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NECROPSIAS.
Patología Veterinaria.
2011
MVZ. Alexandra Henao Díaz.
A. Henao D.
Definiciones
• Eutanasia (“Eu - thanatos”: buena muerte):
sacrificio humanitario, sin dolor ni sufrimiento.
• Autopsia: Examen anatómico de un cadáver.
• Necropsia (necros: muerto, ops: ver): Disección
anatómica, ordenada y sistemática de un
cadáver.
Equipo para necropsias
• Vestimenta: botas, guantes, mandil, overol, tapabocas.
• Instrumentos: cuchillo, estuche de disección.
Frascos tamaño medio:
boca ancha, vidrio o
plástico, con tapa.
Jeringas, portaobjetos,
hojas de bisturí,
bolsas, etc.
Por obligación y bioseguridad…
Importancia de la necropsia
Determinar las causas involucradas en el proceso patológico
que provocó la muerte del animal.
El diagnóstico preciso y rápido de las enfermedades que
afectan a los animales en un sistema de producción.
Evaluación: personal, MVZ, alimento, etc..
Medidas correctivas y preventivas.
Objetivos
• Identificar los focos de anormalidades o enfermedad.
• Análisis de lesiones para explicar resultados clínicos y
de laboratorio.
• Descifrar y describir la secuencia de los eventos de una
enfermedad.
Mejor labor del médico Veterinario.
Llegar a un Dx Proponer medidas
Ejecución de la necropsia - a conciencia.
Disección y observación sistémica.
Colección y conservación de muestras
(histología, citología, microbiología,
serología, parasitología, etc)
Registro de análisis de resultados.
Interpretación:
• Causa de muerte.
• Factores que contribuyeron.
• Otros aspectos de importancia clínica o hallazgos
incidentales.
Consideraciones Generales
• Tiempo: inmediato tras la muerte para evitar
cambios posmortem  Dx errado: bacterias,
descomposición, desaparición del agente causal (virus).
• Lugar: luz adecuada, agua, ventilación, drenaje,
contenedores para material biológico, etc.
LEJOS DE FUENTES DE ALIMENTACIÓN, EVITANDO
VECTORES (moscas, roedores, cucarachas, etc).
• Manejo de material biológico: preferiblemente
incinerar.
Se puede enterrar pero tener en cuenta:
– Profundidad para no ser desenterrado por predadores.
– Lejos de cultivos y fuentes de agua.
Consideraciones Generales
Muerte del animal.
Tener en cuenta:
• Seguridad.
• Bienestar animal.
• Costo.
• Limitaciones: especie.
• Técnico: conservación de muestras.
AMERICAN ASSOCIATION OF SWINE VETERINARIANS
Electrocución…
Verificar el fallecimiento:
• Reflejos.
• Respiración.
• Función cardiaca.
AMERICAN ASSOCIATION OF SWINE VETERINARIANS
Procedimiento estándar de necropsia
Pre-
necropsia
Identificar al animal
Leer historia clínica
Diagnóstico presuntivo: ¿Qué busco?
Llenar 2/3 partes del frasco con formalina
10%
Marcar contenedores para muestras
Pesar el animal.
Procedimiento estándar de necropsia
Examen
externo
Condición corporal: rigor mortis, grasa, etc
Piel, plumas, pelo: parásitos, deshidratación, etc
Descargas: vaginal, nasal, etc
Ojos: hemorragia, opacidad, etc
Orejas: parásitos, tumores, ulceras, etc
Mucosas: color, úlceras, etc
Posición y técnica para abrir el cadáver: varía de
persona a persona, de animal a animal.
Procedimiento estándar de necropsia
Posición de cúbito lateral izquierdo
Abrir extremidades: cortar piel hasta articulaciones. (retirar cabeza femoral del
acetábulo)
Corte medial desde sínfisis mandibular hasta ano.
Retraer la piel dorsalmente.
Abrir cavidad abdominal: seguir corte por el borde costal.
Punzar el diafragma: buscar escape de aire, neumotórax.
Abrir tórax, retirar las costillas.
Remoción y examen de vísceras torácicas:
Procedimiento estándar de necropsia
Separar la sínfisis mandibular y Retraer la lengua distalmente.
Cortar el H. Hioides. Retraer esófago, tráquea, laringe…
Retirar y examinar tiroides y paratiroides.
Remover pulmones, corazón y timo: corar margen espinal, esternal y
craneal, vena cava y esófago.
