Universidad Católica de la Santísima Concepción 
Facultad de Ciencias 
Análisis Instrumental / Laboratorio 
INFORME Nº 1 
Cromatografía Liquida de Alta 
Resolución (HPLC). Condiciones optimas 
para el análisis de una muestra. 
Nombre : Jonathan Troncoso 
Profesor : Irene Concha 
Fecha : 26 de mayo 2010
Resumen 
En la práctica de laboratorio se determino las condiciones óptimas del equipo 
HPLC para el análisis de dos antibióticos. Para ello en primera instancia se determino cual 
será nuestra fase estacionaria adecuada y cual nuestra fase móvil, esta ultima debemos 
tener en consideración que sea compatible con la fase estacionaria, pero a su vez que 
disuelva los componentes a analizar y proporcione una buena separación de nuestra 
muestra. Con esto finalizado se comenzó generar diversas condiciones de trabajo hasta 
encontrar la optima para el análisis de una muestra que contenía cefalexina y 
fenilglicinametilester. 
Del practico se determino que las condiciones optimas de trabajo para estos 
antibióticos fue a una longitud de onda de 220 nm, un flujo de 0,5, entro otras. También se 
calculo la resolución de esta condición siendo el valor de este 2,00. 
Introducción 
La cromatografía agrupa un conjunto importante y diverso de métodos, que 
permite a los científicos separar componentes estrechamente relacionados en mezclas 
complejas (1). En todas las separaciones cromatográficas, la muestra se desplaza con 
una fase móvil, que puede ser un gas, un líquido o un fluido supercrítico. Esta fase móvil 
se hace pasar a través de una fase estacionaria con la que es inmiscible, y que está fijada 
a una columna o una superficie. Las dos fases se eligen de tal forma, que los 
componentes de la muestra se distribuyen de modo distinto entre la fase móvil y la fase 
estacionaria. Aquellos componentes que son fuertemente retenidos por la fase 
estacionaria se mueven lentamente con el flujo de la fase móvil (1). 
Los métodos cromatograficos se pueden clasificar de dos modos distintos. El 
primero de ellos se basa en la forma en que las fases estacionaria y móvil se ponen en 
contacto. Es por esto que tenemos la cromatografía en columna y en plano. 
La cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC) es la técnica analítica de 
separación más ampliamente utilizada principalmente por la sensibilidad que este tipo de 
cromatografía posee (2). 
Esta técnica es usada para separar los componentes utilizando una variedad de 
interacciones entre nuestro análito y la columna cromatográfica. Básicamente es un
sistema compuesto de un reservorio de fase móvil, bomba, inyector, columna de 
separación y detector. El análito se pasa a través de una columna de la fase estacionaria 
bombeando la fase móvil liquida con alta presión. La muestra se introduce en pequeños 
volúmenes a la corriente de la fase móvil y allí se retarda por medio de interacciones 
químicas con la fase estacionaria mientras atraviesa la columna (3). 
El retardo es conocido como tiempo de retención, y este es único para cada 
análito. Depende de la naturaleza del análito, de la fase estacionaria y de la composición 
de la fase móvil. 
Los solutos más comunes usados en la fase móvil son combinaciones de agua 
purificada con líquidos orgánicos, los más comunes son Metanol y Acetonitrilo, también 
suelen usarse sales y buffers para contribuir a la separación de componentes (4). 
Metodología 
Para poder seleccionar las condiciones optimas de trabajo de un HPLC y realizar 
de mejor forma el análisis de dos antibióticos, se comenzó eligiendo en primer lugar la 
fase estacionaria que se utilizara en el equipo como también la selección de una fase 
móvil adecuada que cumpla con ciertas características, estas características son que 
debe ser compatible con nuestra fase estacionaria, como también una fase móvil que 
disuelva los componentes a analizar y produzca una buena separación de estos. 
Para efecto de nuestra actividad se utiliza una fase estacionaria de y una fase 
móvil que corresponde a una mezcla de CH3OH y KH2PO4. 
