El documento describe los conceptos de bacteremia, septicemia y hemocultivo. La bacteremia se define como la presencia de bacterias en la sangre, pudiendo ser transitoria, intermitente o continua. La septicemia implica la diseminación de bacterias desde focos infectados a través del sistema circulatorio, causando metástasis sépticas. Un hemocultivo busca aislar bacterias de la sangre para su identificación, siendo importante la técnica de extracción y cultivo para lograr un resultado preciso.
1. Bacteremia y septisemia
A. Vásquez.
a.
b.
c.
Bacteremia: presencia de bacterias en la sangre.
tipos:
Transitoria: remociòn de abcesos o tejidos infectados ejem.
caterismo de vias urinarias.
Intermitente: paso recurrente de bacterias a la sangrel, los
hemocultivos seriados son positivos en forma intermitente.
ejem. abcesos.
Continua: todos los hemocultivos son positivos. ejem. fiebre
tifoidea.
Septicemia: “la infecciòn es por diferentes bacterias que actùan en
un organismo, con pso de ellos desde focos necroticos
infectados a la sangre, a traves del sistema circulatorio, que
origina metastasis septicas y manifestaciones clinicas generales
“.
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2. Características Generales de un Hemocultivo
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Incidencia : 5 a 30 casos / 1000 pacientes
cualquier edad
asociada a enfermedades graves
bacteremia complicaciòn de inf. localizadas
pacientes hospitalizados 14 a 25 %
evitar la contaminación en la extracciòn y los medios.
se cultiva 1 ml de sangre x cada 10 ml de caldo de cultivo.
caracteristicas de los frascos con crecimiento
medios que se utilizan
identificaciòn de agentes causales
análisis microscópicos.
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Causas de septicemia:
Infecciones respiratorias: Streptococcus neumoniae,
Streptococcus piogenes, Klebsiella neumoniae, Staphylococcus
aureus, Haemophylus influenzae.
Infecciones Genitourinarias: Escherichia coli, Staphylococcus
aureus, proteus.
Infecciones o abcesos de la piel: Staphylococcus aureus,
Streptococcus piogenes.
Bacterias más comunes asociadas a septicemia:
a.
Bacilos gram - : Salmonella tiphy, Escherichia coli,
Pseudomonas aeruginosa.
b. Cocos gram + : E. epidermidis, S. aureus, S. neumoniae.
c. Bacteroides: son gram – que estan en tracto gastrointestinal.
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5. Objetivos de un
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3.
4.
Hemocultivo:
Describir las normas de recogida de muestras
de sangre
Establecer volumen de sangre, número de
hemocultivos y medios de cultivo.
Definir la metodologìa para su procedimiento
Establecer una guia de interpretaciòn adecuada
de los resultados.
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Indicaciones para extraer un hemocultivo:
1. fiebre alta
2. Estado de Shock
3. Inf. localizadas que pueden complicarse: pielonefritis,
neumonìa.
4. Leucopenia, leucocitosis o trombocitopenia.
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Factores a tener en cuenta en un
hemocultivo:
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6.
Momento de la toma: pico febril
Momento de la hx natural de la enfermedad
Selecciòn de medios de cultivo: caldo tioglicolato, Agares.
Interrogar si toma antimicrobianos
Cuidados de asepsia
Numero de muestras en 24 hrs. ej. Endocardititis bacteriana
requiere 8 a 10 muestras en 24-48 hrs.
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7. • Métodos para el estudio microbiológico:
1. Cuantitativos: número de bacterias x ml de sangre
cultivadas. descrita por Shotmueller.
2. Semicuantitativos: x recuento de colonias aisladas, se sigue
un procedimiento de lisis centrifugaciòn.
3. Cualitativos: x cultivo de sangre en medio liquido o bifasico.
• HEMOCULTIVO:
• Extracción de sangre:
Adulto: 8 a 10 ml de sangre, jeringa esteril de 20 ml, aguja No 14.
Niño: 2 a 5 ml
Lactante a Rn: 1- 2 ml
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El uso de anticoagulantes ( heparina, citrato)
Caldos a utilizar: TSC ( caldo de tripticasa soya) o caldo de tioglicolato.
volumen de muestra 5 ml .
Uso de frascos esteriles ( 20 minutos x 120 C
Microorganismos considerados contaminantes: Staphylococcus coagulasa
negativo, Corlynebacterium sp y otros.
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8. Extracción:
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5.
Elecciòn del punto de venopunciòn y asepsia de la piel.
Extracciòn de la sangre: venas del antebrazo ( no arterias) sin
anticoagulante. adultos: 10 ml y niños-Rn 1-5 ml.
Diluciòn y volumen de sangre: 1:10 , a partes iguales en medio
aerobio y anaerobio.
Número de hemocultivos y medios de cultivo: 2-3 muestras en
24 hrs. Positividad 1,2,3 corresponde a 80.90 y 99 %.
Etiquetado de los frascos y transporte: nombre completo,
numero de cama (bis), fecha y hora de extracciòn, servicio,
nombre del medico, diagnostico y tx previo o actual.
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TECNICA DE LABORATORIO:
Trabajar area del mechero
colocar 5 ml de sangre en TSC y 1 ml en tubo tioglicolato
Inocular muestra a 36 C x 15 días ( examinar diariamente)
Posterior a las 24 hrs leer turbidez
Ver caracteristicas: hemolisis, formaciòn de gas, colonias visibles,
formaciòn de pelicula, coagulo gelatinoso ete.
Hacer subcultivo.
Examen microscopico:
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Si observa en frotis bacilos o cocobacilos gram – inocular adicionalmente
una caja de agar Mc Conkey.
Si observa cocos gram + , diplococos aplicar discos de optoquin y
bacitracina )
Examinar medio de tioglicolato. hacer frotis y gram.
Si hay bacterias hacer subcultivo.
Reinocular el hemocultivo
Si no hay crecimiento en las placas a las 48 hrs descartalas y a los 15
dias repetir todo el procedimiento.
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Observar SIGNOS DE PROLIFERACION:
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Deposito floculento blanquesino sobre capa de sangre
Turbidez uniforme del caldo
Hemolisis de globulos rojos sedimentado
Coagulaciòn del caldo por enzimas que produce la bacteria
Formaciòn de pelicula superficial por bacterias
formaciòn de gas
granulos blancos en la superficie
El subcultivo hacer en 3 agares:
a.
b.
c.
d.
Agar chocolate
Agar Mc Conkey
Agar sangre
Caldo de tioglicolato
procedimiento: colocar dos gotitas en c/u de los medios, tapar el area del mechero, hacer
metodo de estrias, luego rotular e incubar en atmosfera capnofila.
Si no hay crecimiento en los caldos, hacer subcultivos en agar sangre, agar chocolate a 1824 hrs de incubaciòn al finalizar los 7 dias ,se toman varias gostas de hnemocultivo
bien mezclado a tubos de tioglicolato incubar y observar en 3 dias ( si no crece se
reporta), no se aisla bacterias, si hubo crecimiento hacer frotis y resiembra para
reporte final.
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