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O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain.


    EXTRACCION DE ADN NUCLEAR A PARTIR DE TEJIDO DE PIE Y MANTO DE
Cittarium pica POR PRECIPITACION CON CLORURO DE SODIO Y DETERMINACION
  DE CALIDAD MEDIANTE ANALISIS ELECTROFORETICO DE TIPO HORIZONTAL

 NUCLEAR DNA EXTRACTION FROM FOOT AND MANTLE TISSUE OF Cittarium pica
 BY PRECIPITATION WITH SODIUM CHLORIDE AND QUALITY DETERMINATION BY
                ELECTROPHORETIC ANALYSIS HORIZONTAL

          Aguilar-Ospino Oscar1, Polo-Jiménez Deimer2, Ropain-Hernández Eber3.
      1,2,3
         Universidad del Magdalena, Facultad de Ciencias Básicas, Programa de Biología.
       aguilarospinooscar@hotmail.com, dimrpolo@gmail.com, eberiwel80@hotmail.com




                                         RESUMEN

El objetivo de este análisis de laboratorio fue realizar una extracción de ADN de tejidos del
manto y del pie de la especie Cittarium pica y verificar la calidad del mismo mediante
electroforesis horizontal en gel de agarosa 0.8%, mediante el método de sal común
(cloruro de sodio). El procedimiento consistió en tomar 2 muestras 1,5 mg de tejido del pie
y del manto respectivamente y se rotularon (P1, P2, M1, M2) aplicar el protocolo de sal
común para extracción, suministrado por el docente. La calidad del ADN se verificó
mediante gel de agarosa al 0.8%, en cámara de electroforesis horizontal a 80V durante 30
minutos sumergida en tampón TAE 1X, con tinción de bromuro de etidio. El resultado
muestra que solo la muestra de manto M1 fue la única con suficiente material genético
como para correr en el gel. Se concluye que debió haber mayor tiempo de incubación
posterior a la añadidura de NaCl [5M].



PALABRAS CLAVE: Método de sal común, Electroforesis horizontal, Gel de agarosa
0.8%, Extracción de ADN, Cittarium pica.



                                        ABSTRACT

The objective of this lab was to conduct a DNA extraction from the mantle tissue of the foot
and the species Cittarium pica and verify its quality by horizontal electrophoresis on 0.8%
agarose gel, by the method of common salt (chloride sodium). The procedure was to take
two 1.5 mg samples of tissue of the foot and mantle respectively and labeled (P1, P2, M1,
M2) to implement the protocol for extracting salt, provided by the teacher. DNA quality was
verified by agarose gel 0.8%, in horizontal electrophoresis chamber 80V immersed for 30
minutes in 1X TAE buffer with ethidium bromide staining. The result shows that only the
O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain.


mantle sample M1 was the only one with enough genetic material to run on the gel. We
conclude that it must have greater incubation time after the addition of NaCl [5M].



KEY WORDS: Salt method, Electrophoresis horizontal 0.8% agarose gel, DNA extraction,
Cittarium pica.

