la luz hasta la llegada al laboratorio.
ENVÍO AL LABORATORIO:
Enviar las muestras al laboratorio lo antes posible después de su recolección. Se debe
programar el muestreo en conjunto con el laboratorio de tal manera que las muestras
recibidas puedan ser analizadas dentro del período recomendado de preservación
(considerando el tiempo de transporte, fines de semana, días festivos).

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Las muestras deben llegar al laboratorio cerradas herméticamente y protegidas de la luz
y calor, porque la calidad de la muestra se puede modificar rápidamente a causa del
intercambio de gases, de las reacciones químicas y del metabolismo de los organismos.
Imagen N° 7: Formulario ingreso muestra de agua

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Imagen N° 8: Resultados laboratorio análisis de agua

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Imagen N° 9: Interpretación análisis físico químico agua de riego.
De acuerdo a los resultados obtenidos del análisis físico químico del agua de riego, tiene
una buena calidad, el único parámetro que esta algo elevado es el PH.
ANÁLISIS AGUA FÍSICO QUÍMICO
FECHA DE MUESTREO ADECUADOS*
PREDIO s/i
pH > 7,5 7,82 ALTO
C.E. dS/m > 3,0 1,00 ADECUADO
RAS > 9,0 4,00 ADECUADO
% SODIO 62,50
DUREZA >320 155,00 ADECUADO
CATIONES Y ANIONES
CALCIO meq/l 3,00
MAGNESIO meq/l 0,10
POTASIO meq/l 0,14
SODIO meq/l >9 5,40 ADECUADO
CLORURO meq/l >10 2,40 ADECUADO
SULFATO meq/l 6,10
BICARBONATO meq/l >8,5 1,30 ADECUADO
NITRÓGENO AMONIACAL mg/l 1,00
NITRÓGENO NÍTRICO mg/l 12,50
FOSFORO mg/l 0,05
ARSÉNICO mg/l >0,1 0,05 ADECUADO
BORO mg/l >2 1,70 ADECUADO
CADMIO mg/l 0,01
COBRE mg/l >0,2 0,01 ADECUADO
HIERRO mg/l 0,01
MANGANESO mg/l >0,2 0,01 ADECUADO
PLOMO mg/l >5 0,01 ADECUADO
ZINC mg/l >2 0,01 ADECUADO
UNIDAD ESTADO

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3.2.2. ANÁLISIS BACTERIOLÓGICO: El propósito por los que se realizan análisis
bacteriológicos, es poder detectar riesgos asociados a presencia de elementos
patógenos en el agua de riego, para este caso se busca detectar la presencia de
3 elementos patógenos estos son:
Coliformes totales: No todos los coliformes tienen un origen fecal, por estos
motivos fue necesario, analizar los coliformes totales que incluyen a los de
origen fecal y a las que no tienen ese origen. Dentro de las coliformes fecales
encontramos diferentes familias de bacterias, entre estas podemos mencionar
a las Escherichia, Kiebsella, Enterobacteria y citrobacter.
Coliformes Fecales: Son bacterias de origen animal y/o humanos, estas bacterias
tienen su origen en los intestinos de humanos y animales y son expulsadas al
medio ambiente a través de las deposiciones.
Escherichia Coli: Las bacterias pertenecientes a las familias de las Escherichia
Coli, de origen humano o animal son idénticas, y tiene un 99% de probabilidades
que esta fue causada por la deposición de material fecal en el agua de riego. La
mayoría de las variedades de Escherichia Coli son inofensivas o causan diarrea
breve en términos relativos. Sin embargo, algunas cepas particularmente
peligrosas, como la Escherichia Coli O157:H7, pueden causar cólicos
abdominales intensos, diarrea con sangre y vómitos.
PAUTAS DE MUESTREO: Para poder tomar las muestras de aguas para los análisis
bacteriológicos de pozo y estanque se siguió el siguiente procedimiento.
ENVASES:
Para el examen bacteriológico se utilizan frascos esterilizados de vidrio neutro
o plástico de buena calidad, con capacidad para 300 ml.
Muestras que contengan cloro residual (ej: agua potable), deben ser decloradas
en el momento de su recolección para evitar que este desinfectante siga
actuando. Para esto se agrega tiosulfato de sodio al envase antes de su
esterilización (el laboratorio puede proporcionar estos envases).

