Manual clínico-quirúrgico veterinario

Centro Veterinario de Diagnóstico e Investigación
CEVEDI
Escuela de Medicina Veterinaria
UNAN – LEON
Abril 2010
MANUAL DE CLÍNICA, CIRUGÍA Y LABORATORIO
VETERINARIO

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INDICE
Contenido Páginas
Portada 1
Índice 2
Autores y Colaboradores 3
Técnicas Exploratorias 4
Introducción
Métodos de Exploración
Inspección
Palpación
Percusión
Auscultación
Historia Clínica
Reseña
Anamnesis
Inspección General
Cómo se toma la temperatura
Temperatura rectal más alta
Temperatura rectal más baja
Temperatura normal de los animales domésticos
Frecuencia Cardíaca y Pulso
Dónde tomar el pulso
Frecuencia respiratoria
Modificaciones fisiológicas de la frecuencia respiratoria
Modificaciones patológicas
Exploración de Ganglios y Movimientos Ruminales
Fecuencia Ruminal
Exploración de Ganglios
BIOPATOLOGÍA 22
Introducción
Hematológico
Recogida de la muestra
Medidas a tomar para el transporte de la muestra de sangre al laboratorio
Examen Hematológico
Evaluación del Hematocrito
Evaluación de la serie blanca
Recuento manual de glóbulos blancos
Recuento diferencial de glóbulos blancos
Métodos de Tinción
Examen General de Orina

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Introducción
Recogida de la muestra
Examen de orina
Examen Físico
Examen Químico
Examen del Sedimento
FARMACOLOGÍA Y VÍAS DE ADMINISTRACIÓN DE FÁRMACOS 31
Definición
Conceptos
Principio Activo
Amplio Espectro
Corto Espectro
Dosis
Presentación
Vías de Administración de Fármacos
Definición
Factores a considerar para la elección del sitio de aplicación
Especie a dosificar
Factores inherentes al fármaco
Tipo de Acción o Efecto buscado
Interacciones negativas entre diferentes medicamentos
Clasificación
Parenteral
Cutánea o piel
Mucosas
Inhalable
Inyectable
Oral o Enteral
BASES DE LA ANESTESIA VETERINARIA 37
Concepto de anestesia
Clases de Anestesia
Anestesia Local
Anestesia Regional
Anestesia General
Indicaciones de la Anestesia General
Fases Técnicas de la Anestesia General
Evaluación preoperatoria del paciente (valoración preanestésica)
Objetivos de la valoración preanestésica (evaluación preoperatoria)
Preparación del paciente
Técnicas de anestesia general inyectable

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Introducción
Indicaciones de las técnicas de anestesia inyectable
Ventajas e inconvenientes de las técnicas de anestesia inyectable
Equipamiento técnico necesario
Técnicas de anestesia inyectable
Anestesia local y regional
Introducción
Concepto
Indicaciones de la anestesia local
Mecanismo de acción de los anestésicos locales
Anestésicos locales más empleados
Lidocaína
Mepivacaína
Bupivacaína
Técnicas de anestesia local y regional
Anestesia local
Anestesia por infiltración
Anestesia regional
Anestesia paravertebral
Anestesia epidural
Anestesia general en rumiantes
Sedación
Anestésicos disociativos
Anestesia en equinos
Preparación del paciente
Preanestesia
Mantenimiento anestésico
Suturas en especies mayores, menores y de interés doméstico en Nicaragua
Generalidades e indicaciones
Instrumental de sutura
Agujas quirúrgicas
Portaagujas
Pinzas
Mangos y hojas de bisturí
Tijeras
Hemostáticos
Materiales de sutura
Clasificación y descripción de los materiales de sutura
Absorbibles
Suturas Sintéticas Absorbibles
Materiales de sutura no absorbibles
Suturas metálicas

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El nudo de cirujano
Sutura con puntos simples interrumpidos
Sutura recurrente o en ¨U¨ horizontal
Sutura simple en equis ¨X¨
Patrones de de sutura continua
Continua simple
Castración
Técnicas de castración (Orquidectomia)
Técnica de castración cerrada
Técnica de castración abierta
Hernias abdominales
Concepto
Componentes
Tipos de hernias abdominales
Etiología
Signos clínicos
Diagnóstico
Diagnóstico diferencial
Tratamiento quirúrgico de las hernias
Cierre del anillo con tejido local
MICROBIOLOGÍA VETERINARIA Y DIAGNÓSTICO LABORATORIAL 73
Introducción
Toma, conservación y envío de las muestras
Técnica de punción venosa
Técnicas de sangrado en perro y gato
Toma de muestra de orina
Sondaje en machos
Sondaje en hembras
Recolección de muestra de heces
Recolección de muestras de leche para pruebas bacteriológicas
Recolecta de órganos y tejidos
Normas generales del uso de los laboratorios
Manipulación de microorganismos
Siembra por extensión
Medios de cultivo
Preparación de placas de medios sólidos
Esterilidad y contaminación
Aislamiento y recuento de bacterias
Técnicas de aislamiento para la obtención de cultivos puros
Efecto de factores ambientales sobre el crecimiento
Incubación de bacterias aerobias

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Incubación de bacterias anaerobias
Antibiograma
Observación de bacterias al microscopio
Preparaciones de observación en fresco
Tinciones
Preparación de extensiones de cultivos bacterianos para tinciones
Tinciones simples
Tinciones diferenciales

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Autores:
MSc. José Luis Bonilla, DMV.
Profesor Principal, Microbiología e Inmunología Veterinaria
Dpto. Sanidad Animal
Director CEVEDI
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Dr. Daniel Morales Arancibia
Profesor Principal, Patología Quirúrgica Veterinaria
Sub-Director Escuela de Medicina Veterinaria
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Dr. William Jirón Toruño
Profesor Principal, Patología Veterinaria
Director Escuela de Medicina Veterinaria
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Dr. Luis Alberto Salgado
Joven Investigador
Centro Veterinario de Diagnóstico e Investigación (CEVEDI)
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Colaboradores:
Dra. Vanessa Rivas Lara
Ayudante de Cátedra
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Dra. Deysi García
Ayudante de Cátedra
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Lic. Byron Flores Somarriba, MSc.
Bioanálisis Clínico y Microbiología
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Técnicas Exploratorias
Introducción
Podemos definir la propedéutica clínica, como la parte de de la patología general que nos
enseña las bases o fundamentos que sirven para intervenir en patologías que atacan a los
mamíferos. Lo que es lo mismo, la ciencia que nos enseña las bases para el estudio de la
enfermedad a través de la observación directa del enfermo.
Para conseguir este objetivo la propedéutica clínica cuenta con dos secciones: la
Semiotecnia y la Semiología.
La Semiotecnia es la parte de la propedéutica clínica que nos enseña la forma correcta de
recoger los síntomas.
La semiología es la parte de la propedéutica clínica que nos enseña a interpretar esos
síntomas y a transformarlos en signos de enfermedad de utilidad diagnostica.
Métodos de Exploración
Consiste en la aplicación de nuestro sentidos corporales, bien directamente o apoyados por
aparatos, para recoger el mayor numero de síntomas posibles del animal enfermo. Los
métodos de exploración se clasifican en:
 Primarios: Inspección, Palpación, Percusión y auscultación.
 Secundarios: Mensuración, Olfacción, Endoscopia, Ecografía, etc.
 Terciarios: Análisis Clínico.
Inspección
Consiste en la aplicación del sentido de la vista para la recogida de síntomas sobre el animal
enfermo. Permite poner en evidencia cambios en la forma, en el tamaño, en el color y en los
movimientos. Puede ser:

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 Externa: en la que observamos el exterior del animal.
 Interna: trata de observar cavidades, así como el interior de órganos accesibles. A
esta se le denomina inspección mediata ya que requiere de determinados
instrumentos para su empleo.
 General: se realiza una visión de conjunto
 Particular: fijando nuestra atención en órganos o sistemas concretos.
 Estatica: observando al animal, o a sus diferentes partes, en estado de reposo.
 Dinámica: fijándonos en los movimientos.
Los instrumentos que utilizamos en la exploración mediata y que permiten acceso y
visualización de las cavidades reciben el nombre de espéculos. Estos pueden ser:
Espéculos Vaginales Espéculos Vaginales

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 Palpación
Procedimiento de exploración que consiste en la aplicación del sentido del tacto para recoger
signos externos o internos de los animales
En función de cómo se realice recibe diferentes nombres:
 Palpación propiamente dicha: con los dedos.
 Tacto: se realiza con un solo dedo en el caso de la exploración rectal de los pequeños
animales.
 Palpoprecion: puede realizarse con el puño o con la mano abierta.
Mediante este proceso exploratorio podemos apreciar la sensibilidad, Consistencia,
Temperatura, Movilidad, Forma, Tamaño, Límites y Superficies. Siempre debe de realizarse
de forma ordenada y simétrica. A su vez la inspección puede ser directa o indirecta la
primera se realiza sin aparatos y la segunda utilizamos aparatos.
Endoscopios

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Percusión
Consiste en golpear el cuerpo del animal para provocar un sonido. Este puede ser:
Inmediata o Directa
 Percusión Mediata o indirecta.
Se coloca el dedo índice en forma de
gancho y se golpea directamente sobre el
cuerpo del animal.
Se coloca los dedos índice de la mano izquierda
fuertemente adherido a la zona a percutir y se
golpea sobre ellos
Con los dedos Digito-digital

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Tipos de percusión
 Superficial o laminal: es aquella que tiene como fin de limitar los diferentes órganos.
 Profunda o Cualitativa: pretende localizar lesiones dentro de los órganos.
 Percusión palpatoria: se le da este nombre a la digito-digital.
 Percusión auscultatoria: se realiza en pruebas concretas (Broncofonía) y consiste
en auscultar al mismo tiempo que se percute.
 Sucucion: consiste en golpear con el martillo en zonas donde se sospecha que existe
líquido para poder captar el ruido de chapoteo que produce ese líquido.
Existen tres sonidos fundamentales
 Mate: se produce en órganos macizos, Músculos, huesos y órganos huecos que
contienen líquidos o aire a alta presión.
 Claro: se origina al percutir órganos con tejido y aire que se comunican con el
exterior.
 Timpánico: lo producen órganos huecos llenos de aire a presión moderada.
Auscultación
Es la aplicación del sentido del oído para recoger ruidos que, de forma natural, se producen
en el organismo animal o provocamos nosotros.
La auscultación puede ser:
 Directa: sin aparatos, apoyando la cabeza sobre el cuerpo del animal.
 Instrumental: utilizando aparatos que faciliten la audición como:

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Ruidos fisiológicos que podemos auscultar.
 Sonidos Respiratorios
 Ruidos Cardiacos
 Borborigmos Intestinales
 Ruidos Ruminales
Anamnesis
La exploración clínica tiene como fin primordial obtener el mayor número posible de datos
del paciente, para poder llegar con mayor facilidad al diagnostico clínico que pueden ser de
dos tipos:
 Datos Actuales: son los que recogemos sobre el animal mediante los diferentes
procedimientos de exploración.
 Datos Anteriores: son los que obtenemos a través del dueño mediante la anamnesis y
hacen referencia al desarrollo del proceso, desde que se desencadeno hasta el
momento de la visita.
Historia clínica
Estetoscopio

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Es el relato de la sucesión de los acontecimientos que se han producido durante el periodo
de tiempo que el animal ha estado enfermo. Esta comienza con el primer contacto que el
clínico tiene con el animal enfermo y con el dueño.
La historia clínica consta de los siguientes apartados
Reseña
Es el conjunto de datos que identifican al animal, tiene una gran importancia, desde el punto
de vista de identificación como a la hora de establecer un diagnostico. En esta reseña
indicamos los siguientes datos:
 Especie
 Raza
 Sexo
 Edad
 Peso
 Capa
 Aptitud
 Marcas si la hubiese
Anamnesis
La anamnesis es un interrogatorio que se le hace al dueño del animal para que nos
suministre todos los datos de la enfermedad previa a la consulta. Dado su importancia se
debe de tener cuidado con las contestaciones que el dueño, ya que este tiende a subjetivar
los síntomas, ya que nos dice lo que él cree que tiene el paciente y por otro lado puede
sentirse culpable con los males de su animal y nos puede omitir datos o contarnos lo
contrario de lo que ha sucedido.