            INTRODUCCIÓN                           mediante   el   uso       de     alcoholes.
                                                   (Cummings, 1994)
El análisis de la molécula de ADN
                                                   Despues de la extracción de ADN lo
constituye una herramienta muy valiosa
                                                   común es verificar su calidad y cantidad.
que ha permitido delinear estrategias
                                                   El proceso mas sencillo de realizar se
aplicadas a la investigación básica y al
                                                   denomina electroforesis. (Rotureau et al,
diagnostico de innumerables entidades
                                                   2006). La electroforesis de ácidos
de origen genético, basando esto en el
                                                   nucleicos es el método habitual para
principio de que la molécula es única en
                                                   separar, identificar y purificar moléculas o
cada individuo (excepto en gemelos
                                                   fragmentos de DNA y RNA. En los
monocigoticos) y contiene toda la
                                                   tampones habitualmente utilizados, los
información necesaria para el desarrollo
                                                   ácidos     nucleicos     están     cargados
y función de los organismos. (Falcon et
                                                   negativamente y migran hacia el ánodo.
al, 2007).
                                                   Cada molécula aporta una carga
                                                   negativa (procedente del grupo fosfato),
El ADN puede ser extraído de muchos                por lo que la relación carga/tamaño es
tipos de materiales biológicos y el éxito          prácticamente constante e idéntica para
del análisis molecular depende de su               todas las moléculas, independientemente
adecuado aislamiento en términos de                de su tamaño (un nucleótido tendrá la
cantidad, calidad y pureza; es necesario           misma movilidad que un fragmento de
separarlo del resto de componentes                 doble cadena de 800pb o uno de 5kb).
celulares así como del material no                 (Aljanabi, 1997). Se lleva a cabo en geles
biológico que pueda estar presente.                de agarosa o poliacrilamida. Ambos
(Cummings, 1994). Los protocolos de                soportes son restrictivos para los ácidos
extracción buscan eliminar o diluir                nucleicos, de modo que los diferentes
potentes inhibidores de reacciones de              fragmentos (al tener la misma relación
amplificación que eviten o dificulten              carga/tamaño), migran en función de su
análisis posteriores. (Liu et al, 2004)            tamaño y/o conformación química.
El proceso general de aislamiento                  Los geles de agarosa (en cubetas
involucra tres pasos: primero, la lisis de         horizontales) se utilizan generalmente
las membranas celulares, mediante el               para separar fragmentos grandes de
uso de buffer específicos y altas                  DNA (500pb-10Mb); Utilizando agarosas
temperaturas; segundo, la degradación              de distintas concentraciones (distinto
de las proteínas por incubación con                grado de reticulación) pueden separarse
proteinasa K y/o sales saturadas; tercero,         fragmentos de hasta 50kb aplicando un
la extracción del ADN y su precipitación
O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain.


campo eléctrico constante. La pureza               entrada de polvo. En caso dado de que
de la agarosa y de la solución                     se evapore algo de la solución se puede
tampón (TAE o TBE) puede variar                    completar el volumen con solución
según       la finalidad   del     ensayo.         tampón limpia.(Duina-Posso, 2008)
(Westermeier, 1997). Es             posible
reutilizar una solución de agarosa                 El objetivo de este ejercicio de
para fines de una simple visualización             laboratorio fue realizar una extracción de
de algún producto de PCR. No se debe               ADN de tejidos del manto y del pie de la
reutilizar cuando se va a cuantificar ADN          especie Cittarium pica mediante el
ni a extraer bandas a partir del gel. Para         método de sal común (cloruro de sodio) y
reutilizar la solución de agarosa se               verificar la calidad del mismo mediante
recomienda guardar el gel en un envase             electroforesis horizontal en gel de
con tapa, esto evita la evaporación y la           agarosa 0.8%.



      MATERIALES Y MÉTODOS                         un nuevo tubo previamente esterilizado y
                                                   se le adicionaron 600µl de alcohol etílico
               Extracción                          absoluto frio para precipitación.     Por
El procedimiento consistió en tomar y              inversión se agito alrededor de 30-40
rotular 2 muestras 1,5 mg de tejido del            veces y se incubo durante alrededor de
pie y del manto respectivamente de un              15 minutos a una temperatura de -20°C
individuo     de    la   especie    antes          para luego centrifugarlo a 14.000 rpm
mencionada y fragmentarlos con ayuda               durante 10 minutos con el fin de
                                                   precipitar el ADN.
de un bisturí en un tubo eppendorf de
1.5µl previamente esterilizado. Con el fin
de desnaturalizar componente biológico
diferente al ADN se adicionaron 300µl de                Verificación por electroforesis
solución lisis y 1µl de proteínasa K y se                          horizontal
sometió a incubación a 65°C durante 1
hora. Con la ayuda de un vortex se agito,          La calidad del ADN se verificó mediante
se agregaron 300µl de NaCl [5M] y                  geles de agarosa al 0.8%, en cámara de
nuevamente se agito con el vortex                  electroforesis horizontal a 80V durante
durante 10 segundos.                               30 minutos sumergida en tampón TAE
                                                   1X, con tinción de bromuro de etidio. El
Posterior a este proceso se sometió a las          marcador de corrida usado fue azul de
muestras a centrifugación durante 15               bromofenol. Para la lectura se utilizo un
minutos con el propósito de separar el             transiluminador UVP BioDoc en donde
ADN de las proteínas y otros residuos.             una banda nítida indicaría que la
Esto ocasiona que se formen dos capas              extracción fue positiva.
dentro del tubo, una de las cuales, el
sobrenadante, contiene el material
genético. Se transfirió el sobrenadante a
O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain.