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TOMA DE MUESTRA:
Seleccionar el punto de muestreo, luego tomar la muestra cuidando no
contaminar la entrada del envase. Llénelo, sin enjuagar, hasta ¾ de su capacidad
(esto ayuda al mezclado antes del análisis y evita contaminación accidental), y
ciérrelo herméticamente en forma inmediata.
a. Ríos, canales y otros cursos de agua:
Emplear frascos esterilizados. El frasco se debe abrir inmediatamente antes de
tomar la muestra, cuidando de no contaminar con la mano el cuello y tapa;
enseguida se llena el frasco sin enjuagar y se cierra lo más pronto posible. Al
extraer la muestra, la botella se sostiene por la base y se sumerge con el cuello
hacia abajo, hasta una profundidad de 30 cm por debajo de la superficie. A
continuación, se inclina la botella de manera que el cuello apunte ligeramente
hacia arriba, con la boca dirigida hacia donde viene el flujo. Evite el agua que
entra en la botella toque antes la mano, lo que podría suceder en aguas
turbulentas.
b. Estanques de almacenamiento, sistemas de distribución:
Preferiblemente usar envases esterilizados de boca ancha.
Cuando se recolecte la muestra desde una tubería o llave de muestreo, puede
ser necesario descargar la parte del sistema que haya estado inactiva para
remover el agua estancada, excepto cuando interese la calidad microbiológica
del agua dentro de la tubería local. El agua debe fluir libremente desde la llave
o salida.
Cuando se extraiga la muestra de una red de agua potable, se debe escoger una
llave de uso frecuente en buen estado que esté conectada directamente a la
red y dejar correr el agua durante 1 minuto como mínimo antes de recoger la
muestra.

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IDENTIFICACIÓN:
Los envases con las muestras deben identificarse claramente, indicando la
procedencia (nombre del río, canal, pozo, etc.) y las condiciones bajo las cuales
se extrajo la muestra (fecha, hora, nombre del muestreador, preservantes, etc.).
Además, debe adjuntar los siguientes antecedentes:
 Nombre del productor y del predio
 Ubicación del predio: dirección, localidad, comuna, región
 Datos para la facturación: Rut, razón social, dirección, comuna, giro,
teléfono
 Análisis solicitado y teléfono, celular y/o mail para contacto
RECOMENDACIONES:
Manipular el envase por su parte inferior, evitar el contacto entre la llave y la
boca del envase, mantener una distancia prudente entre su cara
(particularmente la boca) y el envase, finalmente cerrar herméticamente el
envase cuidando de no contaminar la tapa.
Una vez tomada la muestra siga las indicaciones señaladas en la pauta y envíe
la muestra al laboratorio lo antes posible. El plazo máximo entre la toma de
muestra y el análisis son 24 horas, en algunos casos puede ser hasta 30 horas.

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Imagen N° 10: Formulario ingreso muestras de agua de estanque para análisis
bacteriológico

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Imagen N° 11: Formulario ingreso análisis bacteriológico de agua de Pozo.

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Imagen N° 12: Resultados análisis bacteriológico de agua de pozo.

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Imagen N° 13: Resultado análisis bacteriológico agua de estanque.
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:
AGUA DE POZO: En este análisis no se encontraron presencia de coliformes, así como
tampoco la presencia de Escherichia Coli.
AGUA DE ESTANQUE: En el análisis de aguas tomado en el estanque se ha detectado la
presencia de coliformes total, de origen no fecal.

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Imagen N° 14: Cuadro de resultados análisis de agua bacteriológicos.
3.3. ANÁLISIS FOLIARES: El objetivo de este tipo de análisis es poder determinar la
cantidad de nutrientes en el tejido vegetal, es decir que busca determinar la
fertilizad del cultivo a través de la observación y análisis de sus hojas.
Este tipo de análisis es de mucha utilidad, debido a que permite determinar con más
certeza qué tipo de nutrientes están siendo absorbidos por el sistema radicular del
cultivo. En general una mayor disponibilidad de nutrientes presentes en el suelo, se
traduce en una mayor concentración de nutrientes en la planta, sin embargo, las
características del suelo pueden limitar la absorción algunos nutrientes.
PAUTA DE MUESTREO: Para poder tomar una muestra representativa del cultivo, se
siguió la siguiente pauta de muestreo.
El éxito de los análisis depende en gran medida de que el muestreo se realice
siguiendo las indicaciones de la pauta de muestreo. Un muestreo mal realizado
provoca inconsistencias y errores en la interpretación del análisis.
Para un análisis de diagnóstico nutricional, el muestreo se realiza dentro de un área
en la que se espera una respuesta, por ejemplo: un cuartel o sector con bajo
rendimiento, un grupo de árboles con síntomas anormales (hojas cloróticas,
pequeñas, deformes, etc.) o simplemente donde desea controlar la fertilización.
FUENTE UNIDAD
FERNANDO
MIRANDA
ESTADO
POZO
COLIFORMES TOTALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA
COLIFORMES FECALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA
ESCHERICHIA COLI NMP/100ML <1,8 AUSENCIA
ESTANQUE
COLIFORMES TOTALES NMP/100ML 1300 PRESENCIA
COLIFORMES FECALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA
ESCHERICHIA COLI NMP/100ML <1,8 AUSENCIA

