Este documento describe las tareas y situaciones críticas relacionadas con el uso de formaldehído en laboratorios de anatomía patológica. Analiza el proceso de trabajo, propone mejoras y presenta los resultados de mediciones de concentraciones ambientales y personales de formaldehído en diferentes tareas como recepción de muestras, corte, lavado y procesamiento. Las principales recomendaciones son utilizar extracciones localizadas, mesas de corte automatizadas y sistemas cerrados de transporte para reducir la exposición al formaldehído

1. Tareas y situaciones críticas en la utilización de
formaldehído en laboratorios de Anatomía Patológica.
Descripción del proceso de trabajo
Propuestas de mejora
Mª José Jiménez Alcalá
Hospital Universitari Vall d’Hebron
Begoña Macarrón Gómez
Parc Taulí Sabadell H. Universitari
Barcelona, Vall d’Hebron, 5 de noviembre de 2015

2. Características Formaldehído
Toxicología. Volatilidad
Contexto legal
Trabajo de técnicos PRL y del
SAP (Servicio Anatomía Patológica)
● Bibliografía
● Puesta en común de
experiencias de técnicos PRL
● Check-list higiénico
● Observaciones y mediciones
Nuevo contexto legal:
Nueva clasificación del formaldehído
Redimensionar el problema
y su abordaje:
Tareas de mayor riesgo de
exposición
Eficacia de las medidas de
control existentes.
Introducción

3. Fijador y conservante
Introducción
Actividades con uso de formaldehido en Anatomía Patológica:
Secuencia de tareas, de ubicaciones, de procedimientos de trabajo.

4. Principales tareas del procesamiento con formaldehído
BIOPSIAS
NECROPSIAS
Recepción
(muestra
fijada)
Extracción
de muestra
Almacenamiento
previo procesado
Llenado de
recipientes
Almacenamiento
de muestras.
Archivo
ProcesadorResiduos
Lavado de
muestras
Corte de
muestras
Inclusión
en casete
Almacenamiento
previo procesado
Llenado de
recipientes
Ver vídeo:
00_JornadaFormalCat_Biopsia_HQ.mp4
Ver vídeo:
00_JornadaFormalCat_Necropsia_HQ.mp4

5. Principales tareas del procesamiento con formaldehído
BIOPSIAS
NECROPSIAS
Recepción
(muestra
fijada)
Extracción
de muestra
Almacenamiento
previo procesado
Llenado de
recipientes
Almacenamiento
de muestras.
Archivo
ProcesadorResiduos
Lavado de
muestras
Corte de
muestras
Inclusión
en casete
Almacenamiento
previo procesado
Llenado de
recipientes

6. Tubos fumígenos + vídeo
Medición velocidad de captación
Medición concentraciones
ambientales y personales:
Medición de caudal
Metodología
Método determinación INSHT.
MTA/MA-062/A08
25 cm
Formaldemeter htV-M
Lectura directa
Toma activa de muestras.

7. Recepción
(muestra
fijada)
Recepción
(muestra
fijada)
Principales tareas del procesamiento con formaldehído
Extracción
de muestra
Extracción
de muestra
BIOPSIAS
NECROPSIAS
FOCOS:
• Recipientes mal cerrados.
• Pequeños derrames de los recipientes
• Papeles impregnados con formol
en papeleras abiertas

8. www.milestonemedsrl.com www.biopsafe.com
• Evitar pequeños
derrames
www.sarstedt.com
Recepción
Biopsias
Recepción
Biopsias
Mejoras

9. • Recepción alejada/separada de las zonas de
procesamiento.
RECEPCIÓN
RECEPCIÓN
RECEPCIÓN
Recepción
Biopsias
Recepción
Biopsias
Mejoras

10. • Recepción separada de las zonas de procesamiento:
ventilación, esclusa/doble puerta.
Armario intercambiador de doble puerta (esclusa)
Recepción
Biopsias
Recepción
Biopsias
Mejoras