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No se debe de emplear excesivo términos médicos que el dueño no entienda. Deberemos de
iniciar el interrogatorio indefectiblemente con tres preguntas fundamentales:
1.¿Qué le pasa al animal?
2.¿Desde cuándo le pasa eso?
3.¿A qué atribuye usted el problema en cuestión?
Posteriormente realizamos preguntas accesorias como:
a. ¿El animal ha estado enfermo antes, de esta o de otra forma?
b. ¿Han enfermado más animales o solo este?
c. ¿Se le ha tratado y con qué?

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Inspección General
Nos permite adquirir una idea global del grado de afección del animal y de las
posibilidades que tiene de responder al tratamiento que prescribiremos después.
Toma de constantes (termometría Clínica)
Aquí se comenta todo lo referente a la toma de temperatura del animal enfermo,
Pulso y frecuencia respiratoria.
En el ganado vacuno y en los equinos podemos hacernos una idea si hay o no
fiebre tocando la punta de la oreja. Otro indicador de presencia o no de fiebre es la
valoración del hocico, Morro o Jeta, ya que normalmente estos lo mantienen
húmedo, en el caso del perro, y cuando hay fiebre este se observa seco
completamente e incluso quebradizo.
Para la toma de temperatura se utilizan diferentes tipos de termómetros como:
Termómetro de Mercurio

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Como se toma la temperatura
Antes de proceder a introducir el termómetro en el recto, debemos fijarnos que
este se encuentre bajo ya que podemos dar una temperatura tomada con
anterioridad a otro animal que no tiene que ver con la que presenta el actual.
Es conveniente lubricar el termómetro para facilitar su introducción en el ano, se
introduce la mitad y una vez dentro la colocaremos de forma lateral para este en
contacto con la mucosa rectal. Lo dejamos de 1-2 minutos, posteriormente lo
sacaremos y se realiza finalmente la lectura de la temperatura. Se considera a la
temperatura rectal como la equivalente a la orgánica, no obstante, nos podemos
encontrar con diferencias en los siguientes casos:
Temperatura Rectal más Alta:
 En inflamaciones del recto (Proctitis)
 Después de esfuerzos abdominales.
 Introducción del termómetro en masas fecales
 Al momento de tomarla en horas muy calurosas.
Temperatura Rectal más Bajas
 Insuficiente oclusión del esfínter (Parálisis)
 Tras emisiones continuadas de gases intestinales.
 Tras evacuaciones frecuentes (Diarreas)
 Después de administrar edemas fríos
En las hembras se puede tomar la temperatura en la vagina, pero en este término
se presentan variaciones térmicas en función del momento del ciclo estral en que
se encuentra el animal.

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A la hora de tomar la temperatura, normalmente, se realizan dos tomas ya que las
variaciones ambientales pueden dar lugar a diferencias de temperatura. La
primera toma la realizamos entre las 8-9 de la mañana, mientras que la segunda
toma se realiza entre las 4-6 de la tarde.

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Temperatura normal de los animales domésticos
Todos los animales domésticos son homeotermos y regulan su temperatura a
través de un centro situado en el hipotálamo que mantiene un equilibrio entre la
génesis y el consumo de calor por parte del organismo. A si como para su
eliminación que intervienen fenómenos físicos como: perdida de calor por
vasodilatación periférica, sudoración, ventilación pulmonar, etc.
Especies To
Normal
Caballo 37.5-38o
C
Potro (hasta 6 semanas) 37.5-38.5 o
C
Vaca 38-39 o
C
Ternero 38.5-40 o
C
Oveja 38.5-40 o
C
Cabra 38.5-40 o
C
Cerdo 38-39.5 o
C
Lechón (hasta 8 semanas) 38.5-40 o
C
Perro (Raza pequeña) 38-39 o
C
Perro (Raza grande) 37.5-38.5 o
C
Gato 38-39.5 o
C
Gallina 40.5-42 o
C
Conejo 38.5-40 o
C

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Frecuencia Cardiaca y Pulso
La exploración de las arterias nos permite, en primer lugar, conocer la frecuencia y
las características del pulso arterial. La transmisión de la onda pulsátil a través de
las paredes de las arterias es una expresión del estado de las mismas, así como
del corazón.
Especies Frecuencia del pulso
Caballo 28-40
Vaca 60-80
Oveja 60-90
Cabra 60-90
Cerdo 60-80
Perro (Raza pequeña) 80-120
Perro (Raza grande) 70-80
Gato 110-114
Gallina 150
Conejo 120-150
Gallo de Pelea 300
Canario 900-1000
Periquito 900-1000

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Donde tomar el pulso cardiaco
Equinos
Bovinos
Arteria Maxilar
Arteria Femoral
Arteria MaxilarArteria Coxígea

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Porcinos
Caninos
Arteria Auricular Arteria Coxígea
Arteria Femoral

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Frecuencia Respiratoria
Se define como el numero de respiraciones que el animal realiza por minuto. Para
medirla basta colocarnos a un lado del animal y observar como su tórax y
abdomen van dilatándose y comprimiéndose de una forma constante. En caso de
que la respiración sea muy superficial y nos resulte difícil apreciar los
movimientos, recurrimos a colocar el dorso de la mano delante de los ollares para
notar la salida de aire en cada espiración.
Especies Normal
Équidos 10-14
Vaca 15-30
Ternero 20-40
Oveja 15-30
Cabra 20-40
Cerdo 8-18
Lechón 20-60
Perro 10-40
Gato 20-40
Gallina 12-36
Conejo 50-60

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Modificaciones Fisiológicas de la Frecuencia Respiratoria
Las causas son muy semejantes a las que modifican el pulso dentro de las cuales
tenemos:
 Edad
 Sexo
 Peso
 Grado de engrasamiento
 Ejercicio
 Decúbitos Prolongados
 Temperatura Ambiental
 Humedad
Modificaciones Patológicas
Aumento: recibe el nombre de taquipnea se presenta en:
 Procesos Febriles
 Estenosis de las vías respiratorias
 Reducción de la superficie pulmonar(Exudados, Edemas, Hemorragias)
 Anemias
 Insuficiencia cardiaca
 Dolor
 Acidosis
 Anoxia
 Presión del diafragma a ciertos
 órganos

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Disminución: se conoce como bradipnea aparece en:
 Perdida del conocimiento
 Alteraciones encefálicas
 Intoxicaciones
 Administración de ciertos fármacos.
Exploración de ganglios y movimientos Ruminales
El rumen tiene su proyección externa en el lado izquierdo, aunque anteriormente
se desplaza más allá del plano medial. Representa el 80 % del volumen del
abdomen, sus movimientos están regidos por el nervio vago a través de dos
ramas la dorsal y la ventral. Estos movimientos permiten la mezcla y reyeccion de
los alimentos contenidos en su interior, así como la eliminación del gas, por medio
del eructo.
Frecuencia ruminal
Los movimientos ruminales que se inician en el retículo se van desplazando, a
manera de ola, por los sacos dorsales del rumen para pasar a los ventrales y
terminar donde habían comenzado. Esto con el fin de remover y mezclar el
contenido ruminal para que su pre digestión sea homogénea.

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Especies Normal
Vaca 2-3 por minuto
Oveja 1-2 por minuto
Cabra 1-2 por minuto
Los movimientos ruminales pueden estar:
 Disminuidos: debido a proceso cuya causa radica en los propios pre
estómagos inducidos por:
a) Cambios Bruscos de Alimentación
b) Alimentos excesivamente molidos
c) Forrajes ácidos
d) Ingestión de de grandes cantidades de agua fría.
e) Parada Ruminal.
 Aumento: tienen poca importancia desde el punto de vista clínico, ya que es
fisiológico durante la Rumia.
Los movimientos ruminales pueden estar:
 Disminuidos: debido a proceso cuya causa radica en los propios pre
estómagos inducidos por:
f) Cambios Bruscos de Alimentación
g) Alimentos excesivamente molidos
h) Forrajes ácidos
i) Ingestión de de grandes cantidades de agua fría.
j) Parada Ruminal.

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 Aumento: tienen poca importancia desde el punto de vista clínico, ya que es
fisiológico durante la Rumia.
Exploración de Ganglios
El sistema linfático constituye la primera barrera defensiva del organismo contra la
invasión de agentes infecciosos. Consta de vasos y ganglios (linfonodo) siendo
estos últimos, y dentro de ellos los de situación superficial, los que nos interesan
desde el punto de vista exploratorio.
Tienen mucha importancia ya que pueden ser afectados por diferentes
enfermedades infecciosas tales como: Linfangitis, Tuberculosis o procesos
purulentos, produciendo modificaciones en su seno que facilitan su diagnostico
Además como consecuencia de sus modificaciones pueden provocar alteraciones
de la funcionalidad de órganos vecinos.

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Ganglios Explorables
1. Cervicales
2. Retrofaringeo
3. Submandibulares
4. Escapulares
5. Inguinales
6. Poplíteos
7. Precurales

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BIOPATOLOGIA
Introducción
El análisis clínico se puede definir como la aplicación de los métodos químicos
empleados en el laboratorio para el diagnostico, el control del tratamiento y la
prevención de las enfermedades. De la realización de los diferentes análisis
clínicos efectuados en los mamíferos, así como la interpretación de los resultados,
se ocupa la Biopatología clínica veterinaria.
Si bien es cierto que una anamnesis bien hecha facilita muchos las cosas al
momento de emitir un diagnostico tras una somera exploración, no lo es menos el
que el uso del laboratorio permite ratificar, o en su caso rectificar, ese diagnostico
que, tras exhaustiva exploración, el clínico había intuido.
Finalidad de los análisis clínicos.
Como ya quedo señalado más arriba, los análisis clínicos son un dato más a la
hora de confeccionar un cuadro clínico y emitir un diagnostico. Complementan los
datos que el dueño o cuidador del animal ha dado y los que se han obtenido tras
la pertinente exploración del animal. Pero además la analítica permite determinar
la gravedad de un proceso concreto, lo que muchas veces obliga a modificar o
reforzar un tratamiento.
Por último la Biopatologia clínica proporciona datos interesantísimos sobre la
evolución de un proceso morboso o sobre la respuesta del enfermo en
tratamiento. Los análisis seriados de orina, o bien, las pruebas sucesivas de
funcionalidad hepática permiten conocer el éxito o fracaso de un tratamiento
antibiótico en una infección urinaria, o la evolución del hígado en un proceso
inflamatorio.