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Para minimizar los efectos de la variabilidad natural, cada muestra debe colectarse
dentro de una pequeña superficie uniforme respecto a variedad, edad, tipo de suelo,
Manejo, apariencia, etc., la que se denominará unidad de muestreo, y que por lo
general corresponde a un cuartel o una parte de este.
La unidad de muestreo se recorrerá en “diagonal”, “X” o “zig-zag” tomando muestras
de aquellos árboles que representen una apariencia y desarrollo promedio. Donde
la apariencia de los árboles sea diferente al promedio (tamaño, vigor, carga, color de
hojas, etc.) no se muestrea o se toma como una muestra separada (ejemplo: una
muestra que represente el sector con vigor normal y otra el sector con vigor bajo).
La comparación de análisis a pares de muestras, representando árboles deficientes
y normales, a veces es útil, especialmente cuando no se dispone de estándares o
rangos de referencia validados.
La época de muestreo depende de la especie, sin embargo, si se observan síntomas
de desórdenes nutricionales, es recomendable muestrear cuando aparecen los
primeros síntomas, ya que, si las plantas se encuentran con estrés por períodos
largos, se afectará el rendimiento, la calidad y pueden aparecer problemas
secundarios como enfermedades.
La hoja o tejido que se muestrea también depende de la especie. En cada unidad de
muestreo se tomarán muestras a un mínimo de 30 árboles, sacando una o dos hojas
por árbol, de la periferia, a la altura del hombro, alternando las exposiciones norte-
sur y este-oeste. No debe mezclar hojas de árboles enfermos y sanos, de diferentes
edades o estados fenológicos. La cantidad de hojas que se muestrea son entre 40 a
100, dependiendo de la especie y/o el tamaño de las hojas, las que deben ser
colocadas en una bolsa de papel limpia.
La bolsa con la muestra debe identificarse claramente, indicando el nombre del
cuartel, especie, variedad, edad, fecha de muestreo y una observación en caso de
existir alguna anormalidad. Es deseable informar el vigor, carga actual, rendimiento
anterior y fertilización empleada. Además, debe adjuntar los siguientes
antecedentes:
 Nombre del productor y del predio
 Ubicación del predio: dirección, localidad, comuna, región
 Datos para la facturación: Rut, razón social, dirección, comuna, giro, teléfono
 Análisis solicitado y teléfono, celular y/o mail para contacto.

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Las muestras deben ser enviadas al laboratorio lo antes posible, o bien almacenarlas
en un lugar fresco o la parte baja del refrigerador por un período no superior a tres
días.
Análisis sugeridos: Foliar completo (N-P-K-Ca-Mg-Zn-Mn-Fe-Cu). Incluir B si hay
problemas de cuaja o antecedentes de carencia o exceso de este elemento. En
zonas con salinidad o cultivos sensibles a esta, solicitar Cl y Na.

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Imagen N° 15: Formulario ingreso análisis foliar.

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Imagen N° 16: Resultados de análisis foliares.

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Imagen N° 17: Interpretación análisis foliar.
El análisis foliar, evidencia que existe una deficiencia de nitrógeno, elemento esencial para
el desarrollo del cultivo, debido a que este nutriente se la planta lo utiliza para la generación
de hojas. Este nutriente requiere de la aplicación de grandes cantidades para poder alcanzar
su nivel óptimo en el cultivo. La deficiencia de este nutriente provoca bajos rendimientos,
hojas amarillentas, entre otros síntomas.
EL magnesio es un nutriente que está involucrado directamente en el proceso de fotosíntesis
que se desarrolla en las hojas del cultivo, una deficiencia de este nutriente baja los
rendimientos del cultivo.
Respecto a las plantas, es uno de los elementos que más contribuyen al funcionamiento de
varios procesos biológicos incluyendo la fotosíntesis, la respiración y la asimilación de
nitrógeno. También interviene en la germinación del polen, el crecimiento del tubo polínico,
el alargamiento celular en la raíz y la resistencia a patógenos de la misma.
Los síntomas de deficiencia de manganeso, que a menudo se asemejan a los de la deficiencia
de hierro, son: clorosis intervenal (hojas amarillas con venas verdes) en las hojas jóvenes y,
en ocasiones, manchas bronceadas hundidas en las áreas cloróticas intervenales. También el
crecimiento de las plantas puede verse disminuido y retrasado. La deficiencia de manganeso
puede surgir cuando el pH del sustrato de cultivo es superior a 6,5, pues dicho elemento es
fijado y pierde disponibilidad para su absorción. Asimismo, la deficiencia puede presentarse
debido a bajos índices de aplicación de fertilizante, al empleo de fertilizantes para usos
múltiples (cuyo contenido de micronutrientes normalmente es menor), a la lixiviación
excesiva o a demasiadas aplicaciones de quelato de hierro.
ANÁLISIS FOLIAR
AGRICULTOR ADECUADO JUN-JUL FERNANDO MIRANDA
FECHA DE MUESTREOUNIDAD 13/10/2019
PREDIO LOTE 9 SEC BAJO MATILLA
MACROELEMENTOS
NITRÓGENO % 2,2-2,5 1,98 BAJO
FOSFORO % 0,12-0,16 0,30 ALTO
POTASIO % 0,7-1,1 2,69 ALTO
CALCIO % 3,0-5,6 3,45 ADECUADO
MAGNESIO % 0,25-0,7 0,19 BAJO
MICROELEMENTOS
FIERRO ppm 60-120 62 ADECUADO
MANGANESO ppm 25-200 14 BAJO
ZINC ppm 25-100 18 BAJO
COBRE ppm 5 -16 11 ADECUADO
BORO ppm 30-100 350 EXCESIVO
ESTADO

