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EXTRACCION DE SANGRE
• Los distintos análisis de laboratorio nos dan información muy
valiosa acerca del estado de los niños gravemente enfermos,
ayudándonos en el diagnóstico y a la hora de administrar
tratamientos.
• En la sangre venosa se pueden hacer diversos y diferentes
estudios analíticos, ya sean desde el punto de vista bioquímico,
hematológico y/o microbiológico.
• El sitio de punción en el paciente pediátrico varía
dependiendo de la edad y tamaño del niño, así como de la
accesibilidad de la vena. En niños mayores puede utilizarse
cualquier vena accesible, de forma similar al paciente adulto,
mientras que en recién nacidos y lactantes las venas
superficiales del cuero cabelludo y de las extremidades distales
pueden servir para la extracción de sangre.
• La persona que realiza la técnica es la enfermera. La auxiliar
de enfermería colabora en todo momento con ella.
• En pediatría contamos con diferentes técnicas para obtener
muestras sanguíneas:
• Punciones Venosas
• Punciones Capilares
• A través de Catéteres Centrales
• Consiste en la obtención de una pequeña cantidad de sangre
de una arteria, vena o capilar para su posterior análisis en el
laboratorio.
OBJETIVO
• Obtener una muestra de sangre de manera adecuada para
efectuar su análisis:
• Hematológico
• Bioquímico
• Microbiológico
EXTRACCIÓN DE MUESTRAS POR
PUNCIÓN VENOSA
• Consiste en recoger muestras sanguíneas para el análisis de la
sangre en el laboratorio.
Objetivo
• Obtener una muestra de sangre para:
• Conocer los elementos normales de la sangre.
• Determinar la presencia de tóxicos y otras sustancias en la
sangre.
• Vigilar y controlar el equilibrio ácido-base en la gasometría
venosa (ver capítulo siguiente).
• Aislar el agente infeccioso en los estudios bacteriológicos.
Sitios de punción
• Cuero cabelludo: Venas superficiales del cráneo.
• Cuello: Yugular externa.
• Axila: Vena axilar.
• Fosa antecubital: Vena basílica, cefálica y mediana.
• Antebrazo: Vena radial, cubital y mediana.
• Mano: Venas dorsales de la mano.
• Tobillo: Safena interna y externa.
• Pie: Venas dorsales del pie.
Recursos Humanos
• Enfermera
• Auxiliar de enfermería
Recursos Materiales
• Guantes desechables/ Guantes
estériles
• Palomillas con sistema de vacío
números 21,23,25
• Campana o adaptador para
extracción por vacío tipo Vacutainer
• Tubos de vacío para analítica
• Frascos de Hemocultivo (aerobio,
anaerobio)
• Jeringa para gasometría o
heparinizada (ver capítulo siguiente)
• Torundas de algodón /Gasas estériles
• Alcohol de 70º / Clorhexidina Acuosa 2%
• Compresor
• Rasuradora (cuero cabelludo)
• Apósito
• Etiquetas identificativas
Descripción de la técnica
• Preparar el material
• Identificar al niño
• Explicar a la madre el procedimiento que vamos a
realizar. También podemos hablar con el niño
adaptando nuestras explicaciones a su edad y
nivel de comprensión
• Lavado de manos con agua y jabón
• Colocarse los guantes desechables
• Colocar cómodamente e inmovilizar al niño
• Rasurar la zona antes de pinchar las venas del
cuero cabelludo
• Colocar compresor por encima del sitio de
punción, para producir ingurgitación de la vena
• Seleccionar el vaso mediante el tacto,
así determinaremos la profundidad,
calibre, elasticidad, etc. También se
puede localizar la vena por inspección
(color azulado). Abrir y cerrar el puño,
en niños mayores, puede ayudar a
distender las venas de los miembros
superiores
• Desinfectar el punto de punción con
torundas impregnadas de alcohol de
70º
• Para recogida de hemocultivos nos
pondremos guantes estériles y
utilizaremos gasas estériles con
clorhexidina acuosa al 2%
• Pinchar la piel y posteriormente la vena en dirección contraria
al flujo sanguíneo, con un ángulo entre 15º y 30º respecto a la
piel, con el bisel de la aguja hacia arriba
• Soltar el compresor cuando
refluya la sangre
• Conectar el frasco de
hemocultivo al sistema de
trasvase
• Colocar la palomilla en la
campana o adaptador de
vacío
• Conectar el sistema de
trasvase al tubo para recoger
la cantidad de sangre
deseada
• Cambiar de tubos
• Si se recogiera sangre
para gasometría venosa,
ver capítulo siguiente
• Sacar la aguja y aplicar
presión suave hasta
lograr hemostasia.