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Hematológico
Introducción
La sangre es un tejido que recorre prácticamente todo el organismo, durante todo
este recorrido recoge información muy valiosa, pues a partir de las alteraciones
que pueden presentarse es como el patólogo puede orientar el diagnostico de la
enfermedad presente. La mayoría de las veces nos proporciona información
general que no es concluyente de alguna patología en particular. En pocas
ocasiones proporciona un diagnostico definitivo, como cuando se detectan
cuerpos de inclusión o cuando se llega a detectar la presencia de microfilarias,
entre otras patologías.
Hematología es la ciencia que estudia la sangre, sus elementos celulares y el
plasma, en condiciones de salud y las alteraciones que pueden presentarse en
enfermedades.
A continuación describimos los pasos a realizar para tomar una muestra de sangre
y su posterior análisis.
1. Recogida de la muestra.
Para obtener una muestra de sangre se debe considerar la especie animal, su
temperamento, la facilidad para acceder al vaso sanguíneo, entre otras. Se debe
diferenciar el tipo de estudio que se realizara a la muestra que se toma si es para
análisis de sangre completa (con anticoagulante) o con suero sanguíneo (sin
anticoagulante), para así realizar la toma de muestra de forma diferente.

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 Métodos para tomar una muestra de sangre completa.
Las normas generales para realizar la recogida de las muestras y de igual manera
su transporte son:
 Se selecciona el vaso sanguíneo donde se realizara la toma de
muestra de acuerdo a la especie que se esté trabajando.
Especie Vasos sanguíneos para la obtención de la muestra
Bovinos Vena yugular, vena coxígea y vena mamaria
Equinos Yugular, vena de la espuela.
Caninos Vena Yugular, Cefálica, safena y femoral
Porcinos Vena cava anterior, vena marginal de la oreja
Ovinos y caprinos Vena yugular, cefálica y safena.
Conejos Vena marginal de la oreja, punción cardiaca
Felinos Vena yugular, cefálica, safena.
Aves Vena yugular, vena safena y punción cardiaca.
 Se procede a realizar la antisepsia (rasurado o desplumado, lavado o
embrocado) de la región. Se hace un torniquete.
 Se aplica un agente antiséptico (alcohol) para observar mejor el
vaso sanguíneo.
 Se procede a realizar la punción del vaso sanguíneo y la extracción
del la muestra de sangre, tratando de que no formar hematoma en
el punto de punción para obtener una buena muestra.

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 La cantidad de muestra necesaria para los diferentes estudios varia
con la técnica de laboratorio pero de forma general basta con 3ml de
sangre para realizar un análisis completo de la sangre en las
diferentes especies.
 Una vez tomada la muestra se deposita la sangre en un tubo de
ensayo con anticoagulante (EDTA) para su análisis.
 Cada muestra debe de rotularse para permitir su identificación
posterior.
Medidas a tomar para el transporte de la muestra de sangre al laboratorio.
 Se debe de procurar no exponer la muestra de sangre de forma directa
a los rayos solares ya que producen destrucción de los eritrocitos.
 No realizar movimientos rápidos ni continuos con la muestra de sangre
ya que originan lisis de los eritrocitos.
 Las muestras deben transportarse rápidamente al laboratorio para evitar
posibles alteraciones que vayan a alterar el análisis de la misma.
Funciones de la sangre:
- Transporte: metabólicos, hormonas, y substrato
- Defensiva e inmunológica
- Hemostasia: mecanismo frente a la perdida de sangre
- Mantenimiento de la presión osmótica y coloidosmótica
- Homeostasis calórica

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Composición:
 Células hemática: glóbulos rojos y glóbulos blancos
 Plasma sanguíneo: agua, electrolito, proteínas plasmáticas, nutrientes,
sustancias de desecho, hormonas y enzimas.
El estudio de la sangre es importante para detectar trastornos de esta,
enfermedades generales y orgánicas, donde causan alteraciones a nivel
sanguíneo que pueden resultar de interés diagnóstico y pronóstico.
2. Examen Hematológico.
El análisis que se realiza en las muestras sanguíneas consta de varias etapas
como:
A. Evaluación del Hematocrito.
Este nos indica la relación que entre el volumen de los
eritrocitos y el de la sangre total y se define como el
volumen ocupado por los hematíes contenidos en 100 ml.
Representa la prueba más valiosa en las situaciones de
Anemias.
Lectura de Hematocrito por Micrometodo

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Evaluación de la serie blanca
Recuento de glóbulos blancos: Método Manual (hemocitómetro) y método
automático (contador celular)
Recuento manual de glóbulos blancos:
Se requiere la dilución de la sangre y una cámara.
El diluyente que se usa es el líquido de Turk (acido acético glacial, solución
alcohólica de violeta genciana al 1% y agua destilada)
Pipeta diluidora: Se usa la pipeta de Thoma.
Cámara cuenta glóbulos: se usa la cámara de Neubauer
Recuento diferencial de glóbulos blancos:
Preparación de una extensión sanguínea
Principales defectos:
Extensión demasiado gruesa
Extensión demasiado delgada
Alternancia de bandas gruesas y delgadas
Presencia de rayas
Aparición de manchas sin sangre
Extensión muy estrecha y gruesa
Glóbulos blancos:
Granulocitos: neutrófilos, eosinófilos, basófilos
Agranulocitos: linfocitos y monocitos

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Métodos de tinción:
Tinción Giensa
Tinción May Grunwald Giensa
Tinción Panóptico rápido
Tinción de Wright
Examen General de Orina
Introducción
La orina es un liquido de desecho elaborado por los riñones durante su función
como órganos reguladores del medio interno. Los riñones tienen una gran
importancia en el mantenimiento del equilibrio hídrico y electrolítico, equilibrio
acido básico y presión osmótica de los líquidos orgánicos. Así como en la
eliminación de sustancias toxicas, todo esto llevado a cabo por el proceso de
filtración selectiva en los glomérulos.
Debido al complicado proceso fisiológico de elaboración de orina, esta se puede
alterar, no solo por enfermedades propias del riñón, sino támbien por numerosas
causas extrarrenales, pudiendo observarse modificaciones urinarias de gran valor
diagnóstico.
A continuación describimos los pasos a realizar para tomar una muestra de orina y
su posterior análisis.
3. Recogida de la muestra.
Debe de recogerse asépticamente sobre recipientes estériles. La mejor hora de
tomar la muestra es por la mañana porque contiene la concentración máxima de
todos los constituyentes y porque es la más estandarizada de todas las muestras
del día. Y su análisis deberá de realizarse en un plazo máximo de 2 horas.
 Métodos para tomar una muestra de orina.

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Directamente: Durante el curso de la micción se recogerá la mitad desechando la
primera y la ultima parte.
Por Paracentesis: se realiza insertando una aguja en la vejiga a través de la
pared abdominal, siempre precedido de un buen lavado y desinfectado de la zona.
Por sondaje o Cateterismo: primero se realiza una limpieza y desinfección del
meato urinario. Posteriormente introducimos la sonda, que debe de estar estéril,
por el orificio uretral hasta alcanzar la vejiga para posteriormente tomar la muestra
de orina. Se deben de tener medidas de precaución para no originar heridas y
hemorragias al momento de introducir la sonda.
4. Examen de Orina
El análisis que se realiza en la orina comprende tres etapas:
 Examen Físico
 Examen Químico
 Examen del sedimento Urinario
Examen físico
En este anilazamos las siguientes características de la orina:
Color: es generalmente de color amarrillo claro debido a la presencia de
pigmentos urocromo, derivados de la degradación de la hemoglobina y
mioglobina, las distintas tonalidades que puede adoptar estarán en funcion de las
variaciones en la concentración de la orina. Estos cambios de coloración no son
siempre indicativos de anormalidad ya que pueden ser el resultado de:
 Un proceso patológico.

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 Presencia de una droga o sus metabolitos.
 Determinados alimentos.
Transparencia: En carnívoros es clara y transparente, en equinos es turbia y
opaca. Mientras que en rumiantes es transparente.
Viscosidad: se debe a la mayor o menor presencia de sustancias coloidales, la
consistencia anormal se produce como consecuencia de residuos procedentes de
reacciones inflamatorias del aparato urinario.
Olor: la orina recientemente excretada tiene un olor particular que van desde un
olor fuerte y desagradable, como es en los carnívoros, hasta un olor aromático
como es en los rumiantes.
Volumen: valoramos la cantidad de orina excretada por los riñones y esta en
dependencia de:
 De la presión hidrostática con que filtran los glomérulos.
 De la cantidad de sangre que circula en el riñón.
 De la capacidad de funcional de los epitelios renales.
Densidad: esta expresa la capacidad que tiene el riñón para concentrar y diluir el
filtrado glomerular.
Examen Químico
En este análisis valoramos las características químicas de la composición de la
orina:
 PH
 Proteínas
 Glucosa
 Cuerpos cetonicos

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 Bilirrubina
 Urobilinogeno
 Acido o sales biliares
 Nitritos
 Eritrocitos
Examen del Sedimento
El examen microscópico del sedimento urinario se hace para detectar la presencia
de elementos figurados y partículas microscópicas de la orina. Lo más importante
del análisis del sedimento no es identificar cristales ni otros elementos de
desechos, sino tener un buen conocimiento de lo que no es fisiológico.
Analizamos
 células de descamación y células Hemáticas.
 Leucocitos.
 Espermatozoides
 Cilindros.
Artefactos y materiales extraños
Son todos aquellos elementos o estructuras totalmente ajenos a la orina y que
además no presentan un valor ni significado patológico reconocido ni en el tracto
urinario ni en el organismo.

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FARMACOLOGÍA Y VÍAS DE ADMINISTRACIÓN DE FÁRMACOS
DEFINICIÓN
La farmacología es la ciencia que nos enseña las características, virtudes, modos
de actuar de los medicamentos.
CONCEPTOS:
 Principio Activo: Es la sustancia básica o esencial de un medicamento y
es el responsable de las propiedades curativas. En el mercado existen
medicamentos con diferente nombre y precio, pero el principio activo es el
mismo. Ejemplo: En el caso de los productos Ivomex, Ivermectin, Biomec,
Ispervic, etc., todos son antiparasitarios.
Como podemos ver estos cuatro productos tienen nombres distintos, pero el
principio activo de todos es IVERMECTINA, por lo tanto, los cuatro
productos tienen la misma recomendación, sirven para lo mismo y tienen la
misma dosis.
 Amplio Espectro: Este concepto es aplicado especialmente a los
antibióticos y antiparasitarios. El espectro de acción, tiene que ver con la
cantidad de especies de gérmenes infecciosos o parásitos que controla.
Ivermectina
Ivomex
IvermectinBiomec
Ispervic

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Entonces un antibiótico o un antiparasitario son de amplio espectro cuando
controlan gran cantidad de gérmenes o parásitos.
Ejemplo: Rank L/A (Ivermectina) y Ranide (Rafoxanide) son antiparasitarios
de amplio espectro porque controlan una multitud de especies de parásitos
que atacan a los animales, como las lombrices de todo tipo, garrapatas,
sarna y piojos.
Oxitetraciclina al 10% o Biomizona (Oxitetraciclina) son antibióticos de
amplio espectro porque controlan diferente tipo de gérmenes que a su vez
producen diferente tipo de enfermedades. Entre estos, controla los
gérmenes que producen diarreas, neumonías, metritis, etc.
 Corto Espectro: Este concepto se aplica también a los antibióticos y
antiparasitarios y significa lo contrario del amplio espectro. Es decir que hay
antibióticos que controla pocos tipos de gérmenes y antiparasitarios que
combaten pocos tipos de parásitos. Así podemos señalar: Fasinex
(Triclabendazol) es un antiparasitario que solo combarte a la Fasciola
hepática y el Pencivet (Penicilina+Diclofenaco) es un antibiótico muy
específico para infecciones respiratorias.
Larga Acción: Este concepto tiene que ver con el tiempo que dura el efecto de un medicamento
en el cuerpo del animal y se usa comúnmente para los antibióticos y algunos antiparasitarios de
efecto prolongado.
Por ejemplo: Reverin L/A o Emicina L/A (Oxitetraciclina al 20%) Son antibióticos de amplio
espectro pues controlan múltiples tipos de infecciones y a la vez son de larga acción, es decir de
efecto prolongado pudiéndose aplicar cada 3 días.
Excend L/A al 3% (Ivermectina) es un antiparasitario cuyo efecto se puede prolongar hasta 45
días y es de amplio espectro.
Corta acción: Quiere decir que el tiempo que dura su efecto es corto (un día como máximo).
Por ejemplo. Hematopam B12, Calcio coloidal o Tonosfan y Bcob 12; son complejos
vitamínicos cuyo efecto máximo es durante un día.
La mayoría de antibióticos, antinflamatorios, antiparasitarios, son de corta acción.