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El zinc activa las enzimas responsables de la síntesis de ciertas proteínas. Es utilizado en la
formación de clorofila y algunos carbohidratos, y en la conversión de almidones en azúcares;
su presencia en el tejido foliar ayuda a las plantas a resistir las bajas temperaturas. Es
fundamental en la formación de auxinas, mismas que coadyuvan a la regulación del
desarrollo y a la elongación del tallo.
Como sucede con la mayoría de los micronutrientes, el zinc es inmóvil; es decir, los síntomas
de deficiencia de este elemento se presentan en las hojas nuevas. Dichos síntomas varían en
función de cada tipo de cultivo. Normalmente, se manifiestan como un patrón inconsistente
de clorosis (a menudo intervenal) en las hojas nuevas; además, pueden presentarse manchas
necróticas en las orillas o en las puntas de las hojas. Estas nuevas hojas son más pequeñas y
con frecuencia están torcidas hacia arriba o deformes. Los entrenudos se acortan, dándole a
la planta un aspecto de escarapela; el desarrollo de los botones es pobre, por lo que se el
florecimiento y las ramificaciones se reducen.
El boro se usa con calcio en la síntesis de las paredes celulares y es esencial para la división
celular (creación de células de plantas nuevas). Los requisitos de boro son mucho más altos
para el crecimiento reproductivo, por lo que ayuda con la polinización y el desarrollo de
frutas y semillas. Otras funciones incluyen la traslocación de azúcares y carbohidratos, el
metabolismo del nitrógeno, la formación de ciertas proteínas, la regulación de niveles de
hormonas y el transporte del potasio hacia los estomas (lo que ayuda a regular el equilibrio
interno del agua). Como el boro ayuda a transportar azúcares, su deficiencia causa una
reducción de exudados y azúcares en las raíces de la planta, lo que puede reducir la atracción
y colonización de hongos micorrícicos.
La toxicidad por boro es similar a las toxicidades por otros micronutrientes, en las que las
hojas más viejas comienzan a mostrar clorosis marginal o en las puntas de las hojas que
pronto se vuelven necróticas o se queman. La necrosis progresa hacia el interior de la hoja y
causa su muerte y defoliación. Puede afectar rápidamente a todas las hojas inferiores. El
intervalo entre una velocidad de aplicación correcta y una aplicación tóxica es muy pequeño.
Si ocurre una toxicidad por boro, realice una prueba de los niveles de pH y de nutrientes del
sustrato y también realice una prueba del agua. La toxicidad por boro puede ocurrir si el pH
del sustrato está por debajo de los 5,5 o si hay una aplicación excesiva de boro. Verifique la
fuente del agua, ya que los niveles por sobre 0,5 ppm son considerados altos, especialmente
cuando se combina con fertilizantes estándar que contienen boro. Lixiviar el sustrato ayudará
a eliminar el exceso de boro y está comprobado que la aplicación de un fertilizante que
contenga calcio restringe el boro y lo deja indisponible.

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3.4. ANÁLISIS MULTI RESIDUAL EN FRUTOS: El propósito que tiene realizar análisis
multiresidual en frutos de limón de Pica, es poder detectar la presencia de cualquier
residuo de plaguicida que esté presente en el fruto. Se entiende como residuo de
plaguicida a cualquier sustancia que presente en los alimentos, productos agrícolas
o alimentos animales como consecuencia del uso de un plaguicida. El término
incluye cualquier derivado de un plaguicida, tales como productos de conversión,
metabolitos y productos de reacción, y las impurezas consideradas de importancia
toxicológica. Así pues, los residuos de plaguicidas son uno de los efectos nocivos que
más preocupan en la actualidad, ya que pueden ser una amenaza para la salud
pública.
PAUTA DE MUESTREO: Las muestras fueron analizadas en el laboratorio denominado
CORTHORN QUALITY CHILE S.A. Por estos motivos se siguió su pauta de muestreo
para poder tomar la muestra y enviarlas a laboratorio.
La toma de muestra constituye una de las etapas más importantes en todo análisis,
porque debe reflejar con exactitud las condiciones existentes en el momento del
muestreo. Por lo tanto, la extracción debe efectuarse utilizando material técnico
adecuado y limpio, evitando contaminaciones cruzadas con cualquier producto o
elemento ajeno a ella.
Los procedimientos operatorios indicados en este documento se han reconocido en
la práctica como aptos y se recomienda su uso en frutas y hortalizas frescas. Se
admite, sin embargo, que es difícil establecer reglas fijas válidas para todos los casos
y que circunstancias particulares pueden hacer deseable la modificación del método
en determinados puntos.
El muestreo deberá realizarse de manera que las tomas de muestras sean
representativas de todas las características del lote.
Las frutas deberían llegar al laboratorio en exactamente las mismas condiciones en
que se encontraba en el momento de ser extraídas, por ende, durante para su toma
o transporte, se deben tomar las medidas necesarias para minimizar alteración de
su ambiente inicial.
No considere como muestra cualquier fruto con daños, aun cuando sean causados
en el mismo muestreo.