Las condiciones de la inyección inicial de trabajando fue utilizando la fase móvil 
con una proporción de 50% de CH3OH y 50% de KH2PO4, la detección se realizo a una 
longitud de onda de 210 nm, el flujo de la fase móvil fue de 0,2, el volumen de la muestra 
inyectado fue de 10 μL y en esta ocasión no se aplico gradiente. Con estas condiciones 
se observo el resultado del cromatógrama y es desde ese punto que comenzamos a 
variar las condiciones de trabajo hasta encontrar las optimas, todo esto determinado a 
partir de nuestro cromatógrama obtenido al finalizar la cromatografía. 
El equipo con el cual se trabajo fue un cromatógrafo de líquidos de alta resolución 
de marca Agilen, modelo 1110 series.
Resultados 
Datos del equipo utilizado: 
· Cromatógrafo liquido de alta resolución, marca Agilent, modelo Series 1100. 
· Detector de diodos y de longitud de onda múltiple, ultravioleta. REM (vis-uv) 
· Columna Performance RP-18C, diámetro 4,6 mm. Largo 100 mm. 
· Bomba cuaternaria, Agilent serie 1100. Desgacificador de vacío, detectores de 
diodos y de longitud de onda múltiple. 
· Inyector tipo automático. 
Cromatógrama 
Cromatógrama obtenidos en la práctica con sus respectivas condiciones. 
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 min 
1) Condiciones de trabajo: 
λ = 210 nm 
Flujo de fase móvil = 0,2 
S/Gradiente 
Fase Móvil = 50% CH3OH y 50% KH2PO4. 
Volumen muestra inyectada = 10 μL. 
mAU 
800 
700 
600 
500 
400 
300 
200 
100 
0 
DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000024.D)
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 min 
2) Condiciones de trabajo: 
λ = 210 nm 
Flujo de fase móvil = 0,4 
S/Gradiente 
Fase Móvil = 50% CH3OH y 50% KH2PO4. 
Volumen muestra inyectada = 10 μL. 
3) Condiciones de trabajo: 
mAU 
600 
500 
400 
300 
200 
100 
0 
DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000025.D) 
0.075 
0 1 2 3 4 5 6 min 
mAU 
1000 
800 
600 
400 
200 
0 
DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000026.D)
λ = 210 nm 
Flujo de fase móvil = 0,4 
S/Gradiente 
Fase Móvil = 30% CH3OH y 70% KH2PO4. 
Volumen muestra inyectada = 10 μL. 
0 2 4 6 8 10 12 min 
4) Condiciones de trabajo: 
λ = 210 nm 
Flujo de fase móvil = 0,4 
S/Gradiente 
Fase Móvil = 20% CH3OH y 80% KH2PO4. 
Volumen muestra inyectada = 10 μL. 
mAU 
500 
400 
300 
200 
100 
0 
DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000027.D)
0 2 4 6 8 10 12 14 min 
5) Condiciones de trabajo: 
λ = 210 nm 
Flujo de fase móvil = 0,4 
C/Gradiente 
Fase Móvil = a los 3 min 40% CH3OH y 60% KH2PO4 a los 7 min 10% CH3OH y 
90% KH2PO4. Estas variaciones significa que se aplico gradiente. 
Volumen muestra inyectada = 10 μL. 
mAU 
300 
250 
200 
150 
100 
50 
0 
DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000028.D) 
0 2 4 6 8 10 12 min 
mAU 
500 
400 
300 
200 
100 
0 
DAD1 A, Sig=220,10 Ref=off (AFE000029.D)
6) Condiciones de trabajo: 
λ = 210 nm 
Flujo de fase móvil = 0,5 
C/Gradiente 
Fase Móvil = entre 1 min y 3 min 5% CH3OH y 95% KH2PO4, entre los 3 min y 7 
min 40% CH3OH y 60% KH2PO4 por ultimo entre los 7 min y 10 min 5% CH3OH y 
95% KH2PO4. Estas variaciones significan que se aplico gradiente. 
Volumen muestra inyectada = 20 μL. 
Según la comparación de los 6 Cromatógramas podemos determinar que el 
caso numero 6 posee las condiciones optimas de trabajo para la cuantificación de 
cefalexina y fenilglicinametilester. 