Tabla 1. Materiales de laboratorio y reactivos utilizados durante los procedimientos de
extracción y verificación.

             Extracción de ADN                               Electroforesis horizontal

                  Micropipetas                                       Calculadora
Material fungible (Puntas, gradillas de plástico,       Cámara de electroforesis horizontal y
                tubos de 1.5 ml.)                                    accesorios
                 Pinzas y bisturí                              Micropipetas de 1-10 uL
                    Mechero                                Puntas descartables de 1-10 uL
                     Vortex                                   Lamina de papel parafina
                 Microcentrifuga                              Solución de Agarosa 0,8%
                 Baño de María                              Buffer TAE 1X para la corrida
                  Refrigerador                                     Fuente de Poder
                  Solución lisis                                 Material Biológico
                  Proteinasa K                       Tejido extraído de espécimen cultivado en
               Homogenizadores                        el Laboratorio de Moluscos y Microalgas
                     RNAsa                                de la Universidad del Magdalena.
          Cloruro de sodio (NaCl) [5M]
       Alcohol etílico absoluto y al 75%
                    Buffer TE
       Agua bidestilada y autoclavada
               Papel absorbente


              RESULTADOS                              electroforesis horizontal solo “corrió” la
                                                      N° 1 del manto (M1).
Como se observa en la Figura 1, de las
cuatro   muestras     sometidas      a




Figura 1. Registro fotográfico de una corrida electroforética de muestras de pie y manto de
Cittarium pica para verificación de calidad de ADN. Carriles M1 y M2: Muestras de manto; P1 y P2:
muestras del pie.
O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain.


                                                   con mayor fuerza por unidad de área.
                                                   Sambrook et al (1989) econtraron que un
              DISCUSIÓN                            mayor esfuerzo de fragmentación
                                                   mecánica de tejidos duros ofrece una
                                                   mejor liberación de células al medio y por
Este ejercicio de laboratorio demostró la          lo tanto mejores rendimientos.
efectividad de la extracción de ADN
mediante el protocolo de sal común,                De acuerdo con los resultados de este
desarrollado. Este es un método simple,            ejercicio de laboratorio., se concluyo la
reproducible,      económico     y      no         necesidad de someter a un mayor tiempo
contaminante, fácil de utilizar para la            de incubación a las muestras, posterior a
obtención de material genético a partir de         la adición de NaCl 5M y alcohol etílico,
tejidos de Cittarium pica.                         respectivamente. En este sentido,
                                                   autores como Miesfeld (1999) y CIMMYT
Es de anotar, que los resultados                   (2006) proponen tiempos de incubación
obtenidos con el método de extracción              de 1 hora para obtener mayor ADN en la
por sal común se compararon con los                precipitación.
resultados para los mismos tejidos de la
misma especie pero mediante la                     Teniendo en cuenta los anteriores
metodología de kits comerciales y se               resultados se recomienda aplicar e
                                                   identificar nuevas estrategias para lograr
observo que a partir del manto se
obtienen mejor calidad de ADN y mejores            una extracción eficiente y de mejor
corridas en el proceso de verificación por         calidad a partir de este tipo de muestras;
electroforesis horizontal. (Ver Figura 1).         Tales como mayor esfuerzo de
                                                   fragmentación mecánica a tejidos duros y
Sin embargo, se observa también que la             mayor tiempo de incubación a las
muestra P2 del método de kits                      muestras posterior a la adición de NaCl
comerciales alcanzo a correr en el carril          5M y alcohol etílico. De igual forma, se
del gel de agarosa especificado para               elucida que posiblemente sea mas
esta. Esto indica que haya hecho falta             eficiente ir directamente al manto para
someter a un proceso de destrucción                realizar procesos de extracción en ves
mecánica del tejido por mayor tiempo y             del pie.