• Colocar apósito en el
sitio de punción
• Etiquetar los tubos para
su envío al laboratorio,
con la petición
correspondiente
• Retirar el material usado
• Lavado de manos
• Registrar el
procedimiento en la
historia de enfermería
Complicaciones
• Sangrado excesivo por el punto de punción
• Formación de hematomas
• Infecciones por pérdida de integridad de la piel
• Punciones múltiples para localizar las venas
• Laceración de arteria o nervio adyacente
• Trombosis o embolia en punción de grandes vasos
• Desmayo o sensación de mareo
Observaciones
• Utilizar anestésico tópico (crema EMLA®) en cura oclusiva 30-60
minutos antes de la punción, para disminuir el dolor. Por el riesgo
de metahemoglobinemia en niños menores de 3 meses, se debe
limitar el tiempo de exposición y el área a impregnar.
• No utilizar povidona yodada, como medida general en el paciente
pediátrico, por el riesgo de absorción de yodo y afectación tiroidea
en RN y lactantes menores de 6 meses.
• Mantener asepsia durante la extracción.
• Provocar el menor traumatismo posible en el sitio de punción.
• Cambiar de aguja en caso de fallo en la punción.
• No extraer sangre de una vena donde esté canalizado un goteo, ya
que la muestra estaría diluida y no daría valores reales.
• No pinchar en zonas con infección local o hematomas.
• No pinchar venas profundas en niños con alteraciones de
coagulación.
• La recogida de hemocultivos se realiza con técnica estéril.
• La extracción rutinaria de hemocultivos anaerobios en pediatría
tiene una escasa rentabilidad, por lo que se limita a las situaciones
en que las patologías lo sugieren.
• No aplicar ninguna solución antiséptica sobre el tapón del
hemocultivo.
• No tapar los frascos de hemocultivo con algodón o esparadrapo.
• Presionar unos 5 minutos hasta hacer hemostasia, en la zona de
punción, tras de la extracción.
• Vigilar inflamación, calor o sangrado en el sitio de punción.
EXTRACCIÓN DE MUESTRAS POR PUNCIÓN
CAPILAR
• Consiste en la recogida de una muestra de sangre para el
análisis realizado por micrométodo: bilirrubinemias, glucemias,
hematocrito, etc., a partir de la punción capilar. Es un
procedimiento habitual en recién nacidos y lactantes.
Objetivo
• Obtener una muestra de sangre, evitando la venopunción, para:
• Conocer el hematocrito y bilirrubina capilar.
• Determinación rápida de la glucemia.
• Determinación de las pruebas metabólicas (hipotiroidismo y
fenilcetonuria) en el recién nacido.
• Conocer el pH, gases y equilibrio ácido-base de la sangre (ver
capítulo siguiente).
