Este documento describe los procesos de detección y diagnóstico de la tuberculosis (TB) y la TB resistente. Se explican los pasos para identificar a las personas con síntomas respiratorios, realizar baciloscopías y cultivos, y utilizar pruebas rápidas como MODS y Genotype para detectar resistencias a medicamentos. También se detallan los procedimientos para el diagnóstico de TB extra-pulmonar y latente, así como el seguimiento de los resultados a través de la red NETLAB del Instituto Nacional de Salud.

1. ESNPCT
Reunión Técnica para Difusión de
Documento Normativo: “Norma Técnica de
Salud para la Atención Integral de la Persona
Afectada por Tuberculosis”.
Lima, 4 - 6 de diciembre de 2013
Procesos de Detección y
Diagnóstico de la TB y TB
Resistente

2. ESNPCT

3. ESNPCT
Proceso de detección (1)
• Identificar a los SR (tos y flema x 15 días)
• Formas de detección:
• En el EESS:
• Continua
• Obligatoria
• Permanente
• En la comunidad:
• Estudio de los contactos de TODOS los casos TB
pulmonar BAAR(+) o (-) o TB extrapulmonar
• Estudios de posibles brotes
• NO campañas masivas comunitarias
Todos los servicios del EESS

4. ESNPCT
Flujo del proceso de detección
1. Solicitar dos baciloscopía: primera en la consulta, segunda del
día siguiente
2. Llenar correctamente ficha de solicitud de investigación
bacteriológica
3. Registrar al SR en el libro de registro de SR
4. Explicar el procedimiento de toma de muestra
5. VERIFICAR que la muestra sea de 5ml
6. Entregar segundo frasco rotulado
7. Si hay riesgo de no cumplir segunda muestra aplicar:
DIAGNOSTICO EN EL MISMO DIA
8. Conservar la muestra protegida de la luz x 24 horas sin
refrigeración o 72 horas a 4ºC
9. Transportar en cajas refrigerantes
10. Laboratorio recibe la muestra y registra en el Libro de Registro
de Muestras

5. ESNPCT
Diagnóstico por baciloscopía
• Baciloscopía directa por Ziehl – Neelsen
• Toda muestra de esputo BAAR (+) debe
conservarse refrigerada y remitirse al LRR para
PS rápida.
• Todo baciloscopista público o privado debe estar
capacitado de acuerdo a los manuales del INS.

6. ESNPCT
Diagnóstico por cultivo
• Métodos aceptados: Löwenstein – Jensen,
Ogawa, agar 7H10, MGIT, MODS
• Indicaciones de cultivo:
• Diagnóstico SR en seguimiento diagnóstico,
paucibacilares, muestras valiosas: biopsias,
aspirados, líquidos biológicos, etc.
• Control de tratamiento: i) a todo BAAR(+) a partir
del segundo mes de tratamiento, ii) a todo TB
sensible al terminar el tratamiento, iii)
mensualmente a todo paciente en esquema TB
resistente
• Para realizar PS indirecta: se hace cultivo a partir
de muestras pulmonares o extra-pulmonares

7. ESNPCT
Diagnóstico clínico - radiológico
• Clínica de TB pulmonar: síntomas respiratorios
(tos, flema, dolor torácico) más síntomas
generales (fiebre, baja de peso).
• Clínica extra-pulmonar: de acuerdo a localización
• Rayos X a todo caso probable de TB pulmonar y
pacientes en seguimiento diagnóstico.

8. ESNPCT
Diagnóstico TB extra-pulmonar
• Según manifestaciones de órgano comprometido
• Exámenes auxiliares: bacteriología, histoaptología,
inmunología, estudio citoquímico, otras imágenes.
• Las pruebas bacteriológicas:
• Baciloscopía
• Cultivo sólido y/o líquido: MODS, MGIT
• PS a partir de cultivos sólidos: convencionales o
rápidas.
• Pruebas de tipificación
• Envío de muestras: dividida en suero fisiológico
(bacteriología) yen formol al 10% (histología)

9. ESNPCT
Diagnóstico de TB latente
• Es responsabilidad del médico
• La tuberculina es el método de diagnóstico:
positiva:
• 10 mm en no inmunodeficientes
• 5 mm en VIH, desnutridos y terapia
inmunosupresora, neoplasias, etc.
• El personal de enfermería es responsable de la
aplicación y lectura del PPD

10. ESNPCT
Seguimiento diagnóstico
• Si hay fuerte sospecha: clínica, radiología o
epidemiología, pero tiene dos baciloscopías
negativas.
• Solicitar dos muestras más de esputo:
• Baciloscopía 3 y 4
• Cultivo 1 y 2 (medio sólido o líquido)
• Solicitar dos muestras de esputo cada semana
para baciloscopía, siempre que el paciente
continúe con síntomas respiratorios, hasta la
obtención del resultado del cultivo.
• Mientras aplicar diagnóstico diferencial.