11. Almacenamiento de biopsias o
necropsias previo al procesado
Almacenamiento de biopsias o
necropsias previo al procesado
• Extracción de sala, armarios
con extracción.
Mejoras

12. • Ventilación separada de otras
zonas de procesamiento.
Alejamiento. Presión negativa.
ALMACÉN
SALA DE CORTE /
INCLUSIÓN
Alejamiento
Mejoras
ALMACÉN
SALA DE CORTE /
INCLUSIÓN
Proximidad/Contigüidad
Almacenamiento de biopsias o
necropsias previo al procesado
Almacenamiento de biopsias o
necropsias previo al procesado

13. SIN EXTRACCIONES LOCALIZADAS
¿Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Sala de corte Llenado de recipientes

14. EXTRACCIONES DE AIRE
Dispensación del formol 4%
desde dentro de la mesa de
corte.
Dispensación del formol 4% desde
armarios con extracción.
Extracciones situadas próximas a
la zona de dispensación.
En boca: 1,95 m/s
A 10 cm: 0,14 m/s
Sala de corte Llenado de recipientes

15. EXTRACCIONES LOCALIZADAS Y DISPENSACIÓN AUTOMÁTICA
Dispensación en el
interior de vitrina de
extracción
Dispensación
automática desde la
mesa de corte
Conexiones no estancas
Sala de corte Llenado de recipientes

16. Determinar la concentración en condiciones simuladas:
• Llenado de 10 recipientes de 0,5 litros
• Tiempo de muestreo: 6 minutos
• Repetición de la tarea (3x)
• Distancia de medición
Llenado de
recipientes.
Metodología
Llenado de
recipientes.
Metodología
Sala de corte Llenado de recipientes

17. RESULTADOS, variación según:
• Si se utiliza o no extracción localizada.
• Diseño de la mesa de corte.
• Si se han producido turbulencias, en paralelo.
• Si simultáneamente hay emisiones en otras tareas.
N= 9 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
TAREA BAJO EXTRACCIÓN TAREAS SIN EXTRACCIÓN
LOCALIZADA
Concentración
(mg/m3)
0,1 - < 0,3 > 0,3 > 0,7
Nº de hospitales 2 5 2
Sala de corte Resultados: Llenado de recipientes

18. • Evitar hacer diluciones (uso de formaldehído 4% ).
• Bajo extracciones localizadas
• Mesas de corte con dispensación automática
Conexiones
estancas
Mejoras
Llenado de
recipientes
Llenado de
recipientes

19. LAVADO FUERA DE ZONAS CON EXTRACCIONES LOCALIZADAS
¿Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Presencia de otros focos
Sala de corte Lavado de piezas

20. LAVADO EN EL INTERIOR DE MESAS DE CORTE
GRAN VARIABILIDAD DE
DISEÑOS
GRAN VARIABILIDAD DE
DISEÑOS
Sin protección lateral ni frontal
Con protección lateral y frontal
Cerramiento con metacrilato
Sala de corte Lavado de piezas

21. Determinar la concentración en condiciones simuladas:
• Piezas anatómicas grandes (worst case).
• Tipos de piezas: placenta, pulmón, útero, intestino.
• Tres muestras por hospital
• Distancia de medición
• Abrir recipiente, extracción de la pieza y lavar bajo el grifo
durante 15 minutos
Sala de corte
Lavado de
muestras.
Metodología
Lavado de
muestras.
Metodología
Lavado de piezas

22. N= 13 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
TAREA BAJO EXTRACCIÓN LOCALIZADA TAREAS SIN
EXTRACCIÓN
Concentración
(mg/m3)
0,1 - 0,2 0,2 - 0,4 0,6 - 0,8 0,5 - 0,8
Nº hospitales 5 5 1 2
RESULTADOS, variación según:
• Si se utiliza o no extracción localizada.
• Diseño de la mesa de corte.
• Si se han producido turbulencias, en paralelo.
• Si simultáneamente hay emisiones en otras tareas.
Resultados: Lavado de piezasSala de corte

23. VARIABILIDAD DE MESAS DE CORTE
EN CUANTO AL CONFINAMIENTO EXTERIOR
Sin protección lateral ni frontal Con protección lateral y frontal
Corte de piezasSala de corte
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?