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1
Tamaño de la muestra
Este punto se refiera a la cantidad de producto que debe ser enviado a laboratorio,
para el análisis de residuo(s) de pesticida(s).
Método de muestreo
La toma de muestras deberá realizarse al azar en diversas zonas y a distintos niveles
del lote.
Huertos agrícolas
Sobreponga una rejilla imaginaria en el huerto-sector-cuartel que será muestreado,
obteniendo aproximadamente 100 áreas.
Seleccione aleatoriamente 10 áreas para formar una muestra representativa de
campo.
De cada una de estas 10 áreas, obtenga lo siguiente:
 Frutales mayores: 1 fruto por área (1.3 a 1.5 kg de fruta)
 Frutales menores: 50-70 g por área (0.5 a 0.7 kg de fruta)
 Hortalizas: Obtener el mayor número de matas/frutos hasta conformar 1 kg
aproximadamente.
Materiales, transporte e identificación
 Bolsas de papel kraft o cartón
 Gelpack
 Etiquetas
 Bolsa plástica (polietileno)
 Cinta adhesiva
 Caja aislapol

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2
Embalaje: Las muestras obtenidas, deberán ser embaladas preferentemente en
bolsas nuevas de papel kraft. En su defecto, pueden utilizarse bolsas de cartón
nuevas, sin textos impresos (la tinta puede alterar la lectura del cromatógrafo). Una
vez cerrado el envoltorio de papel, debe ser introducida en una bolsa de polietileno,
la cual protege al envase primario, evitando que haya ruptura.
Identificación: Todas las muestras obtenidas, deberán estar correctamente
identificadas. Para ello, se utilizará la “Etiqueta individual / identificación de muestra
(pesticidas)”. Esta etiqueta debe insertarse entre la bolsa de papel y de polietileno.
Utilizar en la etiqueta rotuladores de tinta resistente al agua.
Condiciones de transporte: Con el fin de mantener una muestra sin alteraciones
físicas/químicas/biológicas, es necesario que la fruta se envíe en forma refrigerada.
Para esto, es necesario disponer de gelpack en el interior de la caja de aislapol o
nevera (se sugiere 15 unidades de gelpack por caja), a fin de recibir en laboratorio
una muestra con + - 10°C.
Sin embargo, es aceptable la recepción de muestras sin refrigeración obtenidas
durante el mismo día o cuando exista un tiempo transcurrido desde su toma hasta
no mayor a 24 horas). De todos modos, es recomendable proteger las muestras del
sol directo. Si las muestras tomadas no son enviadas dentro de las 18 hrs., considere
congelar la muestra después de su recogida, de esta manera se pueden acumular
varias muestras para un envío.
Condiciones de envío: La(s) muestra(s) obtenida(s), deberá(n) ser enviada(s) por
Courier o por otro medio, a las oficinas centrales de CORTHORN QUALITY (CHILE) S.A.

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Imagen N° 18: Solicitud de análisis multiresiduos.

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Imagen N° 19: Hoja 1 resultados análisis multiresiduos.

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Imagen N° 20: Hoja 2, análisis multiresiduos.

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Imagen N° 21: Hoja 3 análisis multiresiduos.
INTERPRETACIÓN DE ANÁLISIS MULTIRESIDUAL: De acuerdo a los análisis obtenidos, podemos
concluir que los frutos se encuentran libres de cualquier residuo de plaguicida, así como de
sus derivados.