         AGRADECIMIENTOS                           apoyo logístico, el suministro de insumos
                                                   y por la cesión de un espacio para la
Agradecimientos al personal de apoyo               realización del presente ejercicio de
del Laboratorio de Genética Molecular de           laboratorio.
la Universidad del Magdalena por el
O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain.


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México, D.F.: CIMMYT.
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Microsatélites para la Estimación de               Spring Harbor, NY, USA, capítulo 6.
Diversidad    Genética  en   Plantas.
Ediciones IVIC.                                    Westermeier, R. 1997. Electroforesis in
                                                   Practice: a Guide to Methods and
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Miesfeld, R. 1999. Applied Molecular
Genetics. John Wiley, New York, USA.
293 p.

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Extraccion de adn nuclear a partir de tejido de pie y manto de cittarium pica por precipitacion con cloruro de sodio y determinacion de calidad mediante analisis electroforetico de tipo horizontal

  • 1. O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain. EXTRACCION DE ADN NUCLEAR A PARTIR DE TEJIDO DE PIE Y MANTO DE Cittarium pica POR PRECIPITACION CON CLORURO DE SODIO Y DETERMINACION DE CALIDAD MEDIANTE ANALISIS ELECTROFORETICO DE TIPO HORIZONTAL NUCLEAR DNA EXTRACTION FROM FOOT AND MANTLE TISSUE OF Cittarium pica BY PRECIPITATION WITH SODIUM CHLORIDE AND QUALITY DETERMINATION BY ELECTROPHORETIC ANALYSIS HORIZONTAL Aguilar-Ospino Oscar1, Polo-Jiménez Deimer2, Ropain-Hernández Eber3. 1,2,3 Universidad del Magdalena, Facultad de Ciencias Básicas, Programa de Biología. aguilarospinooscar@hotmail.com, dimrpolo@gmail.com, eberiwel80@hotmail.com RESUMEN El objetivo de este análisis de laboratorio fue realizar una extracción de ADN de tejidos del manto y del pie de la especie Cittarium pica y verificar la calidad del mismo mediante electroforesis horizontal en gel de agarosa 0.8%, mediante el método de sal común (cloruro de sodio). El procedimiento consistió en tomar 2 muestras 1,5 mg de tejido del pie y del manto respectivamente y se rotularon (P1, P2, M1, M2) aplicar el protocolo de sal común para extracción, suministrado por el docente. La calidad del ADN se verificó mediante gel de agarosa al 0.8%, en cámara de electroforesis horizontal a 80V durante 30 minutos sumergida en tampón TAE 1X, con tinción de bromuro de etidio. El resultado muestra que solo la muestra de manto M1 fue la única con suficiente material genético como para correr en el gel. Se concluye que debió haber mayor tiempo de incubación posterior a la añadidura de NaCl [5M]. PALABRAS CLAVE: Método de sal común, Electroforesis horizontal, Gel de agarosa 0.8%, Extracción de ADN, Cittarium pica. ABSTRACT The objective of this lab was to conduct a DNA extraction from the mantle tissue of the foot and the species Cittarium pica and verify its quality by horizontal electrophoresis on 0.8% agarose gel, by the method of common salt (chloride sodium). The procedure was to take two 1.5 mg samples of tissue of the foot and mantle respectively and labeled (P1, P2, M1, M2) to implement the protocol for extracting salt, provided by the teacher. DNA quality was verified by agarose gel 0.8%, in horizontal electrophoresis chamber 80V immersed for 30 minutes in 1X TAE buffer with ethidium bromide staining. The result shows that only the