Datos experimentales: 
· tr cefalexina = 9:20 min 
· tr fenilglicinametilester = 11:40 min 
· W cefalexina = 1:20 min 
· W fenilglicinametilester = 1:00 min 
· Largo de la columna L= 10 cm 
Formulas: 
· N = 16 (tr/W)2
· Rs = 2(trb – tra)/ Wa + Wb 
· N= L/H 
Cálculos: 
N cefalexina = 16(9:20 min/ 1:20 min) 2 = 940 
N fenilglicinametilester = 16(11:40/1:00 min) 2 = 2079,4 
Nx= 1510 
H = L/Nx 
H = 10 cm/ 1510 
H = 6,62 * 10-3 cm 
Rs = 2 *(700s – 560s)/ 80s + 60s 
Rs = 2 ,00 
Discusión 
Los Cromatógramas obtenidos no entregan diferentes tiempos de retención como 
también resoluciones de los peak de ambos antibióticos. Es por esto que del trabajo 
podemos concluir que la prueba de condiciones numero seis nos da un buen resultado
puesto que no existe superposición de los peak, así como también los tiempos de 
retención de los análitos no son exageradamente largos. 
En presencia de las condiciones de trabajo de la prueba numero uno podemos 
observar que la cefalexina no entrega un muy buen peak no ocurriendo lo mismo con la 
fenilglicinametilester en donde el peak observado no es más bien grueso y no agudo 
como el primero, este fenómeno puede provocar posibles errores al determinar la altura 
del peak y así no cuantificar de buena manera el dato que se nos entrega. En las 
condiciones de trabajo de la segunda prueba observamos una superposición de los 
análitos por lo cual podemos determinar que la resolución que entregan estas condiciones 
no es el más adecuado por lo cual se descarta. En la cuarta prueba podemos observar 
que solo se observo un peak debido a que el tiempo de retención de nuestro segundo 
análito es muy extenso por ello no es observado en la grafica, estas condiciones también 
se descartan debido a que hace que nuestro análisis cromatografico sea muy largo así 
pasando a llevar uno de los principios de esta metodología la cual debe ser confiable los 
resultados y también rápidos. Por último para las condiciones número cinco y seis, las 
cuales en comparación a las anteriores son las mejor evaluadas, podemos determinar que 
poseen una muy buena separación de nuestros análitos pero para el numero cinco los 
tiempo de retención son muy diferente lo cual que al determinar su resolución esta podría 
no ser muy buena. Con respecto a las condiciones de la prueba numero 6 podemos 
determinar que el análisis es más corto que la del análisis número cinco y también los 
tiempos de retención de uno y otro peak son relativamente cercanos, lo cual no hace 
pensar que esta condición es la optima para este análisis, es por esto que se determino 
tanto el numero de platos teóricos dando un valor de y el valor de la resolución dando 
como resultado un valor de 2,00. 
Conclusión 
· Se comprendió la utilización de un HPLC. 
· Se busco satisfactoriamente las condiciones óptimas de trabajo para poder 
analizar de mejor manera la mezcla de antibióticos.
· Se determino que las condiciones de trabajo optimas fueron las propuestas en la 
prueba número seis. 
· Se determino la resolución de esta última prueba dando un valor de. 
· Los Cromatógramas obtenidos fueron muy diversos por lo cual podemos decir que 
ante una futura complicación podemos saber de antemano que valor variar para 
obtener un mejor resultado, a modo de ejemplo, para el caso número cuatro que 
se obtiene un tiempo de retención muy alto se puede variar el flujo de la fase móvil 
y así disminuir este tiempo. 
· El manejo del equipo no complico en demasía. 
· La práctica del laboratorio resulto de buena manera y se cumplió el objetivo 
principal de nuestra actividad.
Bibliografía 
1- SKoog D. Holler F. & Nieman T. “Principios de Análisis Instrumental”. Quinta 
edición. Pag. 785-791. Editorial Mc Graw Hill. España (2001). 
2- Hernández L. & Gonzales C. “Introducción al Análisis instrumental”. Pag 407-412. 
Primera edición. Editorial Ariel S.A. España (2002). 