Cortar longitudinalmente el esófago: lesiones.
Cortar longitudinalmente la laringe: seguir corte por la tráquea,
bronquios, bronquiolos: edemas, parásitos, tumores, trombos, etc
Examinar linfonódulos bronquiales, mediastínicos, corazón y pericardio.
Remoción y examen de vísceras abdominales:
Procedimiento estándar de necropsia
Observar apariencia, desplazamientos, etc.
Remover hígado y examinar (presionar vesícula biliar): infartos, color,
parásitos, etc.
Remover tracto entérico y sus linfonódulos. examinar: mucosa,
contenido, lesiones, parásitos, hemorragias, etc
Remover, seccionar y examinar glándulas adrenales, riñones y vejiga
Remover y examinar el tracto genital y reproductor (incluir glándula
mamaria.
Examen de musculatura y anexos:
– Examinar músculos largos y tendones.
Examen de cerebro y cordón espinal:
– Diferentes técnicas de extracción.
Procedimiento estándar de necropsia
De la correcta toma y conservación de la muestra
depende el resultado.
• Muestra representativa y Cortes delgados.
• Proporción tejidos / formalina.
• Fijación a temperatura ambiente por 24-48 horas, antes del corte.
• Siempre etiquetar o identificar las muestras.
Correcto corte y conservación de muestras
Proporción
formalina - tejidos
Lesión
Corte0.5 cm grueso
Corte de tejidos.
Buen reporte de resultados.
Órganos sólidos:
• Órgano, tejido involucrado.
• Posición, relación con tejidos
adyacentes.
• Tamaño y forma.
• Peso y color.
• Apariencia y consistencia.
• Textura o superficie.
• Olor.
Órganos huecos:
• Órgano, tejido involucrado.
• Apariencia.
• Textura y superficies abiertas
• Contenido: volumen,
naturaleza, consistencia,
color, olor, transparencia,
etc.
Describir con pocas palabras pero precisas, usando un
sistema de medidas claro.
Siempre, en lo posible, tomar fotos.
Descripción de lesiones.
• Rugoso-suave-granular…
• Firme-friable-esponjoso…
• Homogéneo-moteado…
• Rojo-amarillo-rosa-negro…
• Etc…
DIAGNÓSTICO FINAL
¿Cuál es su diagnóstico tras ver esta lesión?
Reporte esta lesión con menos de 7
palabras.
TOMA DE MUESTRAS Y ELABORACIÓN
DE LAMINILLAS PARA DX
HISTOPATOLÓGICO.
MVZ. Alexandra Henao Díaz.
http://webs.uvigo.es/mmegias/inicio.html
Necesidad del muestreo
¿Como médicos qué debemos averiguar?
• ¿Qué contiene?
• ¿Qué tejido esta involucrado? –
histopatología.
• ¿Qué lo esta causando? – etiología.
• ¿Cuál fue el proceso? – patogenia.
• ¿Qué puede pasar después? – pronóstico.
HERRAMIENTAS
Y TENICAS PARA
LLEGAR AL
DIAGNÓSTICO
Necesidad del muestreo
• Etiología.
• Patogenia.
• Pronóstico.
• Tratamiento y
prevención.
• MENOR PERDIDA DE $$$
Necropsia
Necropsia
Técnica de disección correcta:
• Sistematización = orden.
• Fácil identificación de los órganos.
• Mejor muestreo.
• Mejor distribución del trabajo.
MANUAL DE TECNICAS DE NECROPSIA PATOLOGIA GENERAL.
QUIRON. email.
¿Qué órganos muestrear?
• ¿Cuáles son los principales órganos?
• ¿Cuál puede estar relacionado con los signos?
• ¿Cuál tiene una apariencia anormal o sospechosa?
• ¿Qué órganos me pueden dar pistas de lo
ocurrido?
• ¿Cuáles están en buen estado para el proceso?
• Entre otros…
¿Qué zona muestrear?
• ¿Cuál tiene una apariencia anormal?
• ¿Qué zona puede estar relacionada con los
signos?
• SIEMPRE TOMAR PARTE NORMAL + PARTE
ANORMAL PARA COMPARAR TEJIDOS.
Cómo tomar la pieza.
• Grueso conforme al tejido para que sea fijado;
si la muestra es muy gruesa no estará fijado en el
interior.
• Órganos tubulares, ligar ambos extremos e
inyectar fijador.