Sitios de punción
• Lateral externo o interno del talón
• Caras laterales de las falanges distales de los dedos de la
mano
Recursos Materiales
• Guantes desechables
• Lanceta
• Capilares de microhematocrito
• Plastilina para sellar los capilares
• Tubos microtainer para recogida de
muestras
• Tiras reactivas para la determinación
de glucosa capilar
• Aparato de determinación de glucemia
• Papel de filtro especial para pruebas
metabólicas
• Torunda con alcohol de 70º
• Apósito/ Gasas
• Batea con agua caliente
• Etiquetas identificativas
Descripción de la técnica
• Lavado de manos con agua y jabón
• Colocarse los guantes
• Calentar el pie del cual se va a extraer
sangre introduciéndolo en una batea con
agua templada a 41º, con el fin de
producir vasodilatación incrementando así
el flujo sanguíneo
• Sujetar el talón con los dedos pulgar e
índice
• Secar con una compresa y desinfectar
con torundas impregnadas en alcohol de
70º
• Puncionar con una lanceta enérgica y
perpendicularmente al lateral externo o
interno del talón
• Presionar de forma intermitente el talón
para favorecer la formación de la gota de
sangre
• Rellenar los capilares de
microhematocrito (evitando burbujas de
aire), tubo de micromuestra o tira reactiva
tomando sangre de la gota que se forma
espontáneamente
• Para la recogida de las metabolopatías,
se necesita impregnar los círc
• Limpiar y comprimir el sitio de punción
• Colocar apósito o gasa anudada al talón
(en pretérminos y grandes inmaduros)
• ulos de las tarjetas (papel de filtro
especial)
• Sellar los capilares de hematocrito con
plastilina en un extremo ó tapar el tubo de
micromuestra
• Etiquetar las muestras para su envío al
laboratorio, con la petición correspondiente
• Retirar el material usado
• Lavado de manos
• Registrar el procedimiento en la historia de
enfermería
Complicaciones
• Infecciones de tejidos blandos
• Infecciones en el hueso (osteomielitis)
• Celulitis por formación de abscesos
• Sangrado excesivo por el punto de punción
• Formación de hematomas
Observaciones
• Evitar zonas frías de punción.
• No pinchar en la curvatura posterior del talón, la distancia entre el hueso y la piel
es mínima pudiéndose lesionar el hueso.
• No pinchar en zonas con infección local o hematomas.
• No pinchar con vasoconstricción periférica o cianosis.
• No pinchar en niños edematosos.
• En preescolares y escolares se elegirá preferentemente los laterales de los
dedos como zona de punción.
• No presionar junto a la punción, al producirse hemólisis se mezclan fluidos
intersticiales e intracelulares con la sangre alterando los resultados.
• No existen diferencias significativas entre la glucemia capilar despreciando o no
la primera gota.
• Evitar la entrada de aire en el capilar, ya que podría falsear resultados.
• Utilizar capilares heparinizados para evitar la coagulación de la muestra.
• Evitar el uso de esparadrapo en niños prematuros y sustituir por una gasa
anudada, para no producir agresiones en la piel.
EXTRACCION DE MUESTRAS A TRAVÉS
DE CATETER VENOSO CENTRAL
• Aunque la canalización venosa central se reserva para la
administración de líquidos y medicación, puede ser utilizada en
niños con cuidados críticos en los que estén indicadas
extracciones múltiples y repetidas de sangre, siempre y cuando
no dispongan de una vía arterial canalizada.
