Hemocultivos

1. UCAMI
MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA MEDICINA
2020
Trabajo Práctico 7
Bacteriemia
Claudia Viviana Villalba
Especialista en Microbiología Clínica
Magister en Salud Pública

2. Bacteriemia
• Se define la bacteriemia como la presencia de bacterias en la
sangre y se pone de manifiesto mediante el aislamiento de
éstas en los hemocultivos. El término fungemia se utiliza para
designar la presencia de hongos en la sangre. Ambas son
complicaciones graves de muy variadas infecciones
bacterianas y fúngicas

3. Hemocultivos
• CUANDO ?
• Lo más próximo posible al pico febril, y preferiblemente
previo a la instauración de la antibioterapia.
• CUÁNTO ?
• El número de extracciones considerado óptimo para la
documentación de un episodio de bacteriemia es de 2 a 3,
utilizando siempre lugares diferentes de venopunción.
• De este manera logran detectarse más del 95% de las
bacteriemias.

4. Cultivo de sangre: Hemocultivo
• DEFINICIÓN:
• Entracción de sangre con técnica aséptica para determinar la
presencia de algún agente etiológico mediante el cultivo de
ésta.

5. Cuándo tomar hemocultivos?
1-Ante la sospecha de bacteriemia en pacientes con o sin foco de infección.
2-Para la identificación del agente causal en caso de :
• Septicemia severa
• Meningitis
• Osteomielitis
• Artritis
• Neumonía
• Endocarditis infecciosas
• Episodios febriles
• Otros

6. Materiales necesarios para la toma de muestra
Frascos de Hemocultivos: Aerobio y Anaerobio
Jeringas estériles
Elementos de protección personal ( EPP ): guantes, camisolín, barbijo.
Alcohol 70 % u otro agente para desinfección de la piel de la zona de
punción. ( Clorhexidina )
Torundas de algodón para la desinfección de la piel y de la tapa de los frascos
de hemocultivos.
Descartador de cortopunzantes para descartar las agujas
Liga o lazo para realizar la punción.

7. Toma de muestra
• Qué debemos tener en cuenta ?
• Momento de la toma de hemocultivos.
• Preparación de la piel
• Técnica y zona de obtención
• Volumen de sangre
• Inoculación de los frascos
• Número de muestras
• Intervalo de tiempo entre las muestras.
• Transporte al laboratorio.
Rotular los frascos con el nombre del paciente, sala, cama, fecha y hora de
la toma

8. Hemocultivos
• Preparación de la piel
1- Después de localizar la vena, limpiar la zona de venipunción con
alcohol al 70% durante mínimo 30 segundos.
Dejar que la zona se seque al aire antes de realizar la venipunción.
No volver a palpar la vena.

9. Procedimiento
Preparación de la piel
Adulto: Ligar el brazo, seleccionar la vena a punzar, aplicar alcohol 70 % sobre
la piel en un radio amplio. Dejar actuar. Si se vuelve a palpar la vena, realizar
de nuevo la desinfección.
Pediatría:
Desinfectar con alcohol 70%.
Técnica y zona de obtención
Es preferible punzar una vena que una arteria.
Extraer un volumen de sangre superior al que se va a inocular en el frasco.
Si se van a inocular dos frascos, realizar dos punciones de venas diferentes.

10. Procedimiento
Volumen de sangre
Respetar las indicaciones del fabricante respecto al volumen de sangre a
inocular en el frasco o botella de hemocultivo.
Inoculación de los frascos
Extraer la tapa metálica del frasco, desinfectar el tapón de goma con alcohol
70%.
Inocular la sangre suavemente para evitar la hemólisis. Agitar el frasco
suavemente por rotación a fin de evitar la coagulación de la sangre.
En el frasco para Bacterias Anaerobias, evitar introducir aire durante la
inoculación de la sangre.

11. Hemocultivos
• No cambiar de aguja cuando se introduzca la sangre en los
frascos de hemocultivos ya que el cambio de agujas no
disminuye la tasa de contaminación y sí aumenta el riesgo de
pinchazo.
• Identificar los frascos teniendo la precaución de no marcar o
colocar la etiqueta de identificación del paciente sobre el
código de barras ni tapando el fondo de los frascos. Los datos
de identificación son: el nombre completo del paciente, fecha,
número de historia clínica, hora de toma y número de
secuencia. Marcar los frascos en la habitación/box del
paciente.