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4. EVALUACIÓN INDICADORES DESDE AL AÑO 2017 AL AÑO 2019
El productor a sometido su proceso productivo aun cambio profundo en el sistema de
fertilización utilizada, pasando de la utilización de fertilizantes de origen químico a uno
completamente orgánico. El cambio de sistema de fertilización a tenido un efecto en el suelo
y como estos nutrientes se comportan a nivel foliar, que iremos analizando durante el
desarrollo de esta unidad.
En el periodo 2017 no se realizó análisis de fertilidad del suelo, motivos por los cuales no se
pueden comparar estos parámetros, sin embargo, se dispone de información de análisis de
salinidad del suelo y análisis de fertilidad foliar.
4.1. COMPORTAMIENTO DEL SUELO DURANTE PROCESO 2017 – 2019
Imagen N° 22: Cuadro comparativo análisis de salinidad periodo 2017 -2019
De acuerdo a la imagen N° 22, que compara la información obtenida desde el año 2017 al
año 2019, podemos observar que por un lado el PH de suelo se ha incrementado, pasando
desde un suelo con PH 7.4 a uno con PH 7.6, si bien el progreso no es muy significativo sería
importante evaluar este factor debido a que puede resultar en una tendencia al alza de esta
variable que es importante controlar.
Lo más significativo es que los parámetros asociados a un suelo salino, han disminuido
considerablemente al eliminar el uso de fertilizantes químicos, que en esencia corresponden
a “Sales” que se le incorporan al suelo.
La conductividad eléctrica, el calcio, el sodio y el boro estaban en una condición de excesivo
en el año 2017, sin embargo, estos elementos han disminuidos drásticamente alcanzando
niveles adecuados o bajos, lo que permite concluir que el manejo realizado a mejorado la
salud del suelo al disminuir los elementos que tienen relación con una excesiva salinidad.
ANÁLISIS SUELO SALINIDAD
AGRICULTOR VALORES NO FERNANDO MIRANDA ESTADO FERNANDO MIRANDA
FECHA DE MUESTREO UNIDAD ADECUADOS* 18/07/2017 18/07/2017 18/07/2017
PREDIO
pH > 8,5 7,4 ADECUADO 7,6 ALTO
C.E. dS/m > 4,0 7,2 EXCESIVO 1,1 MEDIO
RAS > 15 6,7 ADECUADO 4,5 ADECUADO
CALCIO meq/l 33,3 EXCESIVO 3,4 ADECUADO
MAGNESIO meq/l 4,5 ADECUADO 0,6 ADECUADO
POTASIO meq/l 3,9 ADECUADO 0,58 MEDIO
SODIO meq/l > 30,0 29,2 ALTO 6,3 MEDIO
CLORURO meq/l > 30,0 24 ADECUADO 2,2 BAJO
SULFATO meq/l 16 ADECUADO 4,8 ADECUADO
BICARBONATO meq/l > 8,5 5,8 ADECUADO 4,7 ADECUADO
BORO meq/l > 3,0 4,7 EXCESIVO 2 ADECUADO
ESTADO
2019

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8
Al controlar la salinidad, también el boro que es un elemento problemático cuando se
encuentra en exceso ha disminuido considerablemente desde una cantidad problemática en
el año 2017 a un indicador considerado adecuado en el año 2019.
4.2. COMPARACIÓN ANÁLISIS FOLIAR PERIODO 2017 – 2019.
Imagen N° 23: Cuadro comparativo de nutrientes en follaje periodo 2017 - 2019
De acuerdo a la información obtenida en el cuadro comparativo, de los niveles de elementos
fertilizantes en el follaje podemos observar, que, a nivel de macronutrientes, el nitrógeno se
encuentra en un nivel deficiente en el año 2019, ha disminuido su disponibilidad en un 38%,
por lo que se sugiere aumentar la fertilización con nitrógeno.
A nivel de micro elementos, debido al mejor control de la salinidad, han aumentado la
disponibilidad de Calcio, fierro y cobre, lo que indica una mejora en la salud del cultivo.
El boro es un elemento que ha aumentado su disponibilidad desde 188 a 360, con un
incremento del 88%, situación que sería buena controlar.
ANALISIS FOLIAR
AGRICULTOR FERNANDO MIRANDA ESTADO FERNANDO MIRANDA ESTADO
FECHA DE MUESTREO UNIDAD 18/07/2017 2017 13/10/2019 2019
PREDIO LOTE 9 LOTE 9
NITRÓGENO % 2,2-2,5 3,20 ALTO 1,98 BAJO -38,13
FOSFORO % 0,12-0,16 0,33 ALTO 0,30 ALTO -9,09
POTASIO % 0,7-1,1 2,00 ALTO 2,69 ALTO 34,50
CALCIO % 3,0-5,6 2,00 BAJO 3,45 ADECUADO 72,50
MAGNESIO % 0,25-0,7 0,19 BAJO 0,19 BAJO 0
FIERRO ppm 60-120 52 BAJO 62 ADECUADO 19,23
MANGANESO ppm 25-200 13 BAJO 14 BAJO 7,69
ZINC ppm 25-100 24 BAJO 18 BAJO -25,00
COBRE ppm 5 -16 7 ADECUADO 11 ADECUADO 57,14
BORO ppm 30-100 188 EXCESIVO 350 EXCESIVO 86,17
DIFERENCIAL
FERNANDO
MIRANDA EN %
ADECUADO JUN-
JUL