3- SKoog D. West R. & Holler F. “Fundamentos de Química Analítica”. Cuarte 
Edición. Pag 718-730. Editorial Reverté S.A. Barcelona, España (1997). 
4- http://www.profeonline.com/laboratorioquimico/mod_12/docs/cromatografia_funda 
mentos_y_aplicaciones.pdf

Analisis info 1

  • 1.
    Universidad Católica dela Santísima Concepción Facultad de Ciencias Análisis Instrumental / Laboratorio INFORME Nº 1 Cromatografía Liquida de Alta Resolución (HPLC). Condiciones optimas para el análisis de una muestra. Nombre : Jonathan Troncoso Profesor : Irene Concha Fecha : 26 de mayo 2010
  • 2.
    Resumen En lapráctica de laboratorio se determino las condiciones óptimas del equipo HPLC para el análisis de dos antibióticos. Para ello en primera instancia se determino cual será nuestra fase estacionaria adecuada y cual nuestra fase móvil, esta ultima debemos tener en consideración que sea compatible con la fase estacionaria, pero a su vez que disuelva los componentes a analizar y proporcione una buena separación de nuestra muestra. Con esto finalizado se comenzó generar diversas condiciones de trabajo hasta encontrar la optima para el análisis de una muestra que contenía cefalexina y fenilglicinametilester. Del practico se determino que las condiciones optimas de trabajo para estos antibióticos fue a una longitud de onda de 220 nm, un flujo de 0,5, entro otras. También se calculo la resolución de esta condición siendo el valor de este 2,00. Introducción La cromatografía agrupa un conjunto importante y diverso de métodos, que permite a los científicos separar componentes estrechamente relacionados en mezclas complejas (1). En todas las separaciones cromatográficas, la muestra se desplaza con una fase móvil, que puede ser un gas, un líquido o un fluido supercrítico. Esta fase móvil se hace pasar a través de una fase estacionaria con la que es inmiscible, y que está fijada a una columna o una superficie. Las dos fases se eligen de tal forma, que los componentes de la muestra se distribuyen de modo distinto entre la fase móvil y la fase estacionaria. Aquellos componentes que son fuertemente retenidos por la fase estacionaria se mueven lentamente con el flujo de la fase móvil (1). Los métodos cromatograficos se pueden clasificar de dos modos distintos. El primero de ellos se basa en la forma en que las fases estacionaria y móvil se ponen en contacto. Es por esto que tenemos la cromatografía en columna y en plano. La cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC) es la técnica analítica de separación más ampliamente utilizada principalmente por la sensibilidad que este tipo de cromatografía posee (2). Esta técnica es usada para separar los componentes utilizando una variedad de interacciones entre nuestro análito y la columna cromatográfica. Básicamente es un
  • 3.
    sistema compuesto deun reservorio de fase móvil, bomba, inyector, columna de separación y detector. El análito se pasa a través de una columna de la fase estacionaria bombeando la fase móvil liquida con alta presión. La muestra se introduce en pequeños volúmenes a la corriente de la fase móvil y allí se retarda por medio de interacciones químicas con la fase estacionaria mientras atraviesa la columna (3). El retardo es conocido como tiempo de retención, y este es único para cada análito. Depende de la naturaleza del análito, de la fase estacionaria y de la composición de la fase móvil. Los solutos más comunes usados en la fase móvil son combinaciones de agua purificada con líquidos orgánicos, los más comunes son Metanol y Acetonitrilo, también suelen usarse sales y buffers para contribuir a la separación de componentes (4). Metodología Para poder seleccionar las condiciones optimas de trabajo de un HPLC y realizar de mejor forma el análisis de dos antibióticos, se comenzó eligiendo en primer lugar la fase estacionaria que se utilizara en el equipo como también la selección de una fase móvil adecuada que cumpla con ciertas características, estas características son que debe ser compatible con nuestra fase estacionaria, como también una fase móvil que disuelva los componentes a analizar y produzca una buena separación de estos. Para efecto de nuestra actividad se utiliza una fase estacionaria de y una fase móvil que corresponde a una mezcla de CH3OH y KH2PO4. Las condiciones de la inyección inicial de trabajando fue utilizando la fase móvil con una proporción de 50% de CH3OH y 50% de KH2PO4, la detección se realizo a una longitud de onda de 210 nm, el flujo de la fase móvil fue de 0,2, el volumen de la muestra inyectado fue de 10 μL y en esta ocasión no se aplico gradiente. Con estas condiciones se observo el resultado del cromatógrama y es desde ese punto que comenzamos a variar las condiciones de trabajo hasta encontrar las optimas, todo esto determinado a partir de nuestro cromatógrama obtenido al finalizar la cromatografía. El equipo con el cual se trabajo fue un cromatógrafo de líquidos de alta resolución de marca Agilen, modelo 1110 series.