• Consiste en la obtención de muestras sanguíneas, a través
de catéteres venosos centrales, para análisis de sangre cuando
se prevén frecuentes determinaciones en niños en estado
crítico
Localización
• Vena yugular interna
• Vena subclavia
• Vena basílica y cefálica (catéteres centrales de inserción
periférica)
• Vena femoral
• Vena umbilical en neonatos
Recursos Materiales
• Guantes estériles
• Paño estéril
• Sistema cerrado de extracción (Vamp)
• Dos jeringas con agujas
• Suero heparinizado
• Tubos analítica
• Torundas de gasa estéril
• Clorhexidina acuosa al 2%
• Etiquetas identificativas
Descripción de la técnica
• Preparar el material
• Lavado de manos con agua y jabón
• Colocarse guantes estériles
• Preparar paño estéril para trabajar sobre él
• Cerrar la llave distal del sistema cerrado de
extracción
• Aspirar con el émbolo del sistema Vamp hasta llenar
con sangre el reservorio en su totalidad
• Cerrar llave proximal del sistema
• Limpiar la goma proximal con torundas de gasa
estéril impregnadas de Clorhexidina acuosa 2%
• Pinchar con la jeringa y extraer la cantidad de
sangre necesaria para llenar los tubos
• Llenar los tubos de analítica
• Abrir la llave proximal del sistema Vamp
• Introducir lentamente la sangre del reservorio
• Limpiar la goma distal con torundas de gasa estéril
impregnadas de Clorhexidina Acuosa 2%
• Pinchar con una jeringa cargada de suero heparinizado( 1
unidad de heparina por cada cc de SSF) para lavar el sistema
• Abrir la llave distal del sistema Vamp para permitir el paso de la
perfusión
• Etiquetar los tubos para su envío al laboratorio, con la petición
correspondiente
• Retirar el material usado
• Lavado de manos
• Registrar el procedimiento en la historia de enfermería
Complicaciones
• Formación de trombos (disminuye el riesgo en catéteres de
silastic)
• Coagulación del catéter
• Embolia aérea ó líquida por excesivo lavado
• Contaminación de catéter femoral en niños con pañal
• Infecciones y sepsis
• Anemia iatrogénica
• Dilución de la muestra
Observaciones
• Realizar la extracción con técnica estéril para evitar infecciones
y contaminaciones accidentales.
• Extraer muestras de catéter central evita punciones múltiples.
• Disminuye las situaciones de estrés provocadas en los niños
por el dolor y la manipulación.
• Procedimiento más sencillo que pinchar una vena.
OBSERVACIONES GENERALES
• Tranquilizar y generar confianza en el niño consciente para aliviar el
nerviosismo.
• La presencia y el contacto físico con los padres puede ayudar durante el
procedimiento.
• Inmovilizar al niño correctamente para evitar lesionar otras estructuras.
• Conocer los requisitos previos a la prueba (ayunas, administración de
medicamentos, forma de recogida de la muestra, conservación de la
misma….).
• En ayunas, generalmente la muestra es más homogénea y ofrece valores
más precisos.
• Identificación correcta de la muestra y la petición.
• Conservar la muestra de la manera apropiada si no se lleva al laboratorio
antes de 5 minutos.

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Power Point : Motivados por la esperanza
 

Tecnica de extraccion de sangre

  • 2. • Los distintos análisis de laboratorio nos dan información muy valiosa acerca del estado de los niños gravemente enfermos, ayudándonos en el diagnóstico y a la hora de administrar tratamientos. • En la sangre venosa se pueden hacer diversos y diferentes estudios analíticos, ya sean desde el punto de vista bioquímico, hematológico y/o microbiológico. • El sitio de punción en el paciente pediátrico varía dependiendo de la edad y tamaño del niño, así como de la accesibilidad de la vena. En niños mayores puede utilizarse cualquier vena accesible, de forma similar al paciente adulto, mientras que en recién nacidos y lactantes las venas superficiales del cuero cabelludo y de las extremidades distales pueden servir para la extracción de sangre.
  • 3. • La persona que realiza la técnica es la enfermera. La auxiliar de enfermería colabora en todo momento con ella. • En pediatría contamos con diferentes técnicas para obtener muestras sanguíneas: • Punciones Venosas • Punciones Capilares • A través de Catéteres Centrales
  • 4. • Consiste en la obtención de una pequeña cantidad de sangre de una arteria, vena o capilar para su posterior análisis en el laboratorio.
  • 5. OBJETIVO • Obtener una muestra de sangre de manera adecuada para efectuar su análisis: • Hematológico • Bioquímico • Microbiológico
  • 6. EXTRACCIÓN DE MUESTRAS POR PUNCIÓN VENOSA • Consiste en recoger muestras sanguíneas para el análisis de la sangre en el laboratorio. Objetivo • Obtener una muestra de sangre para: • Conocer los elementos normales de la sangre. • Determinar la presencia de tóxicos y otras sustancias en la sangre. • Vigilar y controlar el equilibrio ácido-base en la gasometría venosa (ver capítulo siguiente). • Aislar el agente infeccioso en los estudios bacteriológicos.