3
9
4.3. COMPORTAMIENTO DEL AGUA PERIODO 2017 – 2019
Imagen N° 24: Comparación análisis físico químico del agua periodo 2017 - 2019
EL agua utilizada para riego es en general de excelente calidad, solo el PH es un poco elevada
y en el año 2017 el boro era un elemento se encontraba en un nivel alto, durante el año
2019, los indicadores están todos en su nivel adecuado.
AGRICULTOR VALORES NO FERNANDO ESTADO FERNANDO
FECHA DE MUESTREO ADECUADOS MIRANDA MIRANDA
PREDIO 2017 2019
pH > 7,5 7,85 ALTO 7,82 ALTO
C.E. dS/m > 3,0 1,20 ADECUADO 1,00 ADECUADO
RAS > 9,0 5,60 ADECUADO 4,00 ADECUADO
% SODIO 63,60 62,50
DUREZA >320 181,00 ADECUADO 155,00 ADECUADO
CATIONES Y ANIONES
CALCIO meq/l 3,40 3,00
MAGNESIO meq/l 0,22 0,10
POTASIO meq/l 0,15 0,14
SODIO meq/l >9 6,60 ADECUADO 5,40 ADECUADO
CLORURO meq/l >10 3,80 ADECUADO 2,40 ADECUADO
SULFATO meq/l 6,30 6,10
BICARBONATO meq/l >8,5 2,40 ADECUADO 1,30 ADECUADO
NITRÓGENO AMONIACAL mg/l 1,40 1,00
NITRÓGENO NÍTRICO mg/l 5,10 12,50
FOSFORO mg/l 0,05 0,05
ARSÉNICO mg/l >0,1 0,01 ADECUADO 0,05 ADECUADO
BORO mg/l >2 2,20 ALTO 1,70 ADECUADO
CADMIO mg/l 0,01 0,01
COBRE mg/l >0,2 0,01 ADECUADO 0,01 ADECUADO
HIERRO mg/l 0,01 ADECUADO 0,01
MANGANESO mg/l >0,2 0,01 ADECUADO 0,01 ADECUADO
PLOMO mg/l >5 0,01 ADECUADO 0,01 ADECUADO
ZINC mg/l >2 0,01 ADECUADO 0,01 ADECUADO
ANÁLISIS AGUA FÍSICO QUÍMICO
UNIDAD ESTADO

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0
Imagen N° 25: Comparación análisis de agua bacteriológico periodo 2017 - 2019
En relación a los datos obtenidos de los análisis, podemos concluir que durante el año 2019,
se detectó la presencia de coliformes totales, en el estanque de riego, por lo que se sugiere
mejorar el cierre del estanque para evitar el ingreso de animales que generen contaminación
del agua de riego.
FUENTE UNIDAD
FERNANDO
MIRANDA
2017
ESTADO
2017
FERNANDO
MIRANDA 2019
ESTADO 2019
POZO
COLIFORMES TOTALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA <1,8 AUSENCIA
COLIFORMES FECALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA <1,8 AUSENCIA
ESCHERICHIA COLI NMP/100ML <1,8 AUSENCIA <1,8 AUSENCIA
ESTANQUE
COLIFORMES TOTALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA 1300 PRESENCIA
COLIFORMES FECALES NMP/100ML <1,8 AUSENCIA <1,8 AUSENCIA
ESCHERICHIA COLI NMP/100ML <1,8 AUSENCIA <1,8 AUSENCIA

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1
5. PROPUESTAS DE MEJORAS AL PLAN DE MANEJO.
5.1. MEJORAR CONDICIONES DE SUELO
GUANO AVÍCOLA: De acuerdo a los análisis de suelo realizados, existe una deficiencia de
nitrógeno en el suelo, esto se debe a que se dejó aplicar fertilizantes nitrogenados de
origen químico como la urea y la línea de fertilizantes ultra sol, estos fertilizantes tienen
una gran cantidad de nitrógeno y al no ser aplicados hay que buscar la manera de
aumentar el nitrógeno pero que provengan de fuentes naturales y estén de acordó a los
principios de la agricultura orgánica.
En general el guano de aves es una buena fuente de nitrógeno, podemos utilizar el guano
de aves marinas, particularmente el guano blanco que tiene un 20% de nitrógeno,
además podemos usar el guano provenientes de avícolas, que también tienen un alto
porcentaje de nitrógeno y finalmente en Arica se produce un fertilizante natural de
buena calidad llamado NORTERRA, que es un producto que se obtiene de los desechos
de las avícolas y pasan por un sistema de compostaje que facilita la degradación de los
elementos.
COMPOST: El compost es un buen fertilizante orgánico, usado ampliamente en la
agricultura orgánica. Se recomienda aumentar la dosis aplicada actualmente, para
aumentar el contenido de materia orgánica del suelo y el nitrógeno disponible.
APLICACIÓN DE SULFATO DE CALCIO O YESO AGRÍCOLA: El sulfato de calcio, también
conocido como yeso agrícola, es una enmienda que se aplica el suelo con el objetivo de
bajar el PH del suelo y facilitar el lavado de sales del mismo. Entre sus principales
propiedades podemos encontrar:
 Estimula el crecimiento radicular y vegetativo de los cultivos, favoreciendo la
actividad de las bacterias fijadoras de nitrógeno.
 Recupera suelos sódicos: El Yeso Agrícola se utiliza como enmienda en suelos
alcalinos con elevados niveles de sodio, en los cuales reacciona con el sulfato
proveniente del producto formando sulfato de sodio, que es altamente soluble y
puede ser eliminado del área de influencia de las raíces mediante riegos profundos.
 Corrige suelos alcalinos que disminuyen la productividad: El Yeso Agrícola reacciona
con las sales acumuladas en el suelo haciéndolas más solubles facilitando el drenaje
y labores de suelo.
 Es factible su uso en agricultura orgánica por ser un producto natural y no tóxico.
La dosis recomendada es de 400 kg por hectárea por año, de manera que la aplicación
debiera ser de al menos 1 kg de sulfato de calcio por árbol.