11. ESNPCT
Identificación y Tipificación de
micobacterias
• Identificación del complejo M. tuberculosis:
• Por inmunocromatografía (Capilia) y prueba
molecular
• Indicaciones: i) Resultado de una PS rápida
resistente a INH y RIF ii) Cultivo de persona con
VIH.
• El laboratorio donde se identifiquen cepas que NO
pertenecen al complejo MTB debe remitir la cepa
al INS para tipificación (determinación de
especie) en el INS por pruebas moleculares.

12. ESNPCT
Pruebas rápidas fenotípicas para
detectar TB-MDR (tamizaje)
• MODS:
• Prueba directa (a partir de muestras de esputo), simultáneamente TB y TB-
MDR
• Indicada para resistencia a H y R
• Resultados en promedio 7 a 14 días
• En TB pulmonar con baciloscopía (+), (-) o paucibacilar
• Indicada antes o durante el tratamiento
• Nitrato reductasa (Griess):
• Prueba directa, a partir de muestras de esputo baciloscopía positiva (una
cruz o más)
• Detecta resistencia a H y R
• Resultados entre 14 a 28 días
• MGIT (BACTEC):
• Diagnóstico de TB y de sensibilidad a medicamentos de 1 línea: HRES + Z
• Resultado entre 4 a 12 día desde el cultivo positivo
• Indicada: detección de TB pulmonar y extra-pulmonar a partir de muestras
pulmonares y extra-pulmonares: TB infantil, trabajadores de salud, VIH+,
comorbilidades (diabetes, cáncer, IRC), TB SNC y otras extra-pulmonares.

13. ESNPCT
Prueba rápida molecular de sondas de
ADN (Genotype)
• Directa en muestras de esputo e indirecta en cultivos
positivos
• Identifica complejo MTB y detecta mutaciones para
rifampicina e isoniacida
• Resultados en 72 horas
• Se realiza en el INS y LRR e intermedios
• Indicaciones: Detección directa o indirecta de resistencia a
H y R e identificación del complejo MTB en:
• Pacientes con TBP FP
• Pacientes con TB FN o extrapulmonar con cultivo positivo
• Antes o durante el tratamiento
• No se debe usar para monitorear respuesta al tratamiento
• La prueba para medicamentos de segunda línea para
identificar XDR en: MDR multitratados, fracasos y contactos
XDR

14. ESNPCT
Pruebas de sensibilidad
convencionales
• Método de proporciones en agar en placa 1 y 2
línea:
• En el INS
• Indicaciones: i) paciente con PS rápida o 1 línea
con resistencia a H, R o ambas, antes o durante
tratamiento, ii) paciente con TB resistente con
inadecuada evolución clínica
• Método de proporciones en medio LJ 1 línea
• En LRR
• Indicaciones: cultivos de muestras extra-
pulmonares y TB pulmonar frotis negativo cultivo
positivo, donde NO se disponga MODS o Genotype

15. ESNPCT
Procedimiento para la detección de TB
resistente por pruebas rápidas
Toda persona con TB pulmonar debe ser evaluado por PS
rápida para detectar resistencia a H y R ANTES de INICIAR
TRATAMIENTO
1. TBp FP debe hacerse prueba molecular o MODS
2. TBp FN debe hacerse MODS
3. De no acceder a MODS o prueba molecular debe
hacerse cultivo y PS convencional
4. Toda persona con PS rápida resistente a H o R debe
tener un resultado de PS convencional1 y 2 línea
5. Resultado de prueba molecular en 3 días de recibida la
muestra por NETLAB
6. Los laboratorios deben garantizar el registro en NETLAB
7. No hacer PS rápida en casos confirmados de TB-MDR

16. ESNPCT
Administración de resultados por
NETLAB - INS
• La administración de cultivos, identificación y
tipificación de micobacterias se hace pro NETLAB
• El acceso al NETLAB será proporcionado por el
INS en coordinación con la ESNPCT
• Los laboratorios regionales, intermedios y locales
deberán asegurar la entrega de los resultados en
las 24 horas a la ESNPCT, luego ser emitido por
NETLAB.
• Los jefes de los EESS son responsables de
asegurar que los resultados del NETLAB sean
evaluados por los médicos tratantes.