  • 7. Sitios de punción • Cuero cabelludo: Venas superficiales del cráneo. • Cuello: Yugular externa. • Axila: Vena axilar. • Fosa antecubital: Vena basílica, cefálica y mediana. • Antebrazo: Vena radial, cubital y mediana. • Mano: Venas dorsales de la mano. • Tobillo: Safena interna y externa. • Pie: Venas dorsales del pie.
  • 8. Recursos Humanos • Enfermera • Auxiliar de enfermería
  • 9. Recursos Materiales • Guantes desechables/ Guantes estériles • Palomillas con sistema de vacío números 21,23,25 • Campana o adaptador para extracción por vacío tipo Vacutainer • Tubos de vacío para analítica • Frascos de Hemocultivo (aerobio, anaerobio) • Jeringa para gasometría o heparinizada (ver capítulo siguiente)
  • 10. • Torundas de algodón /Gasas estériles • Alcohol de 70º / Clorhexidina Acuosa 2% • Compresor • Rasuradora (cuero cabelludo) • Apósito • Etiquetas identificativas
  • 11. Descripción de la técnica • Preparar el material • Identificar al niño • Explicar a la madre el procedimiento que vamos a realizar. También podemos hablar con el niño adaptando nuestras explicaciones a su edad y nivel de comprensión • Lavado de manos con agua y jabón • Colocarse los guantes desechables • Colocar cómodamente e inmovilizar al niño • Rasurar la zona antes de pinchar las venas del cuero cabelludo • Colocar compresor por encima del sitio de punción, para producir ingurgitación de la vena
  • 12. • Seleccionar el vaso mediante el tacto, así determinaremos la profundidad, calibre, elasticidad, etc. También se puede localizar la vena por inspección (color azulado). Abrir y cerrar el puño, en niños mayores, puede ayudar a distender las venas de los miembros superiores • Desinfectar el punto de punción con torundas impregnadas de alcohol de 70º • Para recogida de hemocultivos nos pondremos guantes estériles y utilizaremos gasas estériles con clorhexidina acuosa al 2%
  • 13. • Pinchar la piel y posteriormente la vena en dirección contraria al flujo sanguíneo, con un ángulo entre 15º y 30º respecto a la piel, con el bisel de la aguja hacia arriba
  • 14. • Soltar el compresor cuando refluya la sangre • Conectar el frasco de hemocultivo al sistema de trasvase • Colocar la palomilla en la campana o adaptador de vacío • Conectar el sistema de trasvase al tubo para recoger la cantidad de sangre deseada • Cambiar de tubos
  • 15. • Si se recogiera sangre para gasometría venosa, ver capítulo siguiente • Sacar la aguja y aplicar presión suave hasta lograr hemostasia. • Colocar apósito en el sitio de punción • Etiquetar los tubos para su envío al laboratorio, con la petición correspondiente • Retirar el material usado • Lavado de manos • Registrar el procedimiento en la historia de enfermería
  • 16. Complicaciones • Sangrado excesivo por el punto de punción • Formación de hematomas • Infecciones por pérdida de integridad de la piel • Punciones múltiples para localizar las venas • Laceración de arteria o nervio adyacente • Trombosis o embolia en punción de grandes vasos • Desmayo o sensación de mareo
  • 17. Observaciones • Utilizar anestésico tópico (crema EMLA®) en cura oclusiva 30-60 minutos antes de la punción, para disminuir el dolor. Por el riesgo de metahemoglobinemia en niños menores de 3 meses, se debe limitar el tiempo de exposición y el área a impregnar. • No utilizar povidona yodada, como medida general en el paciente pediátrico, por el riesgo de absorción de yodo y afectación tiroidea en RN y lactantes menores de 6 meses. • Mantener asepsia durante la extracción. • Provocar el menor traumatismo posible en el sitio de punción. • Cambiar de aguja en caso de fallo en la punción. • No extraer sangre de una vena donde esté canalizado un goteo, ya que la muestra estaría diluida y no daría valores reales. • No pinchar en zonas con infección local o hematomas.
