El documento proporciona información sobre Chlamydophila abortus, la bacteria que causa el aborto enzoótico ovino. Algunos puntos clave son: C. abortus es una bacteria intracelular obligada que infecta ovejas, cabras y otros pequeños rumiantes y puede causar abortos, disminución de la fertilidad y neumonía; se transmite entre animales a través del contacto directo o indirecto con fluidos de abortos o partos; el diagnóstico puede realizarse mediante pruebas directas como tinción, cultivo o PCR e indirectas

1. Amairani Danae Suarez Castillo.
AQV1.
Chlamydophila.

2. Generalidades.
Familia: Chlamydiaceae*.
Chlamydia suis (cerdos). Chlamydophila abortus.
C. muridarum (ratones y hámsters). Cp. felis (gatos).
C. trachomatis (humanos). Cp. psittaci (aves).
Cp. caviae (cobayos).
Cp. pecorum (ovinos y bovinos).
Cp. pneumoniae (humanos).
*Los análisis de secuencia de los
genes rRNA 16S y 23S, y ompA.
(Saldías et al., 2014.)

3. Factores de virulencia.
LPS: Lipopolisacárido
MOMP: Principal proteína de
membrana externa.
COMC: complejo proteico de
membrana externa rico en
residuos de cisteína.
• OmcA y OmcB
PMPs: proteínas polimórficas
de membrana.
Proteínas Hsp: Hsp60
Sistema de secreción
tipo III.
*Pared celular: carecen del peptidoglucano.

4. Chlamydophila abortus.
• Bacteria Gram negativa.
• Bacteria intracelular obligada.
• Posee una envoltura con 2
membranas.
• Contiene cuatro proteínas específicas
en su membrana externa, codificadas
por los genes POMP 90A / B y 91A / B.
• Carece de un operón de biosíntesis de
triptófano.
• Zoonótica y enzoótica.

5. CR se reorganiza
nuevamente en el CE.
Ciclo de vida.
Cuerpo
elemental.
Infecta a
una célula
susceptible.
CE se
transforman en
CR.
Se multiplican por
medio de fisión binaria
Lisis de la célula
huésped y pasará a
invadir células
vecinas.
Horas.
0.
6 - 10.
10 - 18.
18 - 24.
24 - 48.
48 - 72.
(Murillo et al., n.d.)

6. ABOUT THE
PROJECT
Resumen.
(Murillo et al., n.d.)

7. El aborto
enzoótico ovino
(AEO).
Aborto enzoótico
de los pequeños
rumiantes .

8. Importancia.
● Esta enfermedad representa la causa más importante de pérdidas de
corderos en diversos países de Europa, Norteamérica y África, lo cual
produce un fuerte impacto económico en las áreas afectadas.
● Puede afectar con una enfermedad febril a la mujer embarazada y
pérdida del feto.

9. Especies susceptibles.
• Ovinos, caprinos y bovinos.
• Afecta mas a los caprinos.
• Borregas o cabras de mas de 2 años
de edad.
• Ovejas y cabras preñadas.
(Saldías et al., 2014.)
Hospederos.

10. • Vía oral, aerógena, venérea, orofecal y por la
leche.
• Contacto directo e indirecto.
• Placenta, fetos abortados, envolturas fetales,
fluidos vaginales desde dos semanas antes y dos
semana después del parto.
• Orina, leche y heces eliminan agente en menor
cantidad durante varios días post-parto.
• Directa de la comida con secreción conjuntival o
genital, siendo esta la ruta más importante.
• Morbi- mortalidad: 5 – 10%.
(Saldías et al., 2014.)
Transmisión.

11. Heces, orina, etc.
Transmisión vertical del feto vía
transplacentaria.
Transmisión venérea.
Bacteriemia secundaria pasa a
aparato reprod. femenino.
Órganos linfáticos puede estar
de forma LATENTE.
Se establece en las tonsilas y
se disemina por vía hemo
linfática.

13. No presentan signos específicos.
• Provocar abortos dos a tres semanas previas a
la fecha de parto y, junto con la pérdida de las
crías, provoca placentitis y metritis.
• Nacidos débiles que no sobreviven más de 48
horas.
• Tos persistente.
• Artritis.
• Queratoconjuntivitis.
• Fiebre antes de que el aborto ocurra.
• Flujo vaginal marrón rojizo durante varios días
después del aborto o del parto.
En los machos
• Orquitis, epididimitis y vesiculitis seminal,
disminución de la fertilidad o esterilidad.
Signos.

14. Fetos están cubiertos de material amarillento
o rojizo, ligera ascitis y a veces
hepatomegalia o esplenomegalia.
Placenta procedente de un aborto por
Chlamydophila abortus en una
exploración de ovejas.
Necropsia.

15. Vasculitis trombótica y necrosis tisular con
cotiledones placentarios necróticos y
hemorrágicos
Pulmón de un cordero afectado
por bronconeumonia clamidial.
• Placenta: edematoso y sanguinolento, conteniendo placas de exudado opaco,
granular y hemorrágico.
• Los cotiledones muestran un color rojo púrpura o gris y el tejido peri
placentario se nota de color café por la presencia de hemoglobina proveniente
de la hemolisis eritrocítica.

16. Tinción inmunocitoquímica de una infección clamidial en placenta.

17. Figura. Representación esquemática de los métodos directos e indirectos utilizados en el diagnóstico laboratorial del AEO en función
de las muestras remitidas al laboratorio.
Diagnóstico.

18. Directas:
Tinción de Stamp.
Detección de C. abortus mediante una tinción de Stamp (izquierda), una tinción de Giemsa (centro) o una
inmunofluorescencia (derecha)
Diagnóstico.

