El documento describe los procedimientos para realizar urocultivos y cultivos de heridas. Explica que la toma de muestras debe realizarse con técnica aséptica y proporciona los pasos específicos para obtener muestras de orina, heridas y otros sitios con el fin de diagnosticar infecciones. También destaca la importancia de enviar las muestras de inmediato al laboratorio con la información relevante del paciente.
2. “Siembra de un medio de cultivo con una
pequeña cantidad de orina extraída
asépticamente.”
El urocultivo se utiliza para diagnosticar
bacteriuria, la orina constituye un método
excelente para cultivar la mayor parte de
microorganismos que infectan el aparato
urinario. La combinación de piuria con
bacteriuria considerable sugiere la presencia
de una infección urinaria.
3. Cuando los síntomas indican una
posible infección urinaria como:
dolor y sensación de calor al
orinar, así como urgencia
frecuente de orinar.
Cuando un paciente esta
sondado por largo tiempo,
aunque no muestre síntomas de
infección.
En mujeres embarazadas para
monitorear cualquier bacteria en
la orina que pueda causar algún
problema al bebé.
4. La muestra ideal es la primera de la mañana.
Se requiere de 3 a 5 ml de orina reciente en un
recipiente estéril.
Las muestras para urocultivos no se toman de bolsas
recolectoras de orina que forman parte del sistema
de drenaje a través de una sonda.
Se lleva la orina al laboratorio y se examina lo mas
pronto posible.
Para establecer bacteriuriua, se toman 2 muestras
sucesivas del chorro medio.
Las muestras se deben de obtener antes de
un tratamiento con antibióticos
5. La muestra de orina se cubre y el
recipiente se rotula y se incluye lo
siguiente información:
Nombre y Apellido completo
Nº de Historia Clínica
Edad
Sexo
Servicio y cama
Tipo de muestra.
Recibió antibióticos en los últimos
7 días, si es así anotar nombre del
ATB y dosis
Control o sospecha de algún
germen anterior
6. Mantener las máximas condiciones de
asepsia durante el procedimiento.
Respetar la intimidad del paciente
Se recomienda enviar la primera orina
de la mañana.
Comprobar que el frasco está
correctamente identificado.
No es necesario llenar el frasco, siendo
suficiente con una pequeña cantidad de
orina.
Asegurarse que el recipiente este bien
cerrado.
Si la muestra no se envía
inmediatamente a laboratorio,
mantener frasco en refrigerador. Sin
refrigerar, enviar frasco antes de 1 hora.
Los sistemas de drenajes cerrados de
orina disponen de un dispositivo
específico para recogida de muestras.
7. Para técnica en orina
espontánea:
1 bandeja con:
1 riñón
tórulas grandes
1 jarro con agua tibia
1 receptáculo para desechos
1 chata
1 par de guantes de
procedimientos
1 jabón de primer uso o
líquido
toalla de papel
8. 1.-Instruir al paciente de la necesidad de
realizar una buena higiene de manos antes
de la recogida de la muestra.
2.- Ponerse guantes de procedimiento
3.-Limpiar genitales externos con gasas
impregnadas con agua y jabón.
10. Realizar aseo externo,
retrayendo el prepucio,
aseo del meato urinario y
área circundante con
tórulas humedecidas con
jabón y agua, con
movimientos dirigidos
desde la zona distal a
proximal.
-Aclarar con abundante
agua
-Secar.
11. Desechar el primer chorro de
orina.
Recoger la parte media de la
micción (en mujeres: sin que
los labios toquen el interior
del frasco)
Retirar el recipiente estéril.
Cerrarlo herméticamente.
Lavado de manos.
Registrar procedimiento en
hoja de enfermería
(características orina,
cantidad, …)
12. Equipo:
1 bandeja con:
- 1 riñón limpio
- 1 jeringa de 5-10 cc
- 1 tubo estéril para muestra urocultivo, rotulado
- frasco pequeño con povidona yodada
- 1 par de guantes estériles
- Tórulas de algodón
-1 receptáculo para desechos
14. 2) Preparar al paciente explicando la técnica
y objetivo.
3) Colocarse guantes protectores.
15. 4) Desinfectar el extremo distal de la sonda,
en el lugar en que realizará la punción.
5) Puncionar la zona y obtenga 5-10 cc de
muestra aspirando la jeringa.
16. 6) Vaciar la muestra
con técnica aséptica,
tapar herméticamente.
7) Enviar al laboratorio.
8) Desechar materiales
utilizados.
9) Retirar los guantes.
10) Lavado de manos.
11) Registrar
procedimiento,
consignando cantidad y
características de orina.
17. Material necesario:
1 bandeja con:
Equipo de cateterismo estéril (1 paño clínico, 1
paño perforado, 1 riñón, 2 torundas y 2 gasas)
Equipo de aseo externo (1 par de guantes de
procedimiento, 6-8 torundas, 1 jarro con agua
tibia)
1 par de guantes estériles
1 sonda nelatón N° 14 French
Lubricante estéril
1 receptáculo para desechos
1 jeringa 5-10 cc
1 frasco para recolección de muestra estéril
Rótulo y orden de examen
18. 1) Preparar el equipo, previo lavado de manos
2) Identificar y verificar indicación
3) Explicar el procedimiento al paciente.
4) Colocar al paciente en posición dorsosacra sí es mujer y
en decúbito supino si es hombre
5) Realizar aseo externo según técnica
6) Lavarse las manos con técnica de lavado quirúrgico (3-5
minutos)
7) Colocarse los guantes estériles, un ayudante le debe
presentar equipo estéril.