24. VARIABILIDAD EN EL INTERIOR DE MESAS DE CORTE
¿ Qué situaciones nos hemos encontrado?
Sala de corte Corte de piezas

25. Situaciones encontradas respecto a las PRÁCTICAS DE TRABAJO:
Acumulación de material en el interior.
Presencia de recipientes con formol abiertos.
Operaciones simultáneas fuera de las mesas de corte.
Turbulencias de aire por circulación de personas, puertas abiertas…
Velocidades de captación bajas en la zona de trabajo que NO pueden superar las
turbulencias generadas por factores externos o por el propio trabajo.
Sala de corte Corte de piezas

26. Determinar la concentración en condiciones simuladas:
• Piezas grandes (worst case).
• Tipos de piezas: placenta, pulmón, útero, intestino.
• Tres muestras por hospital
• Distancia de medición
• Colocación de la pieza en el lugar de la mesa de corte donde
se realiza el corte durante 15 minutos
Sala de corte Corte de piezas
Corte de
piezas.
Metodología
Corte de
piezas.
Metodología

27. RESULTADOS, variación según:
• Diferentes diseños de las mesas de corte.
• Presencia de focos de contaminación (papeleras abiertas,
recipientes abiertos …)
• Si se han producido turbulencias, en paralelo.
• Si simultáneamente hay emisiones en tarea.
N= 13 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
TAREAS EN LAS MESAS DE CORTE
Concentración
(mg/m3)
≤ 0,10 0,15 - < 0,30 > 0,30 - 0,45
Nº de hospitales 4 6 3
Sala de corte Resultados: Corte de piezas

28. • Diseño adecuado de las mesas de corte respecto a la
forma, el interior y la extracción.
• Procedimientos de trabajo: Todas las operaciones bajo la
extracción (lavar, pesar, fotografías, etc.) sin obstaculizar
la trayectoria de la aspiración
• Adecuada ubicación en la sala de las mesas de corte.
Corte de
piezas
Corte de
piezas
Lavado de
muestras
Lavado de
muestras
Mejoras

29. ¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Lavado en zona con extracción - transporte cerrado a sala procesadores.1
2 Lavado en zona con extracción - transporte
abierto a sala procesadores
Sala de corte Procesamiento de casetes

30. ¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
3
Lavado sin extracción – transporte
a sala procesadores
4 Sin lavar - transporte abierto
a sala de procesadores
Sala de corte Procesamiento de casetes

31. ¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
5 Sistema cerrado
Extracción
Sala de corte Procesamiento de casetes

32. Lavado en zona con extracción - transporte
cerrado a sala procesadores.
Lavado en zona con extracción - transporte
abierto a sala procesadores
Lavado sin extracción - transporte sala
procesadores
1
2
3
4 Sin lavar - transporte abierto a sala de
procesadores
5 Sistema cerrado
Concentración
(mg/m3)
Nº Hospitales
0,1 - 0,2 3
0,2 - 0,5 1
0,4 - 0,7 2
> 0,7 1
--- 1
VLA-EC= 0,37 mg/m3
N= 8 hospitales
Sala de corte Resultados: Inclusión en casetes
MetodologíaMetodología
Mediciones personales de 15 minutos según el
procedimiento de cada hospital

33. • Lavado previo con agua bajo extracción
localizada.
• Colocación en gradillas bajo extracción.
• Transporte cerrado a la sala de procesadores.
• Colocación en cajón con extracción y transporte
cerrado
Mejoras
Inclusión en
casetes
Inclusión en
casetes

34. ¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Procesadores manuales1
Procesadores Llenado y vaciado de recipientes

35. ¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Procesadores semiautomáticos2
Procesadores Llenado y vaciado de recipientes

36. ¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Procesadores automáticos3
Procesadores Llenado y vaciado de recipientes