  • 18. • No pinchar venas profundas en niños con alteraciones de coagulación. • La recogida de hemocultivos se realiza con técnica estéril. • La extracción rutinaria de hemocultivos anaerobios en pediatría tiene una escasa rentabilidad, por lo que se limita a las situaciones en que las patologías lo sugieren. • No aplicar ninguna solución antiséptica sobre el tapón del hemocultivo. • No tapar los frascos de hemocultivo con algodón o esparadrapo. • Presionar unos 5 minutos hasta hacer hemostasia, en la zona de punción, tras de la extracción. • Vigilar inflamación, calor o sangrado en el sitio de punción.
  • 19. EXTRACCIÓN DE MUESTRAS POR PUNCIÓN CAPILAR • Consiste en la recogida de una muestra de sangre para el análisis realizado por micrométodo: bilirrubinemias, glucemias, hematocrito, etc., a partir de la punción capilar. Es un procedimiento habitual en recién nacidos y lactantes.
  • 20. Objetivo • Obtener una muestra de sangre, evitando la venopunción, para: • Conocer el hematocrito y bilirrubina capilar. • Determinación rápida de la glucemia. • Determinación de las pruebas metabólicas (hipotiroidismo y fenilcetonuria) en el recién nacido. • Conocer el pH, gases y equilibrio ácido-base de la sangre (ver capítulo siguiente).
  • 21. Sitios de punción • Lateral externo o interno del talón • Caras laterales de las falanges distales de los dedos de la mano
  • 22. Recursos Materiales • Guantes desechables • Lanceta • Capilares de microhematocrito • Plastilina para sellar los capilares • Tubos microtainer para recogida de muestras • Tiras reactivas para la determinación de glucosa capilar • Aparato de determinación de glucemia • Papel de filtro especial para pruebas metabólicas • Torunda con alcohol de 70º • Apósito/ Gasas • Batea con agua caliente • Etiquetas identificativas
  • 23. Descripción de la técnica • Lavado de manos con agua y jabón • Colocarse los guantes • Calentar el pie del cual se va a extraer sangre introduciéndolo en una batea con agua templada a 41º, con el fin de producir vasodilatación incrementando así el flujo sanguíneo • Sujetar el talón con los dedos pulgar e índice • Secar con una compresa y desinfectar con torundas impregnadas en alcohol de 70º • Puncionar con una lanceta enérgica y perpendicularmente al lateral externo o interno del talón
  • 24. • Presionar de forma intermitente el talón para favorecer la formación de la gota de sangre • Rellenar los capilares de microhematocrito (evitando burbujas de aire), tubo de micromuestra o tira reactiva tomando sangre de la gota que se forma espontáneamente • Para la recogida de las metabolopatías, se necesita impregnar los círc • Limpiar y comprimir el sitio de punción • Colocar apósito o gasa anudada al talón (en pretérminos y grandes inmaduros) • ulos de las tarjetas (papel de filtro especial)
  • 25. • Sellar los capilares de hematocrito con plastilina en un extremo ó tapar el tubo de micromuestra • Etiquetar las muestras para su envío al laboratorio, con la petición correspondiente • Retirar el material usado • Lavado de manos • Registrar el procedimiento en la historia de enfermería
  • 26. Complicaciones • Infecciones de tejidos blandos • Infecciones en el hueso (osteomielitis) • Celulitis por formación de abscesos • Sangrado excesivo por el punto de punción • Formación de hematomas
  • 27. Observaciones • Evitar zonas frías de punción. • No pinchar en la curvatura posterior del talón, la distancia entre el hueso y la piel es mínima pudiéndose lesionar el hueso. • No pinchar en zonas con infección local o hematomas. • No pinchar con vasoconstricción periférica o cianosis. • No pinchar en niños edematosos. • En preescolares y escolares se elegirá preferentemente los laterales de los dedos como zona de punción. • No presionar junto a la punción, al producirse hemólisis se mezclan fluidos intersticiales e intracelulares con la sangre alterando los resultados. • No existen diferencias significativas entre la glucemia capilar despreciando o no la primera gota. • Evitar la entrada de aire en el capilar, ya que podría falsear resultados. • Utilizar capilares heparinizados para evitar la coagulación de la muestra. • Evitar el uso de esparadrapo en niños prematuros y sustituir por una gasa anudada, para no producir agresiones en la piel.