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 Dosis: Es la cantidad de medicamento que se debe aplicar a un animal. La
dosis de medicamento depende del peso vivo del animal (PV) y de la
gravedad del problema que queremos resolver. Todo medicamento trae su
dosificación indicada en la etiqueta.
 Presentación: Es la forma en que el medicamento viene listo para usarlo.
Algunos medicamento vienen en forma de Polvo soluble en agua, Solución
inyectable, Solución para vía oral, pomada, etc.
Vías de administración de Medicamentos
Definición:
El lugar donde se aplica un Fármaco, Medicamento o Droga
Factores a considerar para la elección del sitio de aplicación:
• ESPECIE a dosificar
• Factores inherentes al FÁRMACO
• Tipo de ACCIÓN o EFECTO buscado
ESPECIE a dosificar:
• Diferencias anatómicas y fisiológicas entre especies
• Carácter y comportamiento del animal
• Variaciones individuales
• Edad
• Sexo
• Raza
• Estado del paciente
• Patologías existentes

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Factores inherentes al FÁRMACO
• Propiedades Físico-Químicas
• Solución, suspensión, emulsión: limitan vía de administración
•pH del medio – pK de la droga
Tipo de ACCIÓN o EFECTO buscado:
• Local o sistémico: implica que los efectos de la droga se limitan a un
área específica. La droga debe “ingresar” al sistema vascular y linfático y
distribuirse a todos los tejidos.
• Inmediato o retardado: indicación terapéutica.
INTERACCIONES NEGATIVAS ENTRE DIFERENTES MEDICAMENTOS
Drogas que por su mecanismo de acción, sumen efectos negativos.
• 2 antibióticos nefrotoxicos
• 2 drogas hepatotoxicas: halotano + ketoconazol
• Alteraciones digestivas
• Alteraciones hemáticas
• Alteraciones nerviosas
CLASIFICACIÓN
 PARENTERAL:
o CUTANEA o PIEL
o MUCOSAS:
 Conjuntival
 Canal galactóforo
 Vaginal o uterina
o INHALABLE
o INYECTABLE:

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 Intravenosa
 Intramuscular
 Subcutánea
 Intraperitoneal
 Intradérmica
 Intraarticular
 Epidural
 ORAL O ENTERAL:
o TABLETAS
o JARABES
o ENEMAS
Vía Intravenosa (IV): Esta es la vía de absorción más rápida. Se utiliza cuando se
quiere aplicar gran cantidad de volumen de un medicamento (por ej.: suero
fisiológico). También en los casos muy graves, cuando se requiere que el producto
haga efecto de inmediato (aplicación de algunos antibióticos en animales muy
enfermos). Esta vía debe ser utilizada con mucho cuidado dado que los productos
pasan directamente a la sangre del animal. No todos los productos inyectables se
pueden aplicar por esta vía, tales como los de consistencia aceitosa, los productos
que vienen en polvo para diluir o los compuestos coloidales.

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Vía intraperitoneal. (IP): Es la segunda vía más rápido de absorción y se utiliza
en situaciones de emergencia cuando no es posible hallar la vena en un animal
muy enfermo. En esta vía también se pueden colocar grandes volúmenes de
medicamento, pero cuando se trata de suero fisiológico, dextrosa o calcio
intravenoso.
Vía intramuscular (IM): Es una vía de absorción más lenta que la anterior en
donde los medicamentos son colocados dentro del músculo desde donde son
absorbidos poco a poco. En esta vía se pueden aplicar diversos productos líquidos
incluso aquellos no recomendados para aplicar por la vía IV.

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Vía subcutánea (SC): Esta vía es algo más lenta en absorber que la IM, consiste
en colocar el producto medicamentoso debajo de la piel del animal y se emplea
especialmente para aplicar vacunas y antiparasitarios inyectables.
Vía Oral (VO): Consiste en dar al animal por la boca algún medicamento de
consistencia sólida (pastilla), semisólida (polvo) o algún producto disuelto en agua.
Esta vía también es más lenta que la vía IM y casi tan rápida como la SC. En este
caso debemos cuidar de que el animal no nos muerda y dar el medicamento con
calma para no atragantar al animal o causarle un ahogo con el líquido.

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Vía Intramamaria: Usado para colocar antibióticos en un tubo intramamario en la
ubre o poner medicinas en la ubre usando un catéter de pezón.

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BASES DE LA ANESTESIA VETERINARIA.
Concepto de anestesia:
Es la instauración de un estado reversible de inconsciencia producido por una
intoxicación controlada del sistema nervioso central mediante el uso de fármacos
con actividad anestésica general.
Clases de Anestesia:
1. Anestesia Local:
 Superficial o tópica (Ej.: sobre piel o mucosa)
 Profunda o infiltración (Ej.: infiltración subcutánea)
2. Anestesia Regional:
 Espinal: epidural.
 Paravertebral
 Troncular o de conducción
3. Anestesia General
Esta puede obtenerse mediante el empleo de agentes inyectables o inhalaciones
por lo que se clasifica en:
 Anestesia general inyectable o fija
 Anestesia general inhalatoria.

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Indicaciones de la Anestesia General:
Las indicaciones de la anestesia general son muy variadas, comprendiendo desde
la sujeción del paciente para su exploración o transporte, realización de
radiografías, ecografías u endoscopias, toma de biopsias y realización de diversos
procedimientos quirúrgicos.
Fases Técnicas de la Anestesia General:
a). En la preanestesia se administran tranquilizantes / sedantes junto a
analgésico (neuroleptoanalgesia) para posibilitar un manejo cómodo y libre de
estrés del paciente, una inducción y recuperación suave y tranquila, una adecuada
analgesia perioperatoria y una reducción general.
b). La inducción anestésica consiste en la administración de un agente
anestésico general con el objetivo de producir un estado de anestesia general.
c). El mantenimiento anestésico implica la prolongación del estado de anestesia
general durante el tiempo necesario para la realización del procedimiento que se
desee realizar (endoscopia, cirugía, etc). El mantenimiento anestésico debe ser lo
más corto posible ya que el riesgo anestésico es directamente proporcional a la
duración de la anestesia.
d). La recuperación anestésica consiste en la vigilancia del paciente hasta que
recupere los reflejos protectores normales y la conciencia, y es capaz de
reaccionar normalmente con su entorno. La recuperación debe ser rápida posible
y libre de fenómenos de excitación. Es muy importante mantener una correcta
analgesia al menos durante las primeras 48 – 72 horas del post – operativo.

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Evaluación preoperatoria del paciente (valoración preanestésica):
Procedimiento protocolizado orientado a la optimización de la elección de la
estrategia anestésica de acuerdo a las características propias de cada paciente.
La evaluación preanestésica debe incluir una historia clínica detallada, exámenes
físicos y laboratoriales y si la situación lo requiere otras pruebas complementarias.
Todo animal incluso el aparentemente sano debe someterse a esta evaluación.
Objetivos de la valoración preanestésica (evaluación preoperatoria):
. Detectar alteraciones previas que supongan un riesgo.
. Conocer tratamientos previos para evitar interacciones.
. Anamnesis y exploración clínica completa ECG, exploración radiológica si
amerita.
. Analítica sanguínea completa.
. Estabilizar el paciente con tratamientos adecuados.
. Elegir el método anestésico más adecuado.
. Obtener el consentimiento informado del propietario.
Preparación del paciente:
Ayuno:
La anestesia suprime el reflejo deglutor, por lo que si se produce regurgitación
durante la misma el contenido gástrico pasará a la tráquea. Esto producirá una
obstrucción de las vías aéreas, con la consiguiente insuficiencia respiratoria y, si el
animal sobrevive, una posterior neumonía por aspiración. Por ello el ayuno antes
de la anestesia es fundamental. Diversos estudios indican que el estómago se

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vacía en menos de 10 horas. Por ello, y en general, se habla de un ayuno de agua
de hasta 2 horas. En pacientes pediátricos debe reducirse el ayuno.
Venoclisis:
La venoclisis es una maniobra que debe considerarse obligatoria antes de la
anestesia, por las siguientes razones.
. Emplear un catéter intravenoso permite utilizar de forma segura fármacos que
son irritantes si se inyectan perivascularmente, como los barbitúricos.
. Permite la inyección simultánea de medicamentos incompatibles que no pueden
mezclarse en la misma jeringa.
. Permite la administración rápida de fármacos en caso de emergencia.
. Permite la fluidoterapia.
Existen dos clases de vías, las periféricas como la cefálica y la safena, y las
centrales como la yugular y la femoral.
Fluidoterapia:
La fluidoterapia es necesaria durante la anestesia. La dosis de mantenimiento es
de 10 ml/kg/h. Si hay una hemorragia profusa, las dosis se elevan hasta 20/
ml/kg/h en los primeros 15 minutos, hasta administrar 3 ml de cristaloide por ml de
sangre perdida estimada.

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TÉCNICAS DE ANESTESIA GENERAL INYECTABLE
Introducción
Ventajas e inconvenientes
Equipamiento técnico necesario
Técnicas de anestesia inyectable
Introducción:
Las técnicas de anestesia general inyectable, o fija o parenteral agrupan a
aquellas en las que se administran los anestésicos generales por rutas diferentes
a la respiratoria, siendo la vía de administración más común la endovenosa.
Indicaciones de las técnicas de anestesia inyectable:
 Consecución de una inducción anestésica rápida y segura, previa a un
posterior mantenimiento con gases.
 Como protocolo de anestesia totalmente endovenosa (TIVA), mediante la
administración de dosis repetidas de agente inyectable cuando sea
necesario o mediante su infusión continua.
 Mantenimiento prolongado de estados de anestesia superficial en pacientes
hospitalizados en unidades de cuidados intensivos.