19. • Inmunohistoquimica.
Es indispensable para mostrar la asociación entre el agente clamidial y las lesiones
anatomopatológicas de los tejidos. Los anticuerpos específicos de especie o género en
combinación con estreptavidina-biotina se usan para detectar el antígeno clamidial dentro de las
lesiones histológicas de la placenta u órganos internos (principalmente pulmón e hígado) de
fetos abortados.
Diagnóstico directo de AEO. Detección de C. abortus mediante: C. Inmunohistoquímica
en un corte histológico D. Inmunofluorescencia.

20. Aislamiento del microorganismo en medios biológicos.
• Huevos embrionados.
Se inoculan en el saco vitelino de embriones de
6 a 8 días, que luego se incubarán a 37 °C. Los
embriones infectados mueren entre 4 y 13 días
después de la inoculación.
• Cultivo celular.
Las líneas celulares sensibles más usadas son
McCoy, Vero, HeLa 229 o los fibroblastos L.
Uso de sustancias como el dietilamino etil
dextrano (DEAE dextrano) y la cicloheximida.
Inclusiones clamidiales perinucleares (flechas)
en células McCoy cuando se infectan con la
cepa aislada GN-6. × 400, Giemsa.
(Li et al., 2015).

21. PCR EN TIEMPO REAL.
Se dirigen al ARN ribosomal16S-23S o a los genes pmp y se pueden combinar con análisis del polimorfismo en la
longitud de los fragmentos de restricción (RFLP) para discriminar entre secuencias de ADN amplificadas de C.
abortus, C. psittaci y C. pecorum.
PCR específico para la detección de Chlamydophila
abortus a partir de tejidos de un aborto ovino.
gen POMP 90-91-B
Tabla. PCR en tiempo real para el cribado y especificaciones.
(OIE., 2019).

22. Indirecto: Pruebas serológicas.
• ELISA.
ELISA indirecto detecta anticuerpos contra POMP 90
(proteína de membrana externa polimórfica).
• Fijación del complemento.
Realizar de preferencia 3 a 6 semanas después de
haber ocurrido el aborto ó el parto, cuando la respuesta
de los anticuerpos se encuentran a su máximo nivel.
Es incapaz de diferenciar entre C. abortus y C. pecorum.
Ya no es recomendada por la OIE.
Diagnóstico.

23. Chlamydophila
pecorum.
Brucelosis caprina
(Brucella melitensis).
Fiebre Q. (Coxiella
burnetii).
Listeriosis. Leptospirosis.
Diagnóstico diferencial.

24. Manejo.
Notificación mensual obligatoria. (OIE, 2021).
Evitar introducir animales infectados en rebaños libres de la
enfermedad.
Si ya esta el patógeno aislar inmediatamente a las ovejas
que aborten, retirar restos del aborto, limpiar y desinfectar la
paridera para limitar la diseminación.
Tratamiento con antibióticos.
Tetraciclinas en rebaños de ovejas gestantes
infectadas para reducir la incidencia de abortos y
muertes.
SOLO PARA CASOS EXCEPCIONALES.
Prevención y control.

25. Vacunación.
Dos tipos de vacunas.
1. Las vacunas inactivadas fueron las primeras en utilizarse poco después del
descubrimiento de la enfermedad, en la década de los 50.
2. La vacuna atenuada: La mas utilizada.
Administrar por vía intramuscular o por vía subcutánea al menos 4 semanas antes del cruce
como medio para prevenir abortos.
Las ovejas deberían vacunarse durante el primer
año tras la infección si se diagnostica por primera
vez en un rebaño.
Dicha vacunación debería repetirse después de dos
años o antes en rebaños infectados severamente.
También deberían vacunarse los animales que se
incorporan al rebaño por primera vez.
Prevención y control.

26. • El AEO era considerado una enfermedad exótica en México, hasta mayo de
2016, que paso a ser una enfermedad de notificación obligatoria.

27. B
i
b
l
i
o
g
r
a
f
í
a
● Thomson NR, Yeats C, Bell k. (2005) The Chlamydophila abortus genome sequence reveals an array
of variable proteins that contribute to interspecies variation. Genome research 2005;15;5;629-40.
● ND. (2015). Chlamydophila abortus - Diagnóstico molecular (PCR). - IVAMI. Ivami.com.
https://www.ivami.com/es/microbiologia-veterinaria-molecular/408-chlamydophila-abortus.
● Saldías, M., Lecocq, C., Cl, C., Quezada, M., Ávila, C., & Segovia, M. (n.d.). Aborto enzoótico ovino
(AEO) en Chile Implementación de técnicas de laboratorio.
http://www.sag.cl/sites/default/files/aborto_enzootico_ovino_saldias_et_al-web2016.pdf
● IICAB. (2010).Clamidiosis zoonótica. Retrieved April 3, 2021, from
https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/chlamydiosis-es.pdf
● OIE - Código Sanitario para los Animales Terrestres. (2019). Infección Por Chlamydia Abortus
(Aborto Enzoótico De Las Ovejas, Clamidiosis Ovina). Capitulo 14.4.
● Manual terrestre OIE. (2018). Aborto enzoótico de las ovejas. Capitulo 3.7.5.
● Díaz, M., Díaz Aparicio, Efrén, Herrera L. (2015). Aislamiento de Chlamydia abortus en rebaños
caprinos lecheros y su relación con casos de aborto en Guanajuato, México. Veterinaria México OA,
2(1), 01-11. https://doi.org/.
● Li, Z., Cao, X., Fu, B., Chao, Y., Cai, J., & Zhou, J. (2015). Identification and Characterization of
Chlamydia abortus Isolates from Yaks in Qinghai, China. BioMed Research International, 2015, 1–6.
https://doi.org/10.1155/2015/658519