•Tener siempre en cuentas QUÉ SE QUIERE
OBSERVAR en el microscopio.
Autolisis
Fijación de la muestra
Cada cajita será una laminilla.
La relación formalina – órganos
es muy importante para la
calidad de las laminillas.
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Corte en microtomo
Montaje a las laminillas
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Laminillas para microscopía
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MICROSCOPIO VIRTUAL.

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  • 3. Equipo para necropsias • Vestimenta: botas, guantes, mandil, overol, tapabocas. • Instrumentos: cuchillo, estuche de disección. Frascos tamaño medio: boca ancha, vidrio o plástico, con tapa. Jeringas, portaobjetos, hojas de bisturí, bolsas, etc.
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  • 5. Importancia de la necropsia Determinar las causas involucradas en el proceso patológico que provocó la muerte del animal. El diagnóstico preciso y rápido de las enfermedades que afectan a los animales en un sistema de producción. Evaluación: personal, MVZ, alimento, etc.. Medidas correctivas y preventivas.
  • 6. Objetivos • Identificar los focos de anormalidades o enfermedad. • Análisis de lesiones para explicar resultados clínicos y de laboratorio. • Descifrar y describir la secuencia de los eventos de una enfermedad. Mejor labor del médico Veterinario. Llegar a un Dx Proponer medidas
  • 7. Ejecución de la necropsia - a conciencia. Disección y observación sistémica. Colección y conservación de muestras (histología, citología, microbiología, serología, parasitología, etc) Registro de análisis de resultados. Interpretación: • Causa de muerte. • Factores que contribuyeron. • Otros aspectos de importancia clínica o hallazgos incidentales.
  • 8. Consideraciones Generales • Tiempo: inmediato tras la muerte para evitar cambios posmortem  Dx errado: bacterias, descomposición, desaparición del agente causal (virus). • Lugar: luz adecuada, agua, ventilación, drenaje, contenedores para material biológico, etc. LEJOS DE FUENTES DE ALIMENTACIÓN, EVITANDO VECTORES (moscas, roedores, cucarachas, etc).
  • 9. • Manejo de material biológico: preferiblemente incinerar. Se puede enterrar pero tener en cuenta: – Profundidad para no ser desenterrado por predadores. – Lejos de cultivos y fuentes de agua. Consideraciones Generales
  • 10. Muerte del animal. Tener en cuenta: • Seguridad. • Bienestar animal. • Costo. • Limitaciones: especie. • Técnico: conservación de muestras. AMERICAN ASSOCIATION OF SWINE VETERINARIANS
  • 11. Electrocución… Verificar el fallecimiento: • Reflejos. • Respiración. • Función cardiaca. AMERICAN ASSOCIATION OF SWINE VETERINARIANS
  • 12. Procedimiento estándar de necropsia Pre- necropsia Identificar al animal Leer historia clínica Diagnóstico presuntivo: ¿Qué busco? Llenar 2/3 partes del frasco con formalina 10% Marcar contenedores para muestras Pesar el animal.
  • 13. Procedimiento estándar de necropsia Examen externo Condición corporal: rigor mortis, grasa, etc Piel, plumas, pelo: parásitos, deshidratación, etc Descargas: vaginal, nasal, etc Ojos: hemorragia, opacidad, etc Orejas: parásitos, tumores, ulceras, etc Mucosas: color, úlceras, etc
  • 14. Posición y técnica para abrir el cadáver: varía de persona a persona, de animal a animal. Procedimiento estándar de necropsia Posición de cúbito lateral izquierdo Abrir extremidades: cortar piel hasta articulaciones. (retirar cabeza femoral del acetábulo) Corte medial desde sínfisis mandibular hasta ano. Retraer la piel dorsalmente. Abrir cavidad abdominal: seguir corte por el borde costal. Punzar el diafragma: buscar escape de aire, neumotórax. Abrir tórax, retirar las costillas.
  • 15.
  • 16. Remoción y examen de vísceras torácicas: Procedimiento estándar de necropsia Separar la sínfisis mandibular y Retraer la lengua distalmente. Cortar el H. Hioides. Retraer esófago, tráquea, laringe… Retirar y examinar tiroides y paratiroides. Remover pulmones, corazón y timo: corar margen espinal, esternal y craneal, vena cava y esófago. Cortar longitudinalmente el esófago: lesiones. Cortar longitudinalmente la laringe: seguir corte por la tráquea, bronquios, bronquiolos: edemas, parásitos, tumores, trombos, etc Examinar linfonódulos bronquiales, mediastínicos, corazón y pericardio.
