Presentation 7: Retrospective review of bacterial infections in shrimp in Latin America (Dr Jorge Cuellar, Panama)

FAO TCP/INT/3502 “Reducing and managing the risk of
Acute Hepatopancreatic Necrosis Disease (AHPND) of Cultured Shrimp”
REVISIÓN RETROSPECTIVA DE INFECCIONES
BACTERIANAS EN CAMARONES A NIVEL DE
LATINOAMÉRICA
*María Soledad Morales-Covarrubias,
Jorge Cuéllar-Anjel, Alexander Varela y
Carolina Elizondo
jocuan@gmail.com
6/24/2015
International Technical Seminar/Workshop “EMS/AHPND: Government, Scientist and Farmer Responses”
22-24 June 2015, Tryp Hotel, Panama City 1

Objetivo
Recopilar la información disponible y pública
sobre las principales enfermedades bacterianas
que afectan los cultivos de camarones marinos
en los países de América Latina.
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International Technical Seminar/Workshop
“EMS/AHPND: Government, Scientist and
Farmer Responses”
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International Technical Seminar/Workshop “EMS/AHPND:
Government, Scientist and Farmer Responses”
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Camaronicultura latinoamericana
 16% de la producción mundial (534 mil Ton)
 Ecuador, México, Honduras, Nicaragua y
Brasil: principales productores (~316 mil has)
 Importaciones de camarón en 2014:
• Unión Europea: 253 mil Ton
• Estados Unidos: 490 mil Ton
• Vietnam: 50 mil Ton

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Fuentes: FAO (2013) for 1991-2011; GOAL (2013) for 2012-2015. Adaptado de Jory, 2014.
Southeast Asia: Tailandia, Vietnam, Indonesia, Bangladesh, Malasia, Filipinas, Myanmar y Taiwán
No se incluye Macrobrachium rosenbergii

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Principales productores en L.A. 2008-2015
No se incluye M. rosenbergii

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Otros productores en L.A. 2008-2015
No se incluye M. rosenbergii

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Algunas causas de pérdidas económicas
en cultivos de camarones marinos
• Pls
• Agua
• Alimento
• Fondo
• Macroalgas invasivas
• Moluscos invasivos
• Iatrogénicos
• Manejo
• Factores ambientales
• Robo
• Precios bajos
• Enfermedades (virus,
bacterias, hongos,
tóxicas)
• Otras…

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Año 1er reporteEnfermedad/Agente
Pérdidas en
USD millones
Pérdidas económicas globales a causa de las
enfermedades
Fuentes: (1) Dr. Donald V. Lightner; (2) Dr. Matt Briggs; (3) Otros. Adaptado de Jory, 2014.

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• Afectan laboratorios
• Afectan granjas camaronera
• Principales cepas patógenas reportadas en mortalidades
de larvas, poslarvas, juveniles o adultos:
Enfermedades bacterianas en camarones
• Vibrio harveyi
• Vibrio vulnificus
• Vibrio parahaemolyticus
• Vibrio alginolyticus
• Vibrio penaeicida
• Vibrio sp.
• Vibrio anguillarum
• Vibrio campbellii
• Vibrio splendidus
• Vibrio metschnikovii

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International Technical Seminar/Workshop “EMS/AHPND:
Government, Scientist and Farmer Responses”
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Revisión retrospectiva
 Últimos 15 años
 12 países de América Latina
 Cultivos semi-intensivos e intensivos
 5 principales enfermedades bacterianas
• Bacterias extracelulares
• Bacterias intracelulares
 Efecto económico importante
 Cíclicas (estacionales)

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Principales enfermedades bacterianas de
camarones en Latinoamérica
• Necrosis séptica del hepatopáncreas (SHPN),
“Vibriosis”, Vibriosis sistémica o “Síndrome de
la Gaviota” y Quitinosis
• Hepatopancreatitis Necrotizante (NHP)
• Estreptococosis
• Necrosis Aguda del Hepatopáncreas (AHPND)
• Espiroplasmosis

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País
SHPN o
Vibriosis
NHP Estreptococosis
EMS/AHPND
(Necrosis Aguda
del HP)
Espiroplasmosis
MÉXICO 80% 75% 25% 60%
GUATEMALA 45% 25% 10%
BELICE 35% 40%
EL SALVADOR 30% 7.5%†
HONDURAS 60% 35%
NICARAGUA 30% 20%
COSTA RICA 80% 67%
PANAMA 35% 40%
COLOMBIA 30% 10% 10% (2002)*
VENEZUELA 30% 10%
ECUADOR 55% 70%
PERU 35% 80%
Prevalencia actual de enfermedades
bacterianas por país
*Nunan et al., 2005; †Marroquín, 2015 [com. pers.]

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• Virulencia variable según la patogenicidad
de la cepa
• Está mediada por factores ambientales:
– salinidad
– temperatura
– pH
– materia orgánica
• Patógenos oportunistas o estrictos
Principal causa de enfermedades
bacterianas: Vibrio spp.

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Necrosis séptica del hepatopáncreas
(SHPN), Vibriosis, Vibriosis sistémica o
“Síndrome de la Gaviota” y Quitinosis
 Afecciones por vibrios detectadas en los 12 países de A.L.
 México y Costa Rica los más afectados
 Prevalencia media en A.L.: 45%
 Afecta en larviculturas y granjas de engorde
 Principales cepas pertenecen a V. harveyi, V. parahaemolyticus, V.
alginolyticus y V. campbellii
 Ocasionalmente Photobacterium damsela (antes V. damsela), V.
fluvialis y Vibrio sp.
 1x106 – 1x108 UFC en hemolinfa o HP
 Dx: bacteriología clásica, histología, secuenciación parcial del gen
16S rRNA
 Control: manejo, medicación (antibiograma), paleativos (melaza)

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Vibriosis (SHPN)

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Esferoides en SHPN
Túb.
G.A.
O.L.