37. Procesador manual1
2
3
Concentración
(mg/m3)
Nº
Hospitales
0,2 - 0,5 2
0,03 - 0,2 5
----- 2
VLA-EC= 0,37 mg/m3
N= 9 hospitales
Procesadores Resultado: Llenado y vaciado de
recipientes
Procesador semiautomático
Procesador automático
Procesadores.
Resultados
Procesadores.
Resultados
MetodologíaMetodología Mediciones personales de 15 minutos según el
procedimiento de cada hospital

38. • Evitar llenador y vaciados manuales.
• Automáticos.
• Salas separadas con sistemas de aire
independientes.
• Refuerzo de extracciones de aire.
Mejoras
ProcesadoresProcesadores
• Procesadores automáticos
sin formaldehído

39. Tareas y situaciones críticas en la utilización de
formaldehído en laboratorios de Anatomía Patológica.
Sala de Necropsia
Concentraciones ambientales de fondo

40. SIN EXTRACCIONES LOCALIZADAS
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Sala de necropsias Llenado de recipientes
¡ Pequeños derrames !
¡ Concentraciones 10% !

41. EXTRACCIONES DE AIRE
Dispensación automática desde
mesa de corte
Mesas de disección con extracción
en el plano inferior
Sala de necropsias Llenado de recipientes
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?

42. Llenado de
recipientes.
Metodología
Determinar la concentración en condiciones simuladas:
• Llenado de 1 recipientes de 10 litros
• Tiempo de muestreo de 15 minutos
• Repetición de la tarea (3x)
• Distancia de medición
Sala de necropsias Llenado de recipientes

43. RESULTADOS, variación según:
• Si se utiliza o no extracción localizada.
• Si se han producido turbulencias, en paralelo.
• Si simultáneamente hay emisiones en tarea.
N= 7 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
TAREA BAJO
EXTRACCIÓN
MESA DE DISECCIÓN
CON EXTRACCIÓN
TAREA SIN
EXTRACCIÓN
Concentración
(mg/m3)
< 0,1 0,3 - 0,5 1 - 5
Nº de hospitales 1 1 5
Sala de necropsias Resultados: Llenado de recipientes

44. • Evitar hacer diluciones.
• Bajo extracciones localizadas
• Mesas de corte con dispensación automática
Mejoras
Llenado de
recipientes.
Conexiones
estancas

45. SIN EXTRACCIONES LOCALIZADAS
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Sala de necropsias Introducción de muestras
Presencia de otros focos:
¡ Recipientes cerrados con formol!
¡ Recipientes abiertos con formol!

46. EXTRACCIONES DE AIRE
Rellenar con formaldehido después
de introducir las muestras
Mesas de disección con extracción
en el plano inferior
Sala de necropsias Introducción de muestras
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?

47. Situaciones encontradas respecto a las PRÁCTICAS DE TRABAJO y USO
DE ESPACIOS:
Zona de trasvase sin extracciones con pequeños derrames.
Garrafas de residuos y papeleras abiertas
Acumulación de recipientes en las zonas de trabajo
Recipientes no herméticos o mal cerrados con pequeños derrames
Recipientes con formol abiertos durante toda la actividad de necropsia
Almacenes anexos y comunicados con deficiente diseño de ventilación
Sala de necropsias Introducción de muestras

48. Introducción
de órganos.
Metodología
Determinar la concentración en condiciones simuladas:
• Abrir recipiente durante 20”, cerrar y repetir cada 2 minutos
hasta alcanzar el periodo de 15 min.
• Repetición de la tarea (3x)
• Distancia de medición
Sala de necropsias Introducción de muestras

49. RESULTADOS, variación según:
• Si se utiliza o no extracción localizada.
• Presencia de otros focos
• Proximidad de almacenes
• Simultaneidad de tareas
N= 4 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
MESA DE DISECCIÓN CON
EXTRACCIÓN
TAREAS SIN EXTRACCIÓN
LOCALIZADA
Concentración (mg/m3) 0,2 – 0,3 > 0,3
Número hospitales 2 2
Sala de necropsias Resultados: Introducción de muestras