8) Colocar el paño perforado sobre la zona genital
9) Colocar el riñón estéril bajo los genitales, sobre el paño
clínico usado como campo
10) Tomar la sonda y lubricar la punta con gel estéril (4-6
cm en caso de mujer y 10-14 cm en caso de hombre)
11) Estimular la relajación del paciente mientras se
introduce la sonda, haciéndolo inspirar y espirar
profundamente.
19. En mujeres separar los labios mayores y
menores con una mano, hasta visualizar el
meato urinario e introducir suavemente la
sonda hasta que fluya la orina.
20. En hombres, con una mano elevar el pene
en ángulo de 60 a 90°, retraer el prepucio
e introducir suavemente la sonda hasta que
fluya orina.
21. 13) Eliminar el primer chorro de orina y obtener el segundo
chorro directamente del frasco estéril, tapar
herméticamente.
14) Retirar la sonda y equipo y dejar cómodo al paciente.
15) Instruir al paciente para que informe si presenta
dificultad para orinar después del sondeo u observa
hematuria.
16) Instar a que beba abundante cantidad de líquidos, si no
está contraindicado.
17) Eliminar, lavar y ordenar material correspondiente.
18) Retirar los guantes y lavarse las manos.
19) Registrar el procedimiento en hojas de enfermería.
22. Es el procedimiento mediante el cual se
obtiene una muestra para estudio
microbiológico con el objetivo de evaluar la
presencia de agentes etiológicos en una
probable infección.
Según el tipo de
infección
determina que la
muestra se tome
de manera
distinta.
23. -Cuando hay diagnóstico de infección.
-Si se requiere confirmar la etiología con
fines epidemiológicos.
-Si el médico decide que el estado del
paciente requiere tratamiento antibiótico
sistémico.
24. Toda toma de cultivo debe ser realizada con
técnica aséptica.
La orden médica que acompaña a la muestra
debe llevar los siguientes datos:
-Nombre paciente
-N° ficha clínica
-Identificación hospital y servicio de procedencia
-Tipo de cultivo solicitado
-Ubicación anatómica de la lesión.
-Fecha y hora de la toma de muestra
-Identificación y firma de médico solicitante
-Diagnósticos clínicos
-Usos de antimicrobianos en el paciente.
25. Las muestras tomadas deben ser enviadas
inmediatamente al laboratorio. Si esto no es
posible, conservarlas a temperatura
ambiente hasta su envió.
NO REFRIGERAR
26. Cultivo aeróbico superficial
Técnica: Limpiar la herida por arrastre mecánico con SF o RL o
agua bidestilada.
-Frotar con tórula estéril el centro y los bordes internos en
zigzag, en aproximadamente diez puntos de referencia.
-Colocar la tórula en medio de transporte Stuart y enviar a
laboratorio.
27. Cultivo aeróbico profundo:
Técnica:
-Limpiar la superficie dañada con suero estéril.
-Tomar muestra con tórula de cultivo de la parte
más profunda de la herida.
-Colocar en medio de transporte Stuart y enviar a
laboratorio.
28. Cultivo anaerobio:
Técnica:
-Desinfectar la superficie y los bordes de la herida con antiséptico.
-Aspirar alrededor de 0.5cc de secreción de la zona mas profunda de la
herida con jeringa estéril, con o sin aguja.
-Retirar la jeringa, eliminar las burbujas de aire y taparla.
-Enviar la muestra al laboratorio de inmediato en la misma jeringa o
vaciar en caldo tioglicolato.
-Si no es posible aspirar material, introducir una tórula de cultivo en lo
más profundo de la herida y colocarla en tioglicolato de sodio.
Es de mayor
rendimiento tomar un
trocito de tejido con
pinza estéril y dejarlo
caer en el tioglicolato,
suero fisiológico o
incluso, tubo seco
estéril.
29.
30. Técnica:
-Limpiar sitio de punción con antiséptico.
-Aspirar secreción con jeringa y aguja (0,5cc
min-10cc ideal)
Cultivo aeróbico: Vaciar a
un tubo estéril y enviar a
laboratorio
Cultivo anaeróbico:
enviar inmediatamente a
laboratorio en la misma
jeringa, tapada o en
caldo tioglicolato
31. Técnica:
-Limpiar la piel con
alcohol.
-Introducir 0.5 a 1cc de
suero fisiológico esteril
con jeringa con aguja
n°21 estéril.
-Aspirar y enviar en la
misma jeringa de
inmediato a laboratorio
o dejar caer en tubo de
caldo de tioglicato.
32. Urocultivo:
- Garay, T., Larrea, I., Urruela, M.(2001)
Manual de procedimientos de Enfermería, 1°
ed. Hospital de Baruto. Extraído de:
http://www.hospitalbasurto.com/Modulos/U
suariosFtp/Conexion/archivos11A.pdf
- Universidad de Valparaíso, MANUAL DE
TECNICAS DE TOMA DE MUESTRAS PARA
EXAMENES DE LABORATORIO. Extraído de:
http://prontus.uv.cl/pubacademica/pubprof
esores/l/publandmancecilia/site/artic/20070
119/asocfile/manual_exs.pdf
33. Cultivo de Heridas:
-Instituto Nacional de Heridas, (2000) Guía
Clínica: TOMA DE CULTIVOS, CURACIÓN Y
ARRASTE MECÁNICO. Extraído de:
http://www.inheridas.cl/contenidos.php?link
x=guias_clinicas&area=documentos&clase=54
&ti=Gu%C3%ADas