12. Hemocultivos
• Orden de rellenado de los frascos:
• Si la extracción se realiza con jeringa, introducir: primero 5 ml de
sangre en el frasco de anaerobios y a continuación los 5 ml
restantes en el frasco de aerobios.
• Mezclar suavemente los frascos utilizando la técnica de inversión.
• Si no pueden ser enviados inmediatamente al laboratorio se
mantendrán a “temperatura ambiente”. El tiempo máximo que
pueden permanecer a temperatura ambiente antes de ser
introducidos en el sistema no ha sido definido con exactitud,
pero nunca debe superar las 18 h.
• Los hemocultivos nunca deben ser refrigerados

13. Procedimiento
• Número de muestras
• Sepsis, meningitis, artritis o neumonía
• 2 hemocultivos con intervalo de 30 minutos antes del tratamiento
antimicrobiano.
• Fiebre de origen desconocido (FOD): 2 hemocultivos, si son negativos a
las 24 hs, tomar dos muestras más.
• Endocarditis cuatro o seis botellas de hemocultivos con intervalo de 30
minutos.
• Transporte al laboratorio.
• Enviar de inmediato al Laboratorio para su incubación a 35 °C.
• Si no es posible, conservar a temperatura ambiente , nunca en heladera
• ( en una guardia, o a la noche, cuando está cerrado el Laboratorio )

14. Cultivo de sangre: Hemocultivo
DEFINICIONES:
Bacteriemia: presencia de microorganismos en sangre confirmada por
cultivos.
Sepsis: evidencia clínica de infección, más evidencia de una respuesta
sistémica a la infección.
Shock séptico: sepsis con hipotensión prolongada a pesar de la adecuada
reposición de líquidos.
SIRS: incluye una amplia variedad de cuadros clínicos de naturaleza
infecciosa. Debe haber dos o más de los siguientes signos y síntomas.

15. Definiciones
• SIRS ( Sindrome de respuesta inflamatoria sistémica): 2 criterios
• -Fiebre > de 38 ° C °
• -Hipotermia ( < a 36 ° C )
• -taquicardia ( > de 90 latidos por minuto )
• -taquipnea ( > a 20 respiraciones por minuto )
• -necesidad de ARM ( asistencia respiratoria mecánica )
• -Recuento de leucocitos > a 12.000 / mm3
• -Recuento de leucocitos < de 4.000 / mm3
• Sepsis: SIRS + probable infección (sospecha clínica ) o confirmada por estudios
microbiológicos.
• Sepsis severa :sepsis+ disfunción orgánica aguda, hipotensión.
• Disfunción de órganos: hipotensión , disfunción neurológica, injuria pulmonar
aguda y fallo respiratorio, oliguria y fallo renal, trombocitopenia y trastornos de la
coagulación y disfunción hepática.

16. Definiciones
• Shock séptico: sepsis +hipotensión que persiste por más de una hora después de
resucitación adecuada con fluidos.
• Tercer consenso Internacional de Sepsis y Shock séptico .
• Bacteriemia/ fungemia : presencia de bacterias / hongos en sangre y puede o no
ser clínicamente significativa.
• El aislamiento de un microorganismo a partir de hemocultivo :
• -puede ser sólo contaminación de piel o
• -presencia transitoria en sangre debido a manipulación de una mucosa.
• Ingreso de MO al torrente sanguíneo puede producirse :
• - a partir de la diseminación de un foco primario al sistema linfático o
• - por inoculación directa ( drogadictos endovenosos, endocarditis, aneurisma
micotico , fístulas arteriovenosas infectadas , etc.
• -Bacteriemia clínicamente significativa: cuando además hay fallas en las defensas
del huésped o del tratamiento médico en remover, drenar, o esterilizar el foco.