50. • Buenas prácticas de trabajo:
Trabajar con muestra fresca hasta la introducción
de las muestras en formol bajo extracción localizada,
cerrar recipientes, recoger pequeños derrames, etc.
• Diseño de la sala de autopsias sectorizadas con ventilación
independiente y adecuada.
• No acumular recipientes (sin extracción).
• Armarios con extracción o salas de almacenamiento.
Mejoras
Introducción
de órganos

51. SIN EXTRACCIONES LOCALIZADAS
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?
Sala de necropsias
Lavado de órganos. Observación
y corte

52. EXTRACCIONES DE AIRE
Mesa de corte con extracción
Vitrina con extracción
Sala de necropsias
Lavado de órganos. Observación y
corte
¿ Qué situaciones nos hemos
encontrado?

53. Lavado de
órganos.
Metodología
Determinar la concentración en condiciones simuladas:
• Piezas grandes.
• Tipos de piezas: placenta, pulmón, útero, intestino.
• Tres muestras por hospital
• Lavado de piezas durante periodo de 15 min.
• Distancia de medición
Sala de necropsias
Lavado de órganos. Observación
y corte
Observación y
corte.
Metodología
• Colocar las piezas lavadas sobre la
mesa y simular la realización de
cortes para colocarlos en casetes
(15 min)

54. RESULTADOS, variación según:
• Si se utiliza o no extracción localizada
• Tipo de extracción
• Presencia de otros focos
• Simultaneidad de tareas
N= 3 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
TAREA BAJO
EXTRACCIÓN
TAREAS SIN
EXTRACCIÓN
LOCALIZADA
Concentración (mg/m3) < 0,03 0,3 - 0,8
Número hospitales 1 2
Sala de necropsias Resultados: Lavado de órganos

55. Resultados, variación según:
• Si se utiliza o no extracción localizada.
• Presencia de otros focos
• Simultaneidad de tareas
N= 3 hospitales
VLA-EC= 0,37 mg/m3
TAREA BAJO
EXTRACCIÓN
TAREAS SIN
EXTRACCIÓN
LOCALIZADA
Concentración (mg/m3) 0,02 - 0,1 0,2 - 0,3
Número hospitales 1 2
Sala de necropsias Resultados: Observación y corte

56. • Diseño de la sala de autopsias conforme los
procedimientos
• Procedimientos de trabajo: Todas las
operaciones bajo la extracción (lavar, cortar, etc.)
sin obstaculizar la trayectoria de la aspiración.
• Diseño y ubicación adecuado de las mesas de
corte
Mejoras
Lavado de
órganos
Observación y
corte

57. Niveles muy elevados Eliminar esta tarea
Sala de necropsias Recuperación de formol
Segregación
residuos

58. Identificación de fuentes difusas de aportación de
contaminación ambiental
Niveles ambientales de fondo
¡¡Presencia de otros focos!!

59. Concentración
(mg/m3)
< 0,03 0,03 - 0,05 > 0,05 – 0,2
Nº Hospitales 3 6 4
SIN ACTIVIDAD SALA DE CORTE
Medición ambiental de 20 min (x3) antes de la actividad sin presencia de personas
Niveles ambientales de fondo
Concentraciones en aire zonas urbanas: 0,02 mg/m3. (*)
Concentraciones en interior de viviendas: 0,02 – 0,06 mg/m3. (*)
(*) Pascual, J, Córdova, A. 2013. En: Libro blanco de la anatomía patológica en España,
pág. 297-315. SEAP- IAP.
SIN ACTIVIDAD SALA DE NECROPSIAS
VLA-EC= 0,37mg/m3
Concentración
(mg/m3)
< 0,03 0,03 - 0,05 > 0,05 - 0,2
Nº Hospitales 5 3 3
Existencia de focos de contaminación con emisiones continuas
(durante la noche) combinado con insuficiente renovación de aire
Presencia de contaminación al inicio de la jornada