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Ventajas e inconvenientes de las técnicas de anestesia inyectable:
Ventajas:
 Fáciles de administrar.
 Producen anestesia de forma rápida y suave.
 Requieren de poco equipamiento, si el presupuesto lo permite, pueden
emplearse equipos de infusión automáticos que encarecen el
procedimiento.
 No irritan las vías respiratorias ni explotan.
 No polucionan el medio ambiente ni el área anestésico – quirúrgica.
Inconvenientes:
 Una vez administrados resulta imposible impedir que actúen ya que en
su mayoría carecen de antídotos. La profundidad y la duración anestésica
escapa a nuestro control por depender enteramente de la distribución
corporal, metabolismo y excreción del anestésico.
 Si el animal no está intubado y no recibe oxígeno se incrementa
notablemente el riesgo anestésico.
 La mayoría de los agentes inyectables tienen propiedades acumulativas.
Equipamiento técnico necesario:
El tipo de equipamiento requerido para la realización de anestesias inyectables va
a estar en función del tipo de técnica empleada. Las técnicas más sencillas
requieren únicamente la utilización de jeringas y catéteres intravasculares.

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Técnicas de anestesia inyectable: Existen tres técnicas básicas de
administración de agentes inyectables:
1. Administración de una dosis única de anestésico (eficaz para efectuar la
inducción de la anestesia y para procedimientos de corta duración).
2. Redosificación mediante bolos adicionados administrados a dosis efecto
(orientativamente las dosis a administrar oscilan entre un 25 – 50% respecto a la
dosis inicial).
3. Infusión continua ajustando las dosis de mantenimiento en términos de mg o
mcrg/kg/min.
ANESTESIA LOCAL Y REGIONAL
Introducción.
Concepto.
Indicaciones.
Mecanismo de acción de los anestésicos locales (A L).
Anestésicos locales más empleados.
Técnicas de anestesia local y regional.
Introducción:
Los bloqueos nerviosos locales o regionales pueden producir analgesia adicional
en los pacientes anestesiados, o permitir la ejecución de procedimientos simples
en animales conscientes o sedados.

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Concepto:
Entendemos por anestesia local la supresión reversible de las sensaciones entre
ellas dolorosas, en una zona concreta de la anatomía animal, sin que el paciente
pierda su conciencia.
Los anestésicos locales son sustancias que aplicadas de forma local o regional
(nunca sistémicamente) actúan directamente sobre estructuras nerviosas
sensoriales y motoras evitando la génesis y/o conducción de los estímulos
nerviosos al interferir con la permeabilidad del sodio a nivel neuronal lo que impide
la despolarización.
Indicaciones de la anestesia local:
En grandes animales, especialmente de renta, su bajo coste económico la hace
apta para procedimientos de cirugía de campo, permitiendo hacer cirugías con el
animal en estación (reduce riesgo de neuropatías por golpes o compresiones
durante el derribo). En caballos es muy útil en el diagnóstico secuencial de
cojeras.
Mecanismo de acción de los anestésicos locales:
La forma en que el alcaloide anestésico impide la conducción del estímulo
nervioso, radica en su interferencia con la membrana celular nerviosa,
disminuyendo así su permeabilidad e impidiendo la normal difusión de los iones de
sodio y potasio con lo que no se produce la despolarización, quedando de este
modo bloqueados los cambios que originan el impulso nervioso.
La mayoría de los anestésicos locales son inyectados alrededor del nervio o
nervios elegidos y se deja que difundan dentro de las membranas de las fibras
nerviosas. Este proceso de difusión es el que determina el estado de latencia de
los anestésicos locales. En la mayoría de los compuestos se necesitan 4 – 5
minutos para que aparezca la analgesia y la relajación muscular, si la hay. La

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duración del contacto de la droga con el nervio depende de la vascularización del
tejido. Cuanto mayor es el flujo sanguíneo a través del tejido, más rápido es
absorbido el anestésico en la circulación mayor.
Características del anestésico local ideal:
 Muy liposoluble, para que atraviese las barreras de mielina.
 Capacidad para producir parálisis reversible de los nervios sensitivos.
 Corto período de latencia.
 No debe crear hábito.
 Toxicidad general mínima.
 Capacidad de detoxicación rápida y fácil.
 Capacidad de absorción lenta, para que su toxicidad general no sea peligrosa
y que su acción local sea larga.
 Compatibilidad. Será compatible con epinefrina (adrenalina) u otros
vasoconstrictores, para prolongar su tiempo de acción.
Anestésicos locales más empleados:
Lidocaína, mepivacaína, bupivacaína
 Metabolización hepática; muy estables; efectos más rápidos; algunas son muy
liposolubles; alta unión a proteínas plasmáticas.
 Este grupo de drogas es utilizado ampliamente en clínica veterinaria, en la
mayoría de especies y ofrece una excelente posibilidad para el control de dolor
intra y postoperatorio.

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 La adición de adrenalina a las soluciones de uso clínico disminuye el pH de la
misma disminuyendo la cantidad de droga ionizada disponible, para que se
difunda a través de la membrana axonal, retrasando la aparición del efecto. La
finalidad vasoconstricción de la adrenalina puede prolongar el efecto.
Lidocaína:
 Se difunde muy bien (no precisa de hialuronidasa).
 Es estable, poco tóxica.
 Es antiarrítmica.
 Tiempo de latencia 10 – 15 min.
 Potencia intermedia y duración de 1 ½ horas y 2 horas con adrenalina.
 Ideal para cualquier técnica local o regional.
 Está muy indicada en diagnóstico de cojeras.
 Se usa al 2 – 4% en spray, gel o solución para uso tópico y al 2% para
infiltraciones y técnicas espinales.
 Puede resultar tóxica a dosis superiores a 10 mg/kg.
Bloqueo de nervios podales con lidocaína al 2% para el diagnóstico de cojeras en
equinos
Mepivacaína:
 Ideal para cualquier técnica local o regional.
 Resulta tóxica a dosis de 30 mg/kg IV. (menos que la lidocaína).
 Produce poco edema post-inyección. No produce vasodilatación.

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 Tiempo de latencia 5 – 10 min.
 Duración del efecto de 2- 3 horas.
 Se presenta en soluciones al 1% y 2%.
Bupivacaína:
 Ideal para anestesia epidural o espinal.
 No suele emplearse en anestesia de superficie.
 Muy liposoluble.
 Gran duración de sus efectos (hasta 6 horas).
 Potencia muy superior a las anteriores y estable.
 Tiempo de latencia muy largo (hasta 20 min.)
 Tóxica a dosis de 3 mg/kg.
 Se presenta en soluciones al 0.25%; 0.5% y 0.75% para infiltración, bloqueos
y anestesia epidural.
Técnicas de anestesia local y regional:
I. Anestesia local:
Anestesia por infiltración:
Con este método se afectan las terminaciones nerviosas en la zona concreta de la
operación. El anestésico se puede inyectar intradérmica o subcutáneamente
(infiltración superficial) o intramuscular (infiltración profunda). Pueden
administrarse hasta 5 mg/kg de lidocaína con o sin adrenalina. Esta técnica
posibilita cirugías menores y, junto a sedación, cirugías más invasivas.
El AL se deposita en la línea de incisión, o mejor aún si se distribuye en formas
geométricas diversas que bloquean y delimitan el campo quirúrgico:

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En L invertida ( l ) o rombo ( ) para laparotomías por el ijar depositando AL
en planos superficiales y musculares. Se puede utilizar una aguja trocar de 10 cm.
En circulo o anillo en pezones, cola o extremidades.
En pirámide para tumores infiltrativos (infiltración profunda)
Contraindicado si hay infección cutánea o la zona está infectada (heridas sucias).
No recomendada en los labios de la herida, sino alrededor. (el anestésico local
dificulta la cicatrización).
También empleada intratesticular, interdigital.
II. Anestesia regional:
1. Anestesia paravertebral:
Es un tipo especial de anestesia por conducción en la que se bloquean las ramas
dorsales y ventrales de los nervios raquídeos que emergen en los agujeros
intervertebrales situados entre T13-L1, L1-L2 y L2-L3.
Proporciona una anestesia completa y uniforme de toda la pared abdominal,
incluido peritoneo, con una buena miorrelajación y disminución de la presión
intraabdominal.
Es útil en vacuno y pequeños rumiantes sobre todo, para realizar laparotomías,
ruminotomías, desplazamiento de cuajar, cesáreas, intervenciones en la parte
craneal de las mamas, etc. Suele utilizarse junto a sedación y posterior infiltración
en L invertida o rombo para bloqueo de campo quirúrgico.
5 ml. 5 ml.
5 ml
.
5 ml.
En ovino 5 ml y 10 ml En bovino por
punto.

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La técnica de Farguharson bloquea dorsoventralmente los nervios iliohipogástrico,
ilioinguinal y genitofemoral.
Empleando una aguja trocar de 12 cm de longitud se introduce a 7cm
aproximadamente de la línea media de la espina dorsal, perpendicularmente hasta
tocar el borde craneal de la apófis transversa. Se retira ligeramente y se empuja
para atravesar el ligamento intervertebral (1cm más). Se inyectan 25 ml de
lidocaína en cada punto en las vacas y 5 ml en pequeños rumiantes distribuidos
en 75% ventral y un 25% dorsal al ligamento intertransverso (vertebral) lo que
garantiza un bloqueo efectivo de las ramas dorsales y ventrales.
Anestesia paravertebral en bovinos

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2. Anestesia epidural:
La técnica de anestesia espinal más practicada en la actualidad es la
sacrocoxígea. Suele utilizarse lidocaína al 2% o bupivacaína al 0.75% sin
adrenalina. El AL se deposita sobre la duramadre, sin penetrar las meninges por
lo que es una técnica relativamente segura si el animal se seda. Es muy útil para
cirugías de la región infraumbilical, vejiga, uretra recto, periné, escroto, vagina,
cola, tercio posterior. Para manipulaciones obstétricas y para aliviar tenesmos
(junto al bloqueo del pudendo interno).
En vacuno, caballos y pequeños rumiantes existen dos puntos de inyección:
 Caudal alto entre S y C1.
 Caudal bajo entre C1 y C2.
El punto de inyección se localiza moviendo la cola, introduciéndose la aguja en
ángulo de 30° en equinos y de 45° en vacuno. Se necesita un trocar especial,
aguja con perfil (punta) lápiz para evitar perforar la duramadre.
El espacio epidural es un espacio vacío, luego se comprueba que estamos en
posición correcta si no hay resistencia a la inyección o incluso si se succionan de
forma espontánea gotas del AL depositadas en el cono de la aguja.
Anestesia epidural: Técnica sacrocoxigea

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ANESTESIA GENERAL EN RUMIANTES
Los rumiantes no son considerados buenos candidatos para la anestesia general
debido alto coste de estas técnicas y a su carácter de animales de renta. Por otro
lado, el decúbito prolongado derivado de la anestesia general provoca timpanismo
y atonía de la panza, así como una compresión del diafragma por parte de las
vísceras abdominales que pueden desencadenar situaciones de hipoventilación e
hipoxia. Además la ausencia de deglución de saliva durante la anestesia
predispone a acidosis de panza. Finalmente, la anestesia general presenta riesgo
de regurgitaciones y por tanto la aspiración pulmonar de estos contenidos. No
obstante, el riesgo de regurgitación se reduce con ayunos de 24 horas (6 horas
para agua) y colocando al animal en decúbito con la cabeza inclinada hacia abajo
en relación a la panza.
Estos problemas junto a las condiciones de trabajo que implica la práctica con
rumiantes hace muy infrecuente la ejecución de técnicas de anestesia inhalatoria
en esta especie. Los protocolos normales de anestesia incluyen procedimiento de
sedación junto a técnicas de anestesia local y/o regional.