  • 17. Remoción y examen de vísceras abdominales: Procedimiento estándar de necropsia Observar apariencia, desplazamientos, etc. Remover hígado y examinar (presionar vesícula biliar): infartos, color, parásitos, etc. Remover tracto entérico y sus linfonódulos. examinar: mucosa, contenido, lesiones, parásitos, hemorragias, etc Remover, seccionar y examinar glándulas adrenales, riñones y vejiga Remover y examinar el tracto genital y reproductor (incluir glándula mamaria.
  • 18. Examen de musculatura y anexos: – Examinar músculos largos y tendones. Examen de cerebro y cordón espinal: – Diferentes técnicas de extracción. Procedimiento estándar de necropsia De la correcta toma y conservación de la muestra depende el resultado. • Muestra representativa y Cortes delgados. • Proporción tejidos / formalina. • Fijación a temperatura ambiente por 24-48 horas, antes del corte. • Siempre etiquetar o identificar las muestras.
  • 19. Correcto corte y conservación de muestras Proporción formalina - tejidos Lesión Corte0.5 cm grueso Corte de tejidos.
  • 20. Buen reporte de resultados. Órganos sólidos: • Órgano, tejido involucrado. • Posición, relación con tejidos adyacentes. • Tamaño y forma. • Peso y color. • Apariencia y consistencia. • Textura o superficie. • Olor. Órganos huecos: • Órgano, tejido involucrado. • Apariencia. • Textura y superficies abiertas • Contenido: volumen, naturaleza, consistencia, color, olor, transparencia, etc. Describir con pocas palabras pero precisas, usando un sistema de medidas claro. Siempre, en lo posible, tomar fotos.
  • 21. Descripción de lesiones. • Rugoso-suave-granular… • Firme-friable-esponjoso… • Homogéneo-moteado… • Rojo-amarillo-rosa-negro… • Etc…
  • 23. ¿Cuál es su diagnóstico tras ver esta lesión? Reporte esta lesión con menos de 7 palabras.
  • 24. TOMA DE MUESTRAS Y ELABORACIÓN DE LAMINILLAS PARA DX HISTOPATOLÓGICO. MVZ. Alexandra Henao Díaz. http://webs.uvigo.es/mmegias/inicio.html
  • 25. Necesidad del muestreo ¿Como médicos qué debemos averiguar? • ¿Qué contiene? • ¿Qué tejido esta involucrado? – histopatología. • ¿Qué lo esta causando? – etiología. • ¿Cuál fue el proceso? – patogenia. • ¿Qué puede pasar después? – pronóstico. HERRAMIENTAS Y TENICAS PARA LLEGAR AL DIAGNÓSTICO
  • 26. Necesidad del muestreo • Etiología. • Patogenia. • Pronóstico. • Tratamiento y prevención. • MENOR PERDIDA DE $$$
  • 28. Necropsia Técnica de disección correcta: • Sistematización = orden. • Fácil identificación de los órganos. • Mejor muestreo. • Mejor distribución del trabajo. MANUAL DE TECNICAS DE NECROPSIA PATOLOGIA GENERAL. QUIRON. email.
  • 29. ¿Qué órganos muestrear? • ¿Cuáles son los principales órganos? • ¿Cuál puede estar relacionado con los signos? • ¿Cuál tiene una apariencia anormal o sospechosa? • ¿Qué órganos me pueden dar pistas de lo ocurrido? • ¿Cuáles están en buen estado para el proceso? • Entre otros…
  • 30. ¿Qué zona muestrear? • ¿Cuál tiene una apariencia anormal? • ¿Qué zona puede estar relacionada con los signos? • SIEMPRE TOMAR PARTE NORMAL + PARTE ANORMAL PARA COMPARAR TEJIDOS.
  • 31. Cómo tomar la pieza. • Grueso conforme al tejido para que sea fijado; si la muestra es muy gruesa no estará fijado en el interior. • Órganos tubulares, ligar ambos extremos e inyectar fijador. •Tener siempre en cuentas QUÉ SE QUIERE OBSERVAR en el microscopio.
  • 33. Fijación de la muestra Cada cajita será una laminilla. La relación formalina – órganos es muy importante para la calidad de las laminillas.
  • 34.
  • 37. Montaje a las laminillas