60. Concentración (mg
/ m3)
0,08- 0,1 0,1- 0,2 > 0,3
Nº Hospitales 1 6 4
DURANTE LA ACTIVIDAD SALA DE CORTE
VLA-EC= 0,37 mg/m3
¡ Valores ambientales próximos a los
obtenidos en algunas tareas !
Medición de larga duración (180-250 minutos) durante la realización de la actividad
N= 11 Hospitales
Niveles ambientales de fondo

61. Papeleras abiertas
Bidones con formol o garrafa de residuos abiertos
Estanqueidad de los recipientes
Fuentes difusas. Niveles ambientales de fondo
EQUIPOS DE
TRABAJO
INSTALACIONES
PROCEDIMIENTOS
DE TRABAJO
Deficiencias del sistema de ventilación
Proximidad de almacenes con muestras
Acumulación de recipientes con formol
Tareas en situaciones no controladas
Recipientes abiertos.

62. Papeleras abiertas
7 hospitales
Papeleras con tapa
5 hospitales
Papeleras con tapa y extracción
1 Hospital
Niveles ambientales de fondo
Fuentes difusas de contaminación

63. Bidón sin tapa
4 Hospitales
Bidón con tapa (no estanca)
2 Hospitales
Bidón con tapa cerrada
4 Hospitales
Bidón con extracción
1 Hospital
Niveles ambientales de fondo
Fuentes difusas de contaminación

64. VENTILACIÓN DEFICIENTE
Obstaculización de sistemas de
extracción/ impulsión
Niveles ambientales de fondo
Almacén de muestras anexos y
abierto a la sala de corte

65. ALMACENES PRÓXIMOS
Niveles ambientales de fondo

66. ACUMULACIÓN DE RECIPIENTES
Niveles ambientales de fondo
¡ Contaminación ambiental!

67. • Papeleras, garrafas de residuos
con tapa y extracciones.
• Recogida automatizada de
residuos líquidos.
Mejoras
• Almacenes con extracciones
BUENAS PRÁCTICAS DE
TRABAJO

68. • Todas las tareas bajo
condiciones controladas
Mejoras
• Armarios con extracción
BUENAS PRÁCTICAS DE
TRABAJO

69. BUENAS PRÁCTICAS DE TRABAJO
• Recipientes cerrados mientras no se utilizan.
• Mantener las superficies limpias de formaldehído.
• Eliminar los residuos o material contaminado a las papeleras con
tapa.
• Abrir recipientes bajo extracción.
• No acumular muestras en zonas que no tengan extracción.
• No obstruir la extracción de aire de las mesas de corte.
• Lavado con abundante agua de las muestras previo al corte para
eliminar el exceso de formaldehído.
• Recambio frecuente del papel absorbente.
BUENAS PRÁCTICAS DE TRABAJO
• Recipientes cerrados mientras no se utilizan.
• Mantener las superficies limpias de formaldehído.
• Eliminar los residuos o material contaminado a las papeleras con
tapa.
• Abrir recipientes bajo extracción.
• No acumular muestras en zonas que no tengan extracción.
• No obstruir la extracción de aire de las mesas de corte.
• Lavado con abundante agua de las muestras previo al corte para
eliminar el exceso de formaldehído.
• Recambio frecuente del papel absorbente.
Mejoras

70. Los niveles detectados en las tareas
críticas implican plantearse la
SUSTITUCIÓN (total o parcial) del
formaldehído
Presencia de
contaminación de
fondo en todos los
hospitales (con o sin
actividad).
El control de la emisión de
formaldehido reduce la
exposición personal y la de
todo el servicio
Extracción localizada y
ventilación son
imprescindible en todas
las tareas críticas pero no
son suficientes.
Incorporación de
mejoras técnicas en los
equipos de trabajo
(procesadores,
casetes, etc..)
BUENAS
PRÁCTICAS DE
TRABAJO
Conclusiones

71. Conclusiones
bmacarron@tauli.catmjjimenez@vhebron.net