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SEDACIÓN:
La sedación en rumiantes suele realizarse con agonistas alfa -2 adrenérgicos
como la xilacina y la medetomidina. Estos sedantes inmovilizan de forma correcta
al paciente sin producir necesariamente caída del animal y decúbito. En ocasiones
se combinan con Ketamina para mejorar el grado de inmovilidad del animal, para
finalmente realizar técnicas de anestesia local y/o regional.
Xilacina:
En rumiantes produce una profunda sedación acompañada de un grado variable
de analgesia.
Provoca hipomotilidad ruminal, hipermotilidad uterina. Contraindicada en el último
tercio de la gestación.
Dosis:
Bovino: 0.05 – 0.4 mg/kg IM; 0.01 mg/kg IV.
Ovino: 0.2 mg/kg IM; 0.01 – 0.15 mg/kg IV.
Caprino: 0.05 mg/kg IM; 0.01 mg/kg IV.
En bovinos se recomienda más la vía IM, mientras que en ovinos y caprinos IV
lento. El efecto comienza a los 10 – 20 min., de la inyección IV, con una duración
de hasta 7 horas.
Los efectos de los agonistas alfa-2 adrenérgicos pueden ser revertidos con
el uso de antagonistas como:
 Yohimbina – 0.12 mg/kg.
 Atipamezole (antisedan).

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ANESTÉSICOS DISOCIATIVOS:
Ketamina.
En el ganado vacuno se utiliza generalmente, asociada a la Xilacina que puede
administrarse previamente 0.2 mg/kg IM ó 0.1 mg/kg IV., seguida de la inyección
de Ketamina 2 – 10 mg/kg IV.
También se pueden mezclar ambos productos en la misma jeringa 0.2 mg/kg de
Xilacina + 10 mg/kg de Ketamina.
La inducción es rápida y tranquila. La anestesia dura 30 - 90 min.
Ovino: Ketamina 4 mg/kg + 0.05 mg/kg de Xilacina IV;
Caprino: Ketamina 11mg/kg + Xilacina 0.2 mg/kg IM
ANESTESIA EN EQUINOS
El caballo es probablemente la especie animal que presenta un mayor número de
problemas al realizar técnicas de anestesia general producto de su gran tamaño,
rapidez de movimientos y temperamento excitable.
Problemas de manejo del paciente y seguridad del personal durante las fases de
inducción y recuperación anestésica, ya que el caballo es proclive a sufrir cuadros
de stress, a veces en forma de ataques de pánico, con el consiguiente riesgo de
accidentes. Las técnicas de anestesia general provocan en el caballo graves
disfunciones en los sistemas cardiopulmonares y muscoloesquelético.

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PREPARACIÓN DEL PACIENTE:
En animales que presentan dolor intenso se administran drogas con actividad
analgésica para reducir el estrés y facilitar un manejo más seguro.
Ayuno de 6 – 12 horas con anterioridad a la anestesia.
Las yeguas que estén amamantando potros no deben separarse de los mismos
hasta que se haya realizado la inducción anestésica. De la misma forma la
presencia de la madre puede facilitar una inducción anestésica más suave en
potros. Las herraduras deben retirarse antes de la anestesia, o al menos ser
cubiertos con adhesivos plásticos para evitar resbalones y caídas durante la fase
de recuperación.
PREANESTESIA:
Dentro de los tranquilizantes / sedantes destacan por su uso en preanestesia
equina los derivados fenotiacínicos, los agonistas alfa-2 adrenérgicos y las
Benzodiacepinas.
I. Derivados Fenotiacínicos:
El derivado fenotiacínico más utilizado es la Acepromacina que reduce las dosis
anestésicas de inducción y mantenimiento y previene la excitación durante la fase
de recuperación. Se administra por vía intramuscular a dosis de 0,01 – 0,1 mg/kg
y por vía IV. Este producto afecta poco la ventilación, aunque produce hipotensión,
vasodilatación y taquicardia. Algunos caballos quedan profundamente afectados
con una dosis a otros aparentemente no les afecta o se excitan con facilidad. Su
efecto se aprecia por la protusión flácida del pene en el caballo comienza a los 5 –
10 minutos de su aplicación IV y a los 20 – 40 min. de la IM.

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II. Agonistas alfa-2 adrenérgicos:
Tranquilización analgésica:
Los agonistas alfa -2 adrenérgicos más utilizados en la clínica equina son la
Xilacina, detomidina y romifidina.
Para la preanestesia equina se utilizan intravenosamente en la habitación de
derribo 5 – 10 min antes de la inducción anestésica.
Xilacina:
Se emplea a dosis de 0.5 – 1 mg/kg IV. La sedación es máxima a los cinco
minutos con descenso de la cabeza, belfo del labio inferior péndulo, párpados y
pene se relajan. El caballo aumenta la base de sustentación.
Los efectos de esta sedación duran de 30 – 60 min. La xilacina tiene marcadas
propiedades analgésicas, particularmente en casos de cólico, reduciendo el
peristaltismo intestinal. Puede ser utilizada en potros. En yeguas preñadas puede
inducir un aborto si se administra en las fases finales de la gestación, al estimular
contracciones uterinas.
Sus efectos pueden ser antagonizados por la Yohimbina a dosis de 0.04 – 0.08
mg/kg IV.
III. Bezodiacepinas:
Las benzodiacepinas no deben utilizarse por si solas en la preanestesia ya que
sus propiedades relajantes musculares producen ataxia en esta especie. No
obstante el Diacepam se utiliza a dosis de 0.05 – 0.2 mg/kg generalmente en
asociación con ketamina con vistas a inducir la anestesia general.
Anestésicos intravenosos:
Tiopental Na:
El tiopental al 5 – 10% sigue siendo uno de los agentes más populares para la
inducción anestésica. Tras la premedicación con agonistas alfa-2 se usa en bolo a
dosis de 5 mg/kg produciendo pérdida de conciencia y caída del animal en 30

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segundos. Su efecto más indeseable es la fuerte depresión respiratoria
caracterizada por hipoventilación e incluso apnea de hasta tres minutos de
duración. Este efecto puede minimizarse administrando lentamente soluciones de
tiopental al 5%. La metabolización hepática del tiopental contraindica su uso en
potros menores de 6 semanas y en hepatopatías.
Ketamina:
Este producto presenta más efectos excitarios que depresores sobre el S.N.C por
lo que su uso aislado se acompaña de nula relajación muscular, temblores e
incluso convulsiones. Sin embargo su uso junto a benzodiacepinas tras
premedicar con agonistas alfa -2 adrenérgicos produce una excelente inducción
anestésica, seguida de una recuperación rápida y tranquila. Tras la premedicación
se debe esperar la aparición de signos de sedación (Ej: descenso pronunciado de
la cabeza, ataxia ligera y protrusión moderada del pene). Si tras cinco minutos el
paciente no exhibe estos signos se repetirá la administración de los mismos a la
mitad de la dosis inicial.
Una vez se confirme un estado de sedación profunda se administrará la ketamina
intravenosamente a dosis de 2.2 mg/kg normalmente asociada con Diacepam 0.04
mg/kg.
La inducción anestésica y el derribo se producirán en unos 2 minutos de forma
suave y gradual, y con una duración de 15 – 20 minutos.
Se produce escasa depresión cardiorrespiratoria.
MANTENIMIENTO ANESTÉSICO:
Independientemente de la técnica utilizada para el mantenimiento de la anestesia,
hay que tomar medidas que eviten las complicaciones de un decúbito prolongado,
ya que el peso del paciente va a comprimir vasos musculares y nervios como el
braquial, provocando lesiones isquémicas y neuroapraxias postanestésicas. Por
tanto, es importante colocar al animal sobre mesas quirúrgicas o colchonetas
blandas (a veces de agua), así como acolchar las extremidades con bloques de

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goma espuma. La cabeza debe mantenerse en posición elevada sobre el cuello
para que el drenaje venoso sea correcto y no se congestione la mucosa nasal con
riesgo de obstrucción de la vía aérea.
1. Tiopental.
Se usa a dosis de 0.5 1 mg/kg exclusivamente para profundizar la anestesia
general mantenida con otros productos endovenosos o incluso inhalatorios, al
abolir de forma rápida movimientos bruscos e inesperados de paciente durante la
cirugía.
2. Ketamina.
Este producto se usa junto a agonistas alfa -2 adrenérgicos. y EGG para inducir y
mantener anestesias en algunas ocasiones.
* Un protocolo útil para mantener anestesias de hasta 90 minutos de duración
utilizando soluciones de EGG al 5% (15 – 25 mg/kg), a las que se añaden 250 mg
de Xilacina y 500 mg de Ketamina administrándose a dosis de 1.1 ml/kg para la
inducción y de 0.05 ml/kg/min para el mantenimiento anestésico.
Para un equino adulto:
Se puede:
 Sedar con xilacina.
 Inducir con ketamina + Diacepam (0.05 mg/Kg).
 Mantenimiento: Preparar al 5 % EGG: - 25 gr de EGG en 500 ml de dextrosa
5 % o SSF, o 50 gr de EGG en 1000 ml

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Suturas en especies mayores, menores y de interés doméstico en Nicaragua
Generalidades e indicaciones:
Las suturas son operaciones que tienen por finalidad mantener aproximados y en
contacto los bordes y superficies de las heridas, con objeto de favorecer la
cicatrización.
La unión de los tejidos se hace mediante técnicas especiales y materiales
apropiados para cada tipo de tejido; se sigue el orden que va de las regiones más
profundas a las más superficiales, y se debe procurar cumplir las siguientes
normas:
1. Unir siempre tejidos de la misma naturaleza, de acuerdo con los diferentes
planos donde se actúa.
2. No dejar espacios entre los tejidos (espacios muertos).
3. Para cada tipo de tejido se deben usar las suturas apropiadas, ya sean de
resistencia, aproximación, eversión o inversión.
4. Para la elección del material a emplear se tomará en cuenta el tiempo de
permanencia del material en el organismo cumpliendo su función, para lo cual se
seleccionará el de absorción breve, absorción prolongada o no absorbible.
5. Antes de aplicar cualquier sutura se deberá limpiar la herida de coágulos o
tejidos desprendidos y necróticos.
En general las suturas pueden utilizarse:
 Para la reparación de heridas recientes asépticas con bordes regulares.
 En las heridas con pérdida de sustancia.
 Para abreviar la duración de la cicatrización.
 En las heridas antiguas, después de reavivarlas.