  • 4.
    Resultados Datos delequipo utilizado: · Cromatógrafo liquido de alta resolución, marca Agilent, modelo Series 1100. · Detector de diodos y de longitud de onda múltiple, ultravioleta. REM (vis-uv) · Columna Performance RP-18C, diámetro 4,6 mm. Largo 100 mm. · Bomba cuaternaria, Agilent serie 1100. Desgacificador de vacío, detectores de diodos y de longitud de onda múltiple. · Inyector tipo automático. Cromatógrama Cromatógrama obtenidos en la práctica con sus respectivas condiciones. 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 min 1) Condiciones de trabajo: λ = 210 nm Flujo de fase móvil = 0,2 S/Gradiente Fase Móvil = 50% CH3OH y 50% KH2PO4. Volumen muestra inyectada = 10 μL. mAU 800 700 600 500 400 300 200 100 0 DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000024.D)
  • 5.
    0 1 23 4 5 6 7 8 9 min 2) Condiciones de trabajo: λ = 210 nm Flujo de fase móvil = 0,4 S/Gradiente Fase Móvil = 50% CH3OH y 50% KH2PO4. Volumen muestra inyectada = 10 μL. 3) Condiciones de trabajo: mAU 600 500 400 300 200 100 0 DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000025.D) 0.075 0 1 2 3 4 5 6 min mAU 1000 800 600 400 200 0 DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000026.D)
  • 6.
    λ = 210nm Flujo de fase móvil = 0,4 S/Gradiente Fase Móvil = 30% CH3OH y 70% KH2PO4. Volumen muestra inyectada = 10 μL. 0 2 4 6 8 10 12 min 4) Condiciones de trabajo: λ = 210 nm Flujo de fase móvil = 0,4 S/Gradiente Fase Móvil = 20% CH3OH y 80% KH2PO4. Volumen muestra inyectada = 10 μL. mAU 500 400 300 200 100 0 DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000027.D)
  • 7.
    0 2 46 8 10 12 14 min 5) Condiciones de trabajo: λ = 210 nm Flujo de fase móvil = 0,4 C/Gradiente Fase Móvil = a los 3 min 40% CH3OH y 60% KH2PO4 a los 7 min 10% CH3OH y 90% KH2PO4. Estas variaciones significa que se aplico gradiente. Volumen muestra inyectada = 10 μL. mAU 300 250 200 150 100 50 0 DAD1 A, Sig=210,10 Ref=off (AFE000028.D) 0 2 4 6 8 10 12 min mAU 500 400 300 200 100 0 DAD1 A, Sig=220,10 Ref=off (AFE000029.D)
  • 8.
    6) Condiciones detrabajo: λ = 210 nm Flujo de fase móvil = 0,5 C/Gradiente Fase Móvil = entre 1 min y 3 min 5% CH3OH y 95% KH2PO4, entre los 3 min y 7 min 40% CH3OH y 60% KH2PO4 por ultimo entre los 7 min y 10 min 5% CH3OH y 95% KH2PO4. Estas variaciones significan que se aplico gradiente. Volumen muestra inyectada = 20 μL. Según la comparación de los 6 Cromatógramas podemos determinar que el caso numero 6 posee las condiciones optimas de trabajo para la cuantificación de cefalexina y fenilglicinametilester. Datos experimentales: · tr cefalexina = 9:20 min · tr fenilglicinametilester = 11:40 min · W cefalexina = 1:20 min · W fenilglicinametilester = 1:00 min · Largo de la columna L= 10 cm Formulas: · N = 16 (tr/W)2
  • 9.
