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DISPERSIÓN DE LUZ
1
DISPERSIÓN DE LUZ

John William Strutt
Lord Rayleigh

2
DISPERSIÓN DE LUZ
El fotón incidente induce un dipolo oscilante en la nube electrónica.
Al cambiar el dipolo, la energía se irradia-dispersa en todas direcciones.

3
DISPERSIÓN DE LUZ
Se puede analizar de diferentes maneras:


Intensidad promedio (Estática)
(SLS, static light scattering)



Fluctuaciones en la intensidad (Dinámica)
(DLS, dynamic light scattering)

4
DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA
Medida de masas moleculares
Intensidad promedio de dispersión es función de la
masa molecular y el 2do coeficiente virial


K = constante óptica
MM = masa molecular
A2 = 2do coeficiente virial

C = Concentración (g/L)
R = relación de Rayleigh
(término que incluye la intensidad)

5
DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA

Constante

Relación de Rayleigh

Factor de forma,
= 1 si r < 60 nm

6
DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA


La intensidad de luz dispersada que produce una
macromolécula es proporcional al producto de la masa
molecular promedio y la concentración de la macromolécula (I
α MMC)



Si no hay dependencia entre la intensidad de dispersión y el
ángulo de medida, se puede determinar MM con medidas en
un solo ángulo



Un gráfico de Debye permite la determinación de:
MM absoluta
 2do coefciente virial (A2)


7
DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA
2do Coeficiente Virial
 Propiedad termodinámica que describe la fuerza de
interacción entre la molécula y el solvente
Si A2 > 0, las moléculas tienden a permanecer en
solución (la proteína prefiere el buffer)
 Si A2 = 0 la fuerza de la interacción proteína-solvente
es equivalente a la fuerza de la interacción proteínaproteína (el solvente se llama solvente theta)
 Si A2 < 0, la proteína tiende a precipitar o agregar


8
DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA


Señal de dispersión R α MM C



Debido a alta MM, los agregados dispersan
fuertemente

Variación angular en la Intensidad de luz
dispersada se relaciona con el tamaño de la
molécula
 La
luz dispersada por agregados muestra
dependencia angular, mientras que la luz dispersa
por monómeros y dímeros no.


9
DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA
o

Pros

Determinación de MM rápida y exacta (promedio) de macromoléculas en
solución
Combinando SEC-MALS se puede determinar MM con una precisión ± 5%
Dependencia angular de señal de LS detecta agregados
SEC-MALS permite detectar y cuantificar poblaciones de proteínas según sus
MM
Puede determinar estado oligomerico de polipeptidos modificados (prot-ácidos
nucleicos, glicosilados, etc.

o Contras
Para medir MM promedio, necesita separación para distinguir estados
oligoméricos.
Posible perdida de muestra durante filtración y fraccionamiento.
10
DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA
Permite determinar el tamaño
de moléculas y nanopartículas

La velocidad de fluctuaciones
depende del tamaño de la
partícula - molécula
11
DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA
Fluctuaciones son resultado del movimiento browniano y puede
correlacionarse con el coeficiente de difusión y el tamaño

12
DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA







La temperatura tiene que ser estable y exactamente
determinada (regular la viscosidad y evitar la convección)
Las partículas más grandes se mueven más lentamente
A mayor temperatura, más rápido se mueven las moléculas
La velocidad del movimiento Browniano está definido por el
coeficiente de difusión translacional (D)
13
DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA
Pros
 En cubeta, muy rápida detección de agregados y
evaluación de la polidispersión de la muestra con un
amplio rango dinámico
 Adecuado para estudiar cinética de agregación
 Detector disponible para placas, parara screening

Contras
 Mide radio hidrodinámico, es cual es afectado por la
forma de la partícula
 No puede distinguir entre cambios de forma o estado de
oligomerización
 Necesita fraccionamiento para resolver oligómeros
presentes en una mezcla

14
PREPARACIÓN DE LA MUESTRA


Las moléculas de polímeros son normalmente
pequeñas comparadas con las partículas de polvo
o de otros materiales extraños a la muestra o
disolvente.



Los disolventes y soluciones de polímeros deben
clarificarse por filtración o por ultra centrifugación.

15
PREPARACIÓN DE LA MUESTRA


La diferencia entre el índice de refracción del
disolvente y del polímero debe de ser la mayor
posible.



El disolvente debe producir por sí mismo una
dispersión relativamente baja, y el sistema
polímero-disolvente no debe poseer un segundo
coeficiente de virialidad demasiado elevado.



Disolventes mixtos deben evitarse, a no ser que
posean ambos el mismo índice de refracción.

16
Esquema de los componentes
esenciales de un fotómetro de
dispersión de luz

17
RANGO DE APLICACIÓN


La dispersión de luz por las disoluciones se ha
utilizado para medir pesos moleculares tan bajos
como el de la sacarosa y tan elevados como los de
las proteínas.



En la práctica, pesos moleculares de polímeros
comprendidos entre 10000-10000000 pueden
medirse con relativa facilidad, con posibilidades de
ampliar el rango en ambos sentidos en casos
favorables.



Existen restricciones a la aplicabilidad del método
de dispersión de luz a sistemas formados por
copolimeros.