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Se utilizan, además, en la restauración de tendones o nervios cortados
transversalmente y para cerrar las soluciones de continuidad en las paredes de los
vasos sanguíneos.
En algunos casos, la sutura facilita la hemostasia de una herida, al presionar
sobre ella, y en otros nos ayuda a sujetar las curas de la herida.
* Nunca deberán suturarse total y definitivamente heridas infectadas o
sospechosas de estarlo.
No solo hay que destacar los efectos positivos, la sutura puede tener también
efectos negativos si durante su aplicación lacera tejidos sanos, si origina anemia
local o si su actuación como cuerpo extraño produce reacciones hísticas
anormales, cualitativa o cuantitativamente.
INSTRUMENTAL DE SUTURA:
AGUJAS QUIRURGICAS:
La calidad de la aguja depende al mismo tiempo del material y de la técnica de
fabricación. El endurecimiento homogéneo del material es importante para que la
aguja obtenga la dureza necesaria en toda su longitud, pero sin perder su
elasticidad, con el fin de evitar que se rompa al sufrir una gran tensión.
Distintos tipos de aguja:
Agujas con ojo o aguja suelta. Ej.:
- Agujas de Ferguson.
- Agujas de Mayo.
La más utilizada es la francesa de ojo hendido.
En las suturas actuales de montaje o atraumático, el hilo de sutura es una
continuación de la aguja. Con ello se consigue que el paso de sutura a través del

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tejido suturado sea mucho menos traumático que si se utiliza una aguja
enhebrada.
La aguja de sutura se clasifica, según su sección transversal, en cilíndrica,
espatulada, triangular y aguja tapercut.
Cilíndrica. No tiene ningún borde cortante, terminando en el extremo anterior en
punta cónica punzante. Se utiliza para tejidos que ofrecen poca resistencia.
Aguja espatulada. Tiene el cuerpo algo espatulado, termina en una punta en
forma de espátula que tiene dos filos cortantes en el plano horizontal. Se utiliza
para todo tipo de tejido.
Triangular. Es una aguja cuya sección tiene forma de triángulo. Dos bordes
cortantes en plano horizontal y uno en vertical.
Aguja tapercut. Punta triangular y cuerpo cilíndrico.

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A: Componentes básicos de las agujas; B. Tipos de ojos; C. Formas corporales y
tamaños.
PORTAAGUJAS: El porta agujas es el instrumento que se utiliza para facilitar el
manejo de las agujas alrededor de las diferentes técnicas de sutura. Los hay de
diferentes tipos:
De izquierda a derecha: Mayo-Hegar, Olsen-Hegar, Mathieu, Castroviejo

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PINZAS: Hay unas que llevan dientes, otras no, independientemente del tamaño
para usarlas según el tejido. Ej.: La piel se sujeta con pinzas con dientes.
Mangos y hojas de bisturí
Tijeras.
De izquierda a derecha: de puntos (extracción de suturas), punta aguda/roma,
Metzenbaum, Mayo, para alambre.

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Hemostáticos.
MATERIALES DE SUTURA:
En todo tipo de sutura con hilo se presentan siempre dos inconvenientes: el
trauma adicional de la zona afectada provocado por el paso de la aguja y del hilo a
través del tejido, y la reacción del organismo frente a un cuerpo extraño.
El traumatismo adicional provocado por la sutura queda reducido al emplear
montajes atraumáticos, en los que la aguja y el hilo forman una unidad, evitándose
el orificio transversal de la aguja y el doble lazo enhebrado del sistema clásico.
CUALIDADES DEL MATERIAL DE SUTURA:
- Absoluta garantía de esterilidad.
- Gran resistencia a la tracción.
- Elasticidad reducida.
- Elevado grado de flexibilidad.
- Calibre constante.
- Superficie regular y lisa.
- Seguridad de la fijación en el nudo.
- No debe presentar fenómenos de capilaridad (a veces mínima).

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- Máxima compatibilidad histológica.
- En combinaciones aguja-hilo, el máximo atraumatismo en la unión.
CLASIFICACION Y DESCRIPCION DE LOS MATERIALES DE SUTURA:
Desde el punto de vista práctico es conveniente distinguir entre suturas
absorbibles y no absorbibles.
Absorbibles:
a). Suturas orgánicas.
b). Suturas sintéticas.
Suturas Orgánicas Absorbibles:
Cátgut: se obtiene de la submucosa del intestino ovino o de la serosa del intestino
de vacuno y contiene aproximadamente un 98% de colágeno.
El cátgut se destruye en los tejidos por medio de un proceso proteolítico. Se
absorbe en el organismo en 4 - 5 días.
Cátgut cromado para que dure más el período de absorción, de 8 a 10 días.
"colágeno + cromo".
Cátgut ultra cromado de 18-20 días. Se absorbe por proteolisis.
Suturas Sintéticas Absorbibles:
Derivados de ácido poliglicólico (APG) "Dexon".
DEXON y VICRYL (Poliglactín 910) se reabsorben en los tejidos por hidrólisis. La
humedad en los tejidos es siempre constante. Su duración es de 50 - 60 días en el
organismo. La disminución de la resistencia es gradual y el tiempo de reabsorción
constante.

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Materiales de sutura no absorbibles:
a). De origen natural.
b). De origen sintético
1. Fibras naturales multifilamento:
Estos materiales de sutura consisten en fibras retorcidas o trenzadas de seda o
lino.
La seda se usa sin tratar o tratada con proteínas, silicona, cera o parafina. El
tratamiento disminuye la capilaridad y da al hilo mayor suavidad. Estos materiales
son irritantes, por ello se tratan.
La seda se emplea sobre todo en piel, y el lino en cirugía abdominal. Ambos muy
resistentes a la tracción.
2. Fibras sintéticas multifilamento:
Suturas poliéster y poliamidas.
Originan en los tejidos menos reacción inflamatoria que las fibras naturales.
* Fibras sintéticas multifilamento recubiertas: - recubiertas mediante
tratamientos con teflón o silicona, para suavizar su superficie y facilitar su uso.
Este tratamiento en cada fibra o en hilo ya trenzado.
3. Fibras sintéticas monofilamento:
El material utilizado puede ser poliéster, poliamida, polietileno o polipropileno,
con la característica común de tratarse de un solo hilo continuo.
4. Suturas metálicas:
* Hilo de acero inoxidable: - monofilamento o multifilamento.

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El acero origina poca reacción en los tejidos.
El nudo de cirujano:
Este es el responsable de sostener los tejidos en todo el período de cicatrización
por lo que debe haber seguridad y firmeza al hacerlo.
El nudo de cirujano se incia con el anudado de Goshi que es un nudo simple con
dos vueltas, éste se aprieta, pero sólo hace la aposición de los bordes del tejido y
el otro nudo simple de una vuelta, pero en dirección contraria al primero, éste es el
que se aprieta, jalando la punta libre del hilo con el porta aguja y la otra parte con
la mano izquierda.
Los nudos que aprietan los tejidos provocaran falta de circulación en los bordes de
la herida y necrosis, lo que hará fallar la sutura.
Sutura con puntos simples interrumpidos:
Esta es la sutura más antigua que se conoce y la técnica más sencilla de
aplicacación en cualquier tejido; tiene la cualidad que en determinado momento
pueden ser retirados de la piel uno o dos puntos cuando el caso lo amerite, por
ejemplo en la presencia de exudados, seromas o abscesos localizados en el punto
y esto nos permite que se produzca un drenaje.
El punto va en ángulo recto a la herida, clavando la aguja en el borde que se elija,
atraviesa la piel de afuera hacia adentro, luego se va al lado o borde opuesto y
penetra de adentro hacia fuera; entonces es cuando ejecutamos el anudado o

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nudo de cirujano ya descrito, el cual antes de apretarlo se jala hacia un lado y de
esta manera el nudo queda fuera de la herida, lo que evitará filtración bacteriana.
Los puntos simples interrumpidos van siempre a distancias entre 1 y 2 cm
dependiendo del tejido.
En heridas grandes se recomienda hacer el primer el primer punto en el centro de
la herida, calculando que las líneas de sutura tengan igual distancia tanto del lado
izquierdo como del lado derecho, luego los espacios de cada lado se van
suturando de la línea de la herida buscando una buena estética.
Una vez terminada la sutura, para mayor seguridad, se jala cada de la puntas de
cada nudopara comprobar que están bien hechos.
Se recomienda después ya sea con una compresa o con la palma de la mano
comprimir toda la línea de puntos para que todos los bordes coapten bien y no
queden crestas o bordes que nos quiten estética.
Sutura recurrente o en ¨U¨ horizontal:
La sutura inicialmente se parece al punto simple que entra y sale en el primero y
segundo borde, sólo que en lugar de anudar regresa del segundo borde dejando
un espacio pinchando de afuera hacia adentro y se va al primer borde entrando de
adentro hacia fuera y de esta manera se hacen cuatro pinchazos juntándose los
hilos de sutura el mismo lado donde se anudará con nudo de cirujano sin apretar
los bordes, solo que cuando entra y sale al final dibuja una ¨ U¨.
Esta sutura es muy importante en suturas donde pueden sufrir de tensión y
heridas grandes y el anudado queda siempre afuera de la herida; además acelera
más la cicatrización.

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Sutura simple en equis ¨X¨:
Este tipo de sutura se recomienda con buenos resultados para suturas de facias
de los músculos internos y externos de os músculos rectos del abdomen como en
casos de cesáreas, laparotomías y rumenotomías.
Tiene la ventaja que evita desgarres cuando hay tensión como en las suturas
continuas, pero la sutura en incisiones grandes es más lenta.
A. Puntos simples interrumpidos simples
B. En U horizontal
C. Sutura simple en X
Sutura en U vertical

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Patrones de de sutura continua:
Continua simple
Una sutura continua simple consiste en una serie de puntos interrumpidos simples,
con un nudo en cada extremo; la sutura es continua entre los nudos (fig. A). Para
comenzar una línea de sutura continua simple, se coloca y anuda un punto
interrumpido simple, pero sólo se corta el cabo del hilo que no está unido a la
aguja. La aguja se dirige a través de la piel, perpendicular a la incisión. La línea de
sutura resultante tiene un punto perpendicular a la línea incisional por debajo del
tejido; avance hacia delante por encima de la misma. Si las porciones profunda y
superficial de la línea de sutura avanzan, se la denomina sutura corrediza (fig. B).
Para finalizar una sutura continua, el extremo del hilo en la aguja se ata con la
última lazada de la sutura que es exterior a los tejidos.
Parámetros a tomar en cuenta para la elección del material de sutura:
 Tiempo para mantener unidos los bordes de la herida.
 Grado de fijación o movilidad deseado.
 Riesgo de infección de la herida.
 Reacción producida por la sutura en los tejidos.
 Calibre mínimo para una resistencia adecuada.
 Calibre mínimo para fijar los bordes sin desgarros.

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Bibliografía:
Cirugía en Pequeños Animales. Theresa Welch Fosum. Intermédica.1999.
Cirugía Veterinaria. Prácticas Básicas. Joaquín Sopena Juncosa; María Jesé
Martínez MIRA. Editores.
Fundamentos de Cirugía en Animales. Ciriaco Trista Olmos. Primera Edición
I993. Editorial Trillas.
Medicina y Cirugía en Especies Pequeñas. M. Joseph Bojrab. C.E.C.S.A
Métodos de Sutura en Cirugía Veterinaria. K. Ammann. Editorial C.E.C.S.A

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CASTRACIÓN
En nuestros días se da la tendencia a la castración de machos al desmadre para
favorecer el engorde y dar una mejor distribución de grasa en las áreas más
musculosas.
También se castra el macho adulto con el fín de usarlo para trabajo por ejemplo en
el arado de la tierra y tirar de carreta que es el llamado buey.
En sementales se da la condición de la castración unilateral, en casos como
hematoma peritesticular, tumores e inflamación crónioca del testículo por trauma.
En machos jovenes al desmadre, la castración se facilita por ell tamaño del
animal, pues de fácil sujección lo que nos favorece para extirpar o enuclear los
testículos.
TECNICAS DE CASTRACION (ORQUIDECTOMIA):
TECNICA DE CASTRACION CERRADA:
En la técnica cerrada no se incide la vaginal parietal, por lo que se exterioriza el
testículo rodeado por sus envolturas, tras seccionar la facia espermática y el
ligamento escrotal, luego se aplica doble ligadura de transfixión en masa sobre las
túnicas y el cordón y se secciona distalmente ellas extrayendo el testículo. Esta
técnica reduce el riesgo de eventraciones por hernias inguinales postquirúrgicas.
En machos de gran tamaño (toros) se utiliza un hemasculador para seccionar el
cordón espermático para realizar un corte acompañado de machacamiento
vascular lo que mejora la hemostasia.