17. Definiciones
• Episodio de Bacteriemia: se considera al primer aislamiento clínicamente
significativo de un hemocultivo.
• Contaminación: aislamiento de un microorganismo en hemocultivo en un
paciente que en realidad no lo tenía en sangre. Usualmente proviene de la piel , y
en menor medida de la tapa del frasco o de desinfectantes contaminados, o de las
manos del extraccionista si no se usaron guantes estériles.
• Muestra de hemocultivo: se refiere a una punción venosa o arterial ,
independientemente del número de frascos que se llenen con la misma.
• Serie de hemocultivos: conjunto de frascos que se inoculan con más de una
punción venosa o arterial.
• Retrocultivo : cultivo de sangre obtenida a través de catéter.

18. Clasificación de Bacteriemias/fungemias
A-De acuerdo a la duración de la misma:
Continua: focos endovasculares ( endocarditis, tromboflebitis séptica,
endarteritis, fístulas arteriovenosas infectadas y también con la primera
semana de fiebre tifoidea y brucelosis ).
Intermitente: se asocia con la presencia de abscesos no drenados (
intraabdominales, hepáticos, pélvicos, perinefríticos,prostáticos etc. ) y con
otras infecciones extravasculares.
Transitoria: se debe a la manipulación de una mucosa ( extracción dentaria,
citoscopía, dilatación uretral, cateterización, endoscopía digestiva) o tejido
infectado ( absceso, forúnculo, celulitis ) o cepillado de dientes ; se resuelve
por la acción de las células fagocíticas en hígado, pulmón y bazo. También en
infecciones extravasculares como meningitis, artritis, neumonía.

19. Clasificación de Bacteriemias/fungemias
B-Según el lugar de adquisición:
-De la Comunidad o Extrahospitalaria: se producen fuera del hospital o
dentro de las 48 hs de internación.
-Nosocomial o Intrahospitalaria: se produce después de las 48 hs de
internación y por una causa diferente a la que la motivó.
Asociada a cuidados de la salud distintas a la adquisición nosocomial
procedimientos invasivos: dilatación uretral, colocación de sonda vesical,
colonoscopía, inserción de catéter venoso central o periférico, catéteres para
quimioterapia, nutrición parenteral, hemodiálisis, que desarrollan
bacteriemia como consecuencia de los mismos dentro de las 48 hs de
ingresado o estando fuera del hospital.

20. Clasificación de Bacteriemias/ fungemias
De acuerdo al número de microorganismos hallados:
Monomicrobiana: endocarditis, artritis séptica, osteomielitis , meningitis
primaria, pielonefritis, neumonía.
Se aísla una sola cepa de un microorganismo.
Polimicrobiana: asociada a foco intraabdominal, peritonitis, infecciones
necrotizantes de piel y partes blandas, o a la presencia de más de un foco
infeccioso.
Se aísla más de un tipo de microorganismo.

21. A-Obtener la misma bacteria en 2 o más muestras de sangre ( hemocultivos)
B-Obtener el mismo microorganismos en otra muestra ( Ej. LCR, artritis, etc)
C-Desarrollo microbiano temprano, 24 - 48 horas
D-Cuadro clínico compatible
E-Tipo de paciente: neonato-prematuro-neutropénico-transplantado-con
dispositivo protésico, etc.
Criterios para jerarquizar la Bacteriemia

22. Microorganismos que NUNCA son contaminantes de
hemocultivos
• Streptococus pneumoniae
• Haemophylus influenzae
• Neisseria meningitidis
• Listeria monocitógenes
• Mycobacterium tuberculosis
• Grupo HACEK
• Bacteroides spp

23. Microorganismos raramente contaminantes de hemocultivos
Staphylococcus aureus
Streptococcus pyogenes
Streptococcus agalactiae
Escherichia coli
Klebsiella pneumoniae
Pseudomonas aeruginosa
Acinetobacter spp
Enterococcus spp

24. Microorganismos casi simpre contaminantes de hemocultivos
o de difícil interpretación
• Micrococcus spp.
• Corynebacterium spp.
• Propionibacterium agnes
• Staphylococcus coagulasa negativo ( ej . Staphylococcus epidermidis)

25. FIN
• BACT/ALERT® 3D