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2
5.2. APLICACIONES FOLIARES: Uno de los principales problemas que presenta el
programa de fertilización, es el PH del suelo, a esos PH 7,6 a 7,8, hay muchos de los
micro elementos que no se absorben bien, debido a las características naturales del
suelo.
Imagen N° 26: Cuadro de absorción de nutrientes a un determinado pH.
Como se describe en el grafico anterior, la línea roja representa el Ph 7,5 y cómo podemos
observar a este PH el fosforo, el Fierro, el manganeso, el cobre y el zinc tienen una absorción
limitada. Por estos motivos se recomienda la aplicación de fertilización vía foliar, de manera
de no pasar por el suelo y llegar directamente a las hojas en donde la absorción de los
nutrientes no tiene esa limitación.

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3
APLICACIÓN DE HUMUS VÍA FOLIAR: EL humus es el producto de la descomposición de la
materia orgánica realizada por las lombrices de suelo, es uno de los mejores fertilizantes
orgánicos y tiene las siguientes propiedades:
 Tiene buenos niveles de macronutrientes (nitrógeno, fósforo, potasio, calcio, azufre
y magnesio) y micronutrientes (zinc, hierro, cobre, molibdeno y cloro)
 Ofrece una rica y variada flora microbiana y una gama enorme de fitorreguladores,
que trabajan mejorando la fertilidad natural del suelo;
 Recupera suelos agotados y no es tóxico para las plantas, animales ni humanos.
 Proporciona un equilibrio nutricional a las plantas porque contiene sustancias que se
liberan lentamente. Con ello, mejora la calidad de las cosechas, haciéndolos más
saludables y duraderas
 Adelanta y prolonga los periodos de floración y fructificación.
 Mejora las propiedades físicas del suelo.
 Libera nutrientes lentamente lo que ayuda a que la fertilización sea más eficaz y
prolongada.
 Humedad – este compuesto ayuda a retener la humedad en el suelo por más tiempo.
 Compresión – humus evita la compresión de los suelos de arcilla y contribuye a
mejorar los suelos arenosos.
 Fertilizante foliar – cuando el humus se diluye en agua puede utilizarse como un
fertilizante foliar que ayuda a prevenir la aparición de diversas plagas.
PREPARACIÓN DE TE DE HUMUS: El té de humus, es un fertilizante de fácil preparación y que
permite la aplicación de la solución al follaje del cultivo, para esto necesitamos un bidón de
200 litros llenos de agua. En un saco se incorporar 10 kilos de humus de lombriz, se dejan en
el bidón de 200 litros por 7 días, revolviendo el saco dentro del balde al menos una 5 veces
por día.
Una vez que han transcurrido los 7 días, se filtra la solución que se obtiene para luego ser
aplicado al cultivo vía foliar.
Se recomienda realizar aplicaciones de té de humus de lombriz cada 3 meses, realizando una
aplicación al follaje de manera completa.

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4
6. CONCLUSIONES
El Plan de manejo de los predios asociados al Profo de productos del Oasis, es una guía
metodológica para mejorar de manera integral el manejo del predio, con el objetivo de
aumentar el rendimiento en la producción y rentabilizar la explotación, logrando elevar los
niveles productivos del predio, aumentando los ingresos productos de la mejora de calidad
del fruto y de la cantidad de producto obtenido por superficie cultivada.
Para poder evaluar los resultados obtenidos, producto de la mejora en los manejos es
necesario poder tener información cuantitativa, que permita determinar el estado de la
fertilidad del cultivo, como además pueda indicar como está el suelo considerando las
condiciones de salinidad presentes naturalmente en el ambiente donde se realiza el cultivo,
que es el Oasis de Pica.
El manejo aplicado por el Sr. Fernando Miranda, que ha realizado el tránsito desde un predio
con una agricultura tradicional, es decir, que incorpora en sus procesos productivos, el uso
de agroquímicos, principalmente para los procesos de fertilización y control de plagas y
enfermedades. El manejo hoy se realiza completamente de manera orgánica, incorporando
el compostaje y el humus de lombriz como fuentes principal de elementos nutricionales, ha
generado un impacto positivo en el cultivo, principalmente al disminuir considerablemente
la salinidad presente en el suelo, sin embargo es necesario reforzar la aplicación de nitrógeno
es un elemento que el cultivo requiere en grandes cantidades, el desafío es encontrar
fuentes de nitrógeno orgánicos y que sean accesibles desde un punto de vista económico y
logístico.
Finalmente dada las características del suelo, que tiene un Ph elevado, se recomienda la
aplicación de fertilizantes líquidos de manera foliar, con el objetivo de poder llegar
directamente a las hojas, donde ocurre el proceso de fotosíntesis sin pasar por las raíces y el
suelo que impiden el ingreso de algunos nutrientes al cultivo. En ese sentido el humus de
lombriz es uno de los mejores fertilizantes disponibles para el uso en agricultura orgánica y
puede transformarse en un fertilizante líquido, mediante la técnica del té de humus, que
requiere una baja inversión y es totalmente realizable en el predio.
***

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