  • 2. O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain. mantle sample M1 was the only one with enough genetic material to run on the gel. We conclude that it must have greater incubation time after the addition of NaCl [5M]. KEY WORDS: Salt method, Electrophoresis horizontal 0.8% agarose gel, DNA extraction, Cittarium pica. INTRODUCCIÓN mediante el uso de alcoholes. (Cummings, 1994) El análisis de la molécula de ADN Despues de la extracción de ADN lo constituye una herramienta muy valiosa común es verificar su calidad y cantidad. que ha permitido delinear estrategias El proceso mas sencillo de realizar se aplicadas a la investigación básica y al denomina electroforesis. (Rotureau et al, diagnostico de innumerables entidades 2006). La electroforesis de ácidos de origen genético, basando esto en el nucleicos es el método habitual para principio de que la molécula es única en separar, identificar y purificar moléculas o cada individuo (excepto en gemelos fragmentos de DNA y RNA. En los monocigoticos) y contiene toda la tampones habitualmente utilizados, los información necesaria para el desarrollo ácidos nucleicos están cargados y función de los organismos. (Falcon et negativamente y migran hacia el ánodo. al, 2007). Cada molécula aporta una carga negativa (procedente del grupo fosfato), El ADN puede ser extraído de muchos por lo que la relación carga/tamaño es tipos de materiales biológicos y el éxito prácticamente constante e idéntica para del análisis molecular depende de su todas las moléculas, independientemente adecuado aislamiento en términos de de su tamaño (un nucleótido tendrá la cantidad, calidad y pureza; es necesario misma movilidad que un fragmento de separarlo del resto de componentes doble cadena de 800pb o uno de 5kb). celulares así como del material no (Aljanabi, 1997). Se lleva a cabo en geles biológico que pueda estar presente. de agarosa o poliacrilamida. Ambos (Cummings, 1994). Los protocolos de soportes son restrictivos para los ácidos extracción buscan eliminar o diluir nucleicos, de modo que los diferentes potentes inhibidores de reacciones de fragmentos (al tener la misma relación amplificación que eviten o dificulten carga/tamaño), migran en función de su análisis posteriores. (Liu et al, 2004) tamaño y/o conformación química. El proceso general de aislamiento Los geles de agarosa (en cubetas involucra tres pasos: primero, la lisis de horizontales) se utilizan generalmente las membranas celulares, mediante el para separar fragmentos grandes de uso de buffer específicos y altas DNA (500pb-10Mb); Utilizando agarosas temperaturas; segundo, la degradación de distintas concentraciones (distinto de las proteínas por incubación con grado de reticulación) pueden separarse proteinasa K y/o sales saturadas; tercero, fragmentos de hasta 50kb aplicando un la extracción del ADN y su precipitación
  • 3. O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain. campo eléctrico constante. La pureza entrada de polvo. En caso dado de que de la agarosa y de la solución se evapore algo de la solución se puede tampón (TAE o TBE) puede variar completar el volumen con solución según la finalidad del ensayo. tampón limpia.(Duina-Posso, 2008) (Westermeier, 1997). Es posible reutilizar una solución de agarosa El objetivo de este ejercicio de para fines de una simple visualización laboratorio fue realizar una extracción de de algún producto de PCR. No se debe ADN de tejidos del manto y del pie de la reutilizar cuando se va a cuantificar ADN especie Cittarium pica mediante el ni a extraer bandas a partir del gel. Para método de sal común (cloruro de sodio) y reutilizar la solución de agarosa se verificar la calidad del mismo mediante recomienda guardar el gel en un envase electroforesis