    · Rs =2(trb – tra)/ Wa + Wb · N= L/H Cálculos: N cefalexina = 16(9:20 min/ 1:20 min) 2 = 940 N fenilglicinametilester = 16(11:40/1:00 min) 2 = 2079,4 Nx= 1510 H = L/Nx H = 10 cm/ 1510 H = 6,62 * 10-3 cm Rs = 2 *(700s – 560s)/ 80s + 60s Rs = 2 ,00 Discusión Los Cromatógramas obtenidos no entregan diferentes tiempos de retención como también resoluciones de los peak de ambos antibióticos. Es por esto que del trabajo podemos concluir que la prueba de condiciones numero seis nos da un buen resultado
  • 10.
    puesto que noexiste superposición de los peak, así como también los tiempos de retención de los análitos no son exageradamente largos. En presencia de las condiciones de trabajo de la prueba numero uno podemos observar que la cefalexina no entrega un muy buen peak no ocurriendo lo mismo con la fenilglicinametilester en donde el peak observado no es más bien grueso y no agudo como el primero, este fenómeno puede provocar posibles errores al determinar la altura del peak y así no cuantificar de buena manera el dato que se nos entrega. En las condiciones de trabajo de la segunda prueba observamos una superposición de los análitos por lo cual podemos determinar que la resolución que entregan estas condiciones no es el más adecuado por lo cual se descarta. En la cuarta prueba podemos observar que solo se observo un peak debido a que el tiempo de retención de nuestro segundo análito es muy extenso por ello no es observado en la grafica, estas condiciones también se descartan debido a que hace que nuestro análisis cromatografico sea muy largo así pasando a llevar uno de los principios de esta metodología la cual debe ser confiable los resultados y también rápidos. Por último para las condiciones número cinco y seis, las cuales en comparación a las anteriores son las mejor evaluadas, podemos determinar que poseen una muy buena separación de nuestros análitos pero para el numero cinco los tiempo de retención son muy diferente lo cual que al determinar su resolución esta podría no ser muy buena. Con respecto a las condiciones de la prueba numero 6 podemos determinar que el análisis es más corto que la del análisis número cinco y también los tiempos de retención de uno y otro peak son relativamente cercanos, lo cual no hace pensar que esta condición es la optima para este análisis, es por esto que se determino tanto el numero de platos teóricos dando un valor de y el valor de la resolución dando como resultado un valor de 2,00. Conclusión · Se comprendió la utilización de un HPLC. · Se busco satisfactoriamente las condiciones óptimas de trabajo para poder analizar de mejor manera la mezcla de antibióticos.
  • 11.
    · Se determinoque las condiciones de trabajo optimas fueron las propuestas en la prueba número seis. · Se determino la resolución de esta última prueba dando un valor de. · Los Cromatógramas obtenidos fueron muy diversos por lo cual podemos decir que ante una futura complicación podemos saber de antemano que valor variar para obtener un mejor resultado, a modo de ejemplo, para el caso número cuatro que se obtiene un tiempo de retención muy alto se puede variar el flujo de la fase móvil y así disminuir este tiempo. · El manejo del equipo no complico en demasía. · La práctica del laboratorio resulto de buena manera y se cumplió el objetivo principal de nuestra actividad.
  • 12.
    Bibliografía 1- SKoogD. Holler F. & Nieman T. “Principios de Análisis Instrumental”. Quinta edición. Pag. 785-791. Editorial Mc Graw Hill. España (2001). 2- Hernández L. & Gonzales C. “Introducción al Análisis instrumental”. Pag 407-412. Primera edición. Editorial Ariel S.A. España (2002). 3- SKoog D. West R. & Holler F. “Fundamentos de Química Analítica”. Cuarte Edición. Pag 718-730. Editorial Reverté S.A. Barcelona, España (1997). 4- http://www.profeonline.com/laboratorioquimico/mod_12/docs/cromatografia_funda mentos_y_aplicaciones.pdf