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Infiltración de lidocaína al 2% en línea media. Infiltración intratesticular de
lidocaína
TECNICA DE CASTRACION ABIERTA:
En esta técnica se incide el escroto y túnicas testiculares, incluida la vaginal
parietal, y se exterioriza el testículo y el cordón espermático tras retraer las
túnicas testiculares, las estructuras del cordón se ligan doblemente y por
separado, la vaginal y el cremaster se ligan en masa, luego se extrae el testículo
seccionando distalmente a las ligaduras.
En caso de emplear la
técnica castración abierta

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Realización de ligadura transficiante en ligamento escrotal. Colocación de
un clamp en la unión ligamento – testículo. Sección del ligamento entre el
clamp y ligadura.
Con el objetivo de liberar al testículo con su cordón espermático y plexo.
Colocación del emasculador en distal
Colocación del emasculador en distal del clamp para realizar la sección del
testículo.

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Para la castración cerrada, se incide piel por línea media y se exterioriza el
testículo con sus envolturas y proceder a realizar una ligadura.
HERNIAS ABDOMINALES
Concepto:
Una hernia es la protrusión de un órgano a través de un defecto en la pared de la
cavidad anatómica que lo contiene.
Es decir, existe un órgano que cambia de localización pasando, a través de un
defecto de la cavidad anatómica que lo aloja habitualmente a otra patológica.
Componentes: Contenido. Anillo. Saco:
El contenido de una hernia influye de forma decisiva en el cuadro clínico que va a
desarrollar. De ahí la importancia de conocerlo y de saber denominar a las
hernias en función de su contenido. Añadir al nombre del órgano protusionado

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(en latín o griego) el sufijo ¨cele¨ que significa cavidad. Ej; epiplocele, enterocele,
cistocele, histerocele.
Anillo: Existen dos tipos de anillos herniarios, los no naturales y los naturales. Los
no naturales son defectos simplemente por existir en una localización en la que
anatómicamente no hay nigún orificio. Los naturales , son normales en cuanto a su
localización, pero no en cuanto a su morfología; es decir su excesivo tamaño o su
exagerada laxitud los hacen defectuosos.
Saco: Existe siempre u saco externo constituido por piel y tejido subcutáneo.
Además, si el anillo no incluye al peritoneo, éste constituye el saco interno de la
hernia.
TIPOS DE HERNIAS ABDOMINALES
En función de su localización las hernias abdominales de los P. A se clasifican en
los siguientes topos:
Craneales: (Diafragmáticas) Umbilicales
Caudales: Inguinales, Escrotales, Perineales
Ventrales o parietales.
ETIOLOGÍA
Dos tipos de hernias:
Congénitas y adquiridas:
Una hernia es congénita o adquirida cuando lo es su anillo.

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Si el defecto herniario se produce tras el nacimiento, la hernia es adquirida. Puede
estar provocada por un traumatismo o por cualquier proceso causante de debilidad
muscular, a nivel local o general.
Una hernia congénita es causada por la por la presencia de un defecto parietal
originado durante el desarrollo embrionario.
SIGNOS CLÍNICOS
Signos inespecíficos:
Dependen de si la hernia se ha complicado o no.
Una hernia se complica cuando su anillo se cierra sobre el contenido interfiriendo
su vascularización. Este tipo de hernias se denominan estranguladas.
Una hernia pasa de ser reducible a estar estrangulada cuando el anillo se estrecha
sin comprimir los vasos , impidiendo solo el regreso del contenido a su cavidad de
origen mediante maniobra externa y manual.
Se afecta la vascularización del contenido en tres fases:
Fase congestiva: ( abultamiento y signos de Celso)
Fase de isquemia: (abultamiento, palidez de la zona, frío y dolor)
Fase de necrosis: (tumor, dolor y frío, pero el color toma tintes pardos, verdosos
o negruzcos). Además de fiebre, anorexia , decaimiento, taquicardia y taquipnea .
Puede llegar al shock endotóxico y la muerte.

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Signos específicos:
Dependen del tamaño, contenido o localización de la hernia.
Tamaño: hernias muy grandes pueden interferir en la marcha.
Contenido: dependiendo de cual se dará una u otra sintomatología ( estreñimiento,
diarrea u obstrucciones intestinales en enteroceles, infecciones urinarias o partos
distócicos en histeroceles, disuria en cistocele).
Localización: las hernias perineales se ulceran con facilidad. El animal presenta
una posición de cola levantada.
DIAGNÓSTICO
Palpación del anillo:
• Hernia reducible.
• Hernia estrangulada.
• Hernia incarcerada.
Radiología:
• Contenido
PRONÓSTICO
TRATAMIENTO

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DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
DE:
Abscesos.
Hematomas.
Neoplasias.
G. infartado
MEDIANTE:
Palpación.
Punción.
Radiología.
Localización.

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TRATAMIENTO QUIRURGICO DE LAS HERNIAS
La intervención quirúrgica destinada a solventar una hernia se denomina
¨herniorrafia¨ y consta siempre de las siguientes fases:
Abordaje quirúrgico del saco herniario:
Reintegro del contenido al abdomen (exéresis del no viable):
Cierre del anillo herniario: (los anillos naturales no se cierran por completo)
Obliteración del saco:
Cierre de la herida por planos:
Preparación del campo: Depilación y aplicación de antiséptico.

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Abordaje quirúrgico del saco herniario. Ampliación de la incisión
Reintegro del contenido al abdomen (exéresis del no viable):
Sección de la adherencia intestinal

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Segmento Intestinal seccionado por la adherencia. Cierre en dos capas: primera
con sutura continua y segunda con sutura de lember reimbertida.
Reavivar el anillo herniario
Obliteración del saco herniario

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CIERRE DEL ANILLO CON TEJIDO LOCAL
No someter a los tejidos a excesiva tensión.
Reavivar los bordes.
Si es posible superponer los bordes.
Puntos encontrados (simples en ¨U¨)
Cierre de subcutáneo con vicryl o catgut
Cierre de piel con Nylon

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MÓDULO: MICROBIOLOGÍA VETERINARIA Y DIAGNÓSTICO
LABORATORIAL
INTRODUCCIÓN
La microbiología es la ciencia encargada del estudio de los microorganismos,
seres vivos pequeños (de mikros "pequeño", bios, "vida" y logos, "estudio"). Al
tratar la microbiología sobre todo los microorganismos patógenos para los
animales y el hombre, se relaciona con categorías de la medicina como patología,
inmunología y epidemiología. El objetivo del módulo de Microbiología es, transmitir
al estudiante los principios básicos, introduciendo los diversos mecanismos
utilizados por los diferentes agentes infecciosos para provocar una infección. Así
mismo se hará énfasis en aquellos agentes que se manifiestan como causantes
de procesos infecciosos en animales y transmitirse al hombre. La Microbiología ha
contribuido de forma notoria al progreso de la ciencia actual, primero por
aportaciones sobre bases empíricas y después sobre fundamentos sólidos, fruto
del intenso esfuerzo en el estudio y entendimiento de las diversas estrategias
utilizadas por los diferentes microorganismos para provocar enfermedad en el
huésped.
El módulo se impartirá vinculando la parte teórica con la práctica, para que el
estudiante integre los conocimientos adquiridos y vaya desarrollando habilidades
en el diagnóstico de estos agentes. Así el estudiante será capaz de realizar
diferentes ensayos de diagnóstico y llegar a la interpretación de los resultados
encaminados a la solución del problema se presente en el campo laboral. El
documento servirá de apoyo para que el estudiante tenga una referencia de cómo
encaminar el diagnóstico; éste contendrá generalidades de los microorganismos,
refiriéndose a su morfología, estructura, composición y replicación. Para luego
hacer énfasis en las principales patologías que afectan a los animales domésticos.
A medida que se vaya desarrollando el curso se incluirá el diagnóstico laboratorial
con sus procedimientos para que puedan llevar el ensayo.

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I. TOMA, CONSERVACIÓN Y ENVÍO DE LAS MUESTRAS
1. INTRODUCCION
La propedéutica clínica es una herramienta esencial el diagnóstico en un 80%
de los padecimientos de los animales, el otro 20% corresponde a la
confirmación y apoyo de un laboratorial. Para ello es de vital importancia la
toma de las muestras; sin embargo, este esfuerzo puede verse mermado por
una selección, preparación, manejo y envío inadecuado de las mismas. Esta
situación puede ser evitada mediante el seguimiento cuidadoso de algunos
principios generales:
a. La muestra seleccionada deberá ser representativa del padecimiento.
b. Suele ser preferible el envío de varios especímenes del mismo lugar.
c. Las muestras deberán ser perfectamente identificadas.
d. Deberá incluirse la Historia Clínica del individuo.
e. Para cada caso se elegirá el tipo de recolección, manejo, conservación y
envío más adecuado, a la especie y tipo de padecimiento presentado.
f. Cuidar en lo posible, el manejo estéril de la muestra y en una cantidad
adecuada.
2. TECNICA DE PUNCION VENOSA
En la práctica veterinaria los exámenes hematológicos se realizan más
satisfactoriamente con la sangre venosa. La punción venosa, se realiza con
aguja y jeringa de distintas medidas según el caso, ejecutándola sobre
cualquiera de las venas superficiales del individuo: Por ejemplo en el caballo, la
vaca y la oveja se emplea la vena yugular, aunque también puede ser utilizada
la punción de arterias coccígeas para pruebas serológicas en bovinos; Las
venas safena y radial, pueden sugerirse para el perro y gato; El cerdo es
sangrado normalmente en la vena cava anterior y en algunas razas en la
auricular; Los animales de laboratorio como el cobayo, ratón, rata y conejo son
desangrados fácilmente en el corazón, vena caudal o auricular.

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3. TECNICAS DE SANGRADO EN PERRO Y GATO.
El sangrado en perro y gato se lleva a cabo principalmente en las venas safena y
radial. Lo más importante para una correcta obtención de muestra será la
adecuada sujeción del individuo. Posteriormente se deberá ocluir la vena por
presión digital o torniquete. La piel sobre la vena es móvil, por lo cual se deberá
inmovilizar con los dedos de la mano que sujeta el miembro. La aguja deberá
insertarse con el bisel hacia arriba (No 21 para perros y 22 al 25 para gatos). Se
deberá evitar interrumpir la circulación por tiempos prolongados para evitar
hemoconcentración. La cantidad a obtener será de 3 a 5 ml, evitando colapsar la

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