18
RANGO DE APLICACIÓN


19
BIBLIOGRAFÍA








Billmeyer W.Fred, Ciencia de los
Polímeros, Revert, 1975, pp 76-79
Seymour B. Raimond, Carraher E. Charles, Introducción
a la química
de los polímeros, Revert, 1995, pp
105-107
Protein sizing by light scattering, molecular weight and
polydispersity, Malvern Instruments presentation.
http://nanoparticles.org/pdf/nobbmann.pdf

20

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  • 2. DISPERSIÓN DE LUZ John William Strutt Lord Rayleigh 2
  • 3. DISPERSIÓN DE LUZ El fotón incidente induce un dipolo oscilante en la nube electrónica. Al cambiar el dipolo, la energía se irradia-dispersa en todas direcciones. 3
  • 4. DISPERSIÓN DE LUZ Se puede analizar de diferentes maneras:  Intensidad promedio (Estática) (SLS, static light scattering)  Fluctuaciones en la intensidad (Dinámica) (DLS, dynamic light scattering) 4
  • 5. DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA Medida de masas moleculares Intensidad promedio de dispersión es función de la masa molecular y el 2do coeficiente virial  K = constante óptica MM = masa molecular A2 = 2do coeficiente virial C = Concentración (g/L) R = relación de Rayleigh (término que incluye la intensidad) 5
  • 6. DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA Constante Relación de Rayleigh Factor de forma, = 1 si r < 60 nm 6
  • 7. DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA  La intensidad de luz dispersada que produce una macromolécula es proporcional al producto de la masa molecular promedio y la concentración de la macromolécula (I α MMC)  Si no hay dependencia entre la intensidad de dispersión y el ángulo de medida, se puede determinar MM con medidas en un solo ángulo  Un gráfico de Debye permite la determinación de: MM absoluta  2do coefciente virial (A2)  7
  • 8. DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA 2do Coeficiente Virial  Propiedad termodinámica que describe la fuerza de interacción entre la molécula y el solvente Si A2 > 0, las moléculas tienden a permanecer en solución (la proteína prefiere el buffer)  Si A2 = 0 la fuerza de la interacción proteína-solvente es equivalente a la fuerza de la interacción proteínaproteína (el solvente se llama solvente theta)  Si A2 < 0, la proteína tiende a precipitar o agregar  8
  • 9. DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA  Señal de dispersión R α MM C  Debido a alta MM, los agregados dispersan fuertemente Variación angular en la Intensidad de luz dispersada se relaciona con el tamaño de la molécula  La luz dispersada por agregados muestra dependencia angular, mientras que la luz dispersa por monómeros y dímeros no.  9
  • 10. DISPERSIÓN DE LUZ ESTÁTICA o Pros Determinación de MM rápida y exacta (promedio) de macromoléculas en solución Combinando SEC-MALS se puede determinar MM con una precisión ± 5% Dependencia angular de señal de LS detecta agregados SEC-MALS permite detectar y cuantificar poblaciones de proteínas según sus MM Puede determinar estado oligomerico de polipeptidos modificados (prot-ácidos nucleicos, glicosilados, etc. o Contras Para medir MM promedio, necesita separación para distinguir estados oligoméricos. Posible perdida de muestra durante filtración y fraccionamiento. 10
  • 11. DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA Permite determinar el tamaño de moléculas y nanopartículas La velocidad de fluctuaciones depende del tamaño de la partícula - molécula 11
  • 12. DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA Fluctuaciones son resultado del movimiento browniano y puede correlacionarse con el coeficiente de difusión y el tamaño 12
  • 13. DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA     La temperatura tiene que ser estable y exactamente determinada (regular la viscosidad y evitar la convección) Las partículas más grandes se mueven más lentamente A mayor temperatura, más rápido se mueven las moléculas La velocidad del movimiento Browniano está definido por el coeficiente de difusión translacional (D) 13
  • 14. DISPERSIÓN DE LUZ DINÁMICA Pros  En cubeta, muy rápida detección de agregados y evaluación de la polidispersión de la muestra con un amplio rango dinámico  Adecuado para estudiar cinética de agregación  Detector disponible para placas, parara screening Contras  Mide radio hidrodinámico, es cual es afectado por la forma de la partícula  No puede distinguir entre cambios de forma o estado de oligomerización  Necesita fraccionamiento para resolver oligómeros presentes en una mezcla 14
  • 15. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA  Las moléculas de polímeros son normalmente pequeñas comparadas con las partículas de polvo o de otros materiales extraños a la muestra o disolvente.  Los disolventes y soluciones de polímeros deben clarificarse por filtración o por ultra centrifugación. 15
  • 16. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA  La diferencia entre el índice de refracción del disolvente y del polímero debe de ser la mayor posible.  El disolvente debe producir por sí mismo una dispersión relativamente baja, y el sistema polímero-disolvente no debe poseer un segundo coeficiente de virialidad demasiado elevado.  Disolventes mixtos deben evitarse, a no ser que posean ambos el mismo índice de refracción. 16
  • 17. Esquema de los componentes esenciales de un fotómetro de dispersión de luz 17
  • 18. RANGO DE APLICACIÓN  La dispersión de luz por las disoluciones se ha utilizado para medir pesos moleculares tan bajos como el de la sacarosa y tan elevados como los de las proteínas.  En la práctica, pesos moleculares de polímeros comprendidos entre 10000-10000000 pueden medirse con relativa facilidad, con posibilidades de ampliar el rango en ambos sentidos en casos favorables.  Existen restricciones a la aplicabilidad del método de dispersión de luz a sistemas formados por copolimeros. 18
  • 20. BIBLIOGRAFÍA     Billmeyer W.Fred, Ciencia de los Polímeros, Revert, 1975, pp 76-79 Seymour B. Raimond, Carraher E. Charles, Introducción a la química de los polímeros, Revert, 1995, pp 105-107 Protein sizing by light scattering, molecular weight and polydispersity, Malvern Instruments presentation. http://nanoparticles.org/pdf/nobbmann.pdf 20