  • 28. EXTRACCION DE MUESTRAS A TRAVÉS DE CATETER VENOSO CENTRAL • Aunque la canalización venosa central se reserva para la administración de líquidos y medicación, puede ser utilizada en niños con cuidados críticos en los que estén indicadas extracciones múltiples y repetidas de sangre, siempre y cuando no dispongan de una vía arterial canalizada. • Consiste en la obtención de muestras sanguíneas, a través de catéteres venosos centrales, para análisis de sangre cuando se prevén frecuentes determinaciones en niños en estado crítico
  • 29. Localización • Vena yugular interna • Vena subclavia • Vena basílica y cefálica (catéteres centrales de inserción periférica) • Vena femoral • Vena umbilical en neonatos
  • 30. Recursos Materiales • Guantes estériles • Paño estéril • Sistema cerrado de extracción (Vamp) • Dos jeringas con agujas • Suero heparinizado • Tubos analítica • Torundas de gasa estéril • Clorhexidina acuosa al 2% • Etiquetas identificativas
  • 31. Descripción de la técnica • Preparar el material • Lavado de manos con agua y jabón • Colocarse guantes estériles • Preparar paño estéril para trabajar sobre él • Cerrar la llave distal del sistema cerrado de extracción • Aspirar con el émbolo del sistema Vamp hasta llenar con sangre el reservorio en su totalidad • Cerrar llave proximal del sistema • Limpiar la goma proximal con torundas de gasa estéril impregnadas de Clorhexidina acuosa 2% • Pinchar con la jeringa y extraer la cantidad de sangre necesaria para llenar los tubos
  • 32. • Llenar los tubos de analítica • Abrir la llave proximal del sistema Vamp • Introducir lentamente la sangre del reservorio • Limpiar la goma distal con torundas de gasa estéril impregnadas de Clorhexidina Acuosa 2% • Pinchar con una jeringa cargada de suero heparinizado( 1 unidad de heparina por cada cc de SSF) para lavar el sistema • Abrir la llave distal del sistema Vamp para permitir el paso de la perfusión • Etiquetar los tubos para su envío al laboratorio, con la petición correspondiente • Retirar el material usado • Lavado de manos • Registrar el procedimiento en la historia de enfermería
  • 33. Complicaciones • Formación de trombos (disminuye el riesgo en catéteres de silastic) • Coagulación del catéter • Embolia aérea ó líquida por excesivo lavado • Contaminación de catéter femoral en niños con pañal • Infecciones y sepsis • Anemia iatrogénica • Dilución de la muestra
  • 34. Observaciones • Realizar la extracción con técnica estéril para evitar infecciones y contaminaciones accidentales. • Extraer muestras de catéter central evita punciones múltiples. • Disminuye las situaciones de estrés provocadas en los niños por el dolor y la manipulación. • Procedimiento más sencillo que pinchar una vena.
  • 35. OBSERVACIONES GENERALES • Tranquilizar y generar confianza en el niño consciente para aliviar el nerviosismo. • La presencia y el contacto físico con los padres puede ayudar durante el procedimiento. • Inmovilizar al niño correctamente para evitar lesionar otras estructuras. • Conocer los requisitos previos a la prueba (ayunas, administración de medicamentos, forma de recogida de la muestra, conservación de la misma….). • En ayunas, generalmente la muestra es más homogénea y ofrece valores más precisos. • Identificación correcta de la muestra y la petición. • Conservar la muestra de la manera apropiada si no se lleva al laboratorio antes de 5 minutos.