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SHPN

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Vibriosis sistémica (Granulomas)
OVA MUS
O.L. HP

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Vibriosis sistémica o “Síndrome de la gaviota”

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Quitinosis

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Hepatopancreatitis Necrotizante (NHP)
 Presencia de NHP confirmada en los 12 países de A.L.
 México, Costa Rica y Perú son los más afectados
 Prevalencia media en A.L.: 43%
 Afecta en granjas de engorde y menormente en maduración
 Mortalidad variable y constante durante el ciclo (indetectable)
 Transmisión horizontal y presumiblemente vertical*
 Producida por una bacteria intracelular tipo rickettsia
 Etiología: cocobacilo Gram (-), Ө= 0.36 µm, Hepatobacter penaei
 Eventual infección secundaria por vibrios en fase terminal
 Dx: valoración clínica, montajes en fresco de HP, histología,
songas genéticas y PCR
 Control: Oxitetraciclina, Florfenicol y Enrofloxacina en fase inicial
(resultados variables)
*Leclercq et al., 2004

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NHP

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Estreptococosis
 Reportada en Guatemala (2009 – 2012) y México (2011 - 2012)
 Mortalidad acumulada de 40% a 80%
 Afecta en granjas de engorde supervivencia y crecimiento
 Prevalencia (MX): 25% (↑ densidad, ↑ nitritos)
 Signos clínicos: músculo blanquecino, letargia, nado errático
 Mortalidad masiva luego del letargo en el fondo del estanque
 Etiología: Streptococcus uberis y S. parauberis (Actualmente
identificada como nueva especie S. penaeicida)
 Dx: valoración clínica, montaje en fresco de HP, histología (H&E y
Giemsa) y bacteriología clásica
 Histopatología en HP: hepatopáncreas infiltración de hemolinfa,
desprendimiento celular, necrosis tubular y nódulos hemocíticos
 Histopatología de músculo: infiltración de hemocitos, necrosis licuefactiva
y presencia de masas de bacterias
 Agar sangre: hemolinfa (1x104 UFC/mL) y HP (1x106 UFC/g)
 Curso autolimitante

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Estreptococosis
Pantoja y Lightner, 2014.

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Enfermedad de la necrosis aguda del
hepatopáncreas (EMS/AHPND)
 Presencia confirmada (PCR) en México
 Prevalencia media: 60%
 Afecta en granjas de engorde (primeros 30 días de cultivo)
 Mortalidad masiva
 Producida por cepas patógenas de V. parahaemolyticus
 Liberan toxina que produce disfunción celular del HP (R, B, F, B)
 Fase aguda y fase terminal
 Infección secundaria por vibrios en fase terminal
 Signos clínicos: nado errático, crecimiento reducido, HP pálido o
blanquecino con atrofia, exoesqueleto blando, intestino vacío o
parcialmente lleno, signos y mortalidad 6-10 días de la siembra
 Dx: valoración clínica, histología y PCR
 Control: manejo, paleativos, pls tolerantes, vaciados sanitarios,
desinfección, densidades bajas

Síndrome de Mortalidad Temprana (EMS /
AHPNS)
Células E: embriónicas, únicas del HP con actividad mitótica
Células F: fibrilares, síntesis y secreción de proteínas [enzimas digestivas]
Cuéllar-Anjel, 2013. Adaptado de Lightner, 2013 y de Al-Mohana & Nott, 1989.
Células R: absortivas, reserva y entrega de nutrientes al cuerpo vía hemolinfa
Células B: vacuolares, degradan enzimas digestivas y desechos remanentes en los túbulos, luego
que han sido absorbidos los nutrientes

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Espiroplasmosis
 Reportada sólo en Colombia (2002, finca en el Caribe)
 Prevalencia media: 10%
 Afecta en granjas de engorde (juveniles y sub-adultos)
 Mortalidad masiva (“síndrome de los camarones parados”)
 Producida por cepas patógenas de Spiroplasma penaei
 Transmisión horizontal (canibalismo y agua); vertical sin confirmar
 Signos clínicos: ninguno en particular; eventualmente cromatóforos
expandidos
 Órganos/tejidos afectados: cordón nervioso ventral, músculo,
corazón, glándula antenal, órgano linfoide, tejido conectivo fibroso
(en HP), tejido conectivo esponjoso perigástrico, filamentos
branquiales y subcutis del caparazón y de apéndices corporales
 Dx: valoración clínica, histología, sondas genéticas, PCR y SEM

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Espiroplasmosis
O.L.
COR
1 µm
Pantoja y Lightner, 2014.

Recomendaciones
• Bioseguridad y BPM
• Vigilancia oficial
• Vigilancia privada (laboratorios y granjas)
• Bacteriología clásica (agar TCBS y marino)
• Registros propios (histórico del establecimiento)
• Comparación constante según medias (UFC)
• Profilaxis (manejo, densidad, pro/prebióticos, ...)
• Antibiograma y Concentración Mínima Inhibitoria
• Terapias dirigidas, completas y supervisadas (respetar tiempo
de retiro)
• Comunicación de brote a la Autoridad Competente
• Comunicación con vecinos y otros camaroneros
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6/24/2015
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Muchas
gracias!

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