horizontal en gel de con tapa, esto evita la evaporación y la agarosa 0.8%. MATERIALES Y MÉTODOS un nuevo tubo previamente esterilizado y se le adicionaron 600µl de alcohol etílico Extracción absoluto frio para precipitación. Por El procedimiento consistió en tomar y inversión se agito alrededor de 30-40 rotular 2 muestras 1,5 mg de tejido del veces y se incubo durante alrededor de pie y del manto respectivamente de un 15 minutos a una temperatura de -20°C individuo de la especie antes para luego centrifugarlo a 14.000 rpm mencionada y fragmentarlos con ayuda durante 10 minutos con el fin de precipitar el ADN. de un bisturí en un tubo eppendorf de 1.5µl previamente esterilizado. Con el fin de desnaturalizar componente biológico diferente al ADN se adicionaron 300µl de Verificación por electroforesis solución lisis y 1µl de proteínasa K y se horizontal sometió a incubación a 65°C durante 1 hora. Con la ayuda de un vortex se agito, La calidad del ADN se verificó mediante se agregaron 300µl de NaCl [5M] y geles de agarosa al 0.8%, en cámara de nuevamente se agito con el vortex electroforesis horizontal a 80V durante durante 10 segundos. 30 minutos sumergida en tampón TAE 1X, con tinción de bromuro de etidio. El Posterior a este proceso se sometió a las marcador de corrida usado fue azul de muestras a centrifugación durante 15 bromofenol. Para la lectura se utilizo un minutos con el propósito de separar el transiluminador UVP BioDoc en donde ADN de las proteínas y otros residuos. una banda nítida indicaría que la Esto ocasiona que se formen dos capas extracción fue positiva. dentro del tubo, una de las cuales, el sobrenadante, contiene el material genético. Se transfirió el sobrenadante a
  • 4. O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain. Tabla 1. Materiales de laboratorio y reactivos utilizados durante los procedimientos de extracción y verificación. Extracción de ADN Electroforesis horizontal Micropipetas Calculadora Material fungible (Puntas, gradillas de plástico, Cámara de electroforesis horizontal y tubos de 1.5 ml.) accesorios Pinzas y bisturí Micropipetas de 1-10 uL Mechero Puntas descartables de 1-10 uL Vortex Lamina de papel parafina Microcentrifuga Solución de Agarosa 0,8% Baño de María Buffer TAE 1X para la corrida Refrigerador Fuente de Poder Solución lisis Material Biológico Proteinasa K Tejido extraído de espécimen cultivado en Homogenizadores el Laboratorio de Moluscos y Microalgas RNAsa de la Universidad del Magdalena. Cloruro de sodio (NaCl) [5M] Alcohol etílico absoluto y al 75% Buffer TE Agua bidestilada y autoclavada Papel absorbente RESULTADOS electroforesis horizontal solo “corrió” la N° 1 del manto (M1). Como se observa en la Figura 1, de las cuatro muestras sometidas a Figura 1. Registro fotográfico de una corrida electroforética de muestras de pie y manto de Cittarium pica para verificación de calidad de ADN. Carriles M1 y M2: Muestras de manto; P1 y P2: muestras del pie.
  • 5. O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain. con mayor fuerza por unidad de área. Sambrook et al (1989) econtraron que un DISCUSIÓN mayor esfuerzo de fragmentación mecánica de tejidos duros ofrece una mejor liberación de células al medio y por Este ejercicio de laboratorio demostró la lo tanto mejores rendimientos. efectividad de la extracción de ADN mediante el protocolo de sal común, De acuerdo con los resultados de este desarrollado. Este es un método simple, ejercicio de laboratorio., se concluyo la reproducible, económico y no necesidad de someter a un mayor tiempo contaminante, fácil de utilizar para la de incubación a las muestras, posterior a obtención de material genético a partir de la adición de NaCl 5M y alcohol etílico, tejidos de Cittarium pica. respectivamente. En este sentido, autores como Miesfeld (1999) y CIMMYT Es de anotar, que los resultados (2006) proponen tiempos de incubación obtenidos con el método de extracción de 1 hora para obtener mayor ADN en la por sal común se compararon con los precipitación. resultados para los mismos tejidos de la misma especie pero mediante la Teniendo en cuenta los anteriores metodología de kits comerciales y se resultados se recomienda aplicar e identificar nuevas estrategias para lograr observo que a partir del manto se obtienen mejor calidad de ADN y mejores una extracción eficiente y de mejor corridas en el proceso de verificación por calidad a partir de este tipo de muestras; electroforesis horizontal. (Ver Figura 1). Tales como mayor esfuerzo de fragmentación mecánica a tejidos duros y Sin embargo, se observa también que la mayor tiempo de incubación a las muestra P2 del método de kits muestras posterior a la adición de NaCl comerciales alcanzo a correr en el carril 5M y alcohol etílico. De igual forma, se del gel de agarosa especificado para elucida que posiblemente sea mas esta. Esto indica que haya hecho falta eficiente ir directamente al manto para someter a un proceso de destrucción realizar procesos de extracción en ves mecánica del tejido por mayor tiempo y del pie. AGRADECIMIENTOS apoyo logístico, el suministro de insumos y por la cesión de un espacio para la Agradecimientos al personal de apoyo realización del presente ejercicio de del Laboratorio de Genética Molecular de laboratorio. la Universidad del Magdalena por el
  • 6. O. Aguilar, D. Polo-Jiménez, E. Ropain. BIBLIOGRAFÍA Rådström, P. 2004. Pre-PCR processing: Strategies to generate PCR-compatible Aljanabi, S.M., y I. Martinez. 1997 samples. Mol. Biotechnol. 26, 133–46. Universal and rapid salt-extraction of high quality genomic DNA for PCR-based Rotureau B, Ravel C, Couppie P, techniques. Nucleic Acids Research Pratlong, F, Nacher, M, Dedet, JP. 2006. 25:4692-4693. Use of PCR-Restriction Fragment Length Polymorphism analysis to identify the Cummings, A.S. y G.H. Thorgaard. 1994 main New Word Leishmania species and Extraction of DNA from fish blood and analyze their taxonomic properties and sperm. Biotechniques 17:426. polymorphism by application of the assay CIMMYT. 2006. Protocolos de to clinical samples. J. Clin. Microbiol vol laboratorio: Laboratorio de Genética 44: 459-467. Molecular Sambrook, J., Fritsch, E.F. y Maniatis, Aplicada del CIMMYT. Tercera edición. T. 1989. «Gel electroforesis of DNA» en: Sambrook, J., Fritsch, E.F. y México, D.F.: CIMMYT. Maniatis, T. (Eds.) Molecular Cloning: a Duina Posso Duque, Thaura Ghneim Laboratory Manual. New York: Cold Herrera. 2008. Uso de Marcadores Spring Harbor Laboratory Press, Cold Microsatélites para la Estimación de Spring Harbor, NY, USA, capítulo 6. Diversidad Genética en Plantas. Ediciones IVIC. Westermeier, R. 1997. Electroforesis in Practice: a Guide to Methods and Falcón, Luisa. Valera, Aldo. 2007. Applications of DNA and Protein Extracción de ácidos nucleicos Separation, VCH, Weinheim. (Capítulo16). Las herramientas moleculares (Quinta parte). En Ecología Molecular. (pp. 499-516). México, D. F., México: Secretaría del Medio Ambiente y Recursos Naturales, Instituto Nacional de Ecología, Universidad Nacional Autónoma de México – Comisión Nacional para el Conocimiento y uso de la Biodiversidad. México. Liu, Z.J. y J.F Cordes. 2004 DNA marker technologies and their applications in aquaculture genetics. Aquaculture 238:1- 37 Miesfeld, R. 1999. Applied Molecular Genetics. John Wiley, New York, USA. 293 p.