Manual de fisiología.

PRÁCTICA No.1 ANATOMÍA MACROSÓPICA DE LOS SISTEMAS DE ÓRGANOS (Disección de la rata) OBJETIVO. En esta práctica se persigue familiarizar al alumno con el manejo y tratamiento de la rata albina, así como emplear técnicas elementales de disección. Se observará la anatomía macroscópica de los principales sistemas de órganos. TÉCNICA Conseguir dos ratas albinas (de preferencia que sean machos). Colocar en dos frascos grandes una capa de algodón con cloroformo. Colocar dentro de los frascos a las ratas, una en cada frasco y cerrarlos, esperar e 10 a 15 min. A que la rata muera. Una vez muertas las ratas, se sacan de los frascos y se colocan boca arriba en tablas de madera, una rata en cada tabla. (De las extremidades se sujetan las ratas con unos clavos). Se procede a realizar la disección de la cavidad torácica con ayuda de un bisturí, con mucho cuidado para no perforar ningún órgano. La piel se despliega hacia los lados para una mayor visibilidad, sujetándola a la tabla con los clavos. Se hace la observación y la identificación de los órganos. OBSERVACIONES CONCLUSIONES CUESTIONARIO ¿Cuáles son los órganos que integran el aparato digestivo? ¿Qué órganos del aparato digestivo secretan enzimas? ¿Qué órganos se encuentran dentro de la cavidad torácica? ¿Qué metodología sugieres para dormir a la rata poniendo en práctica la ética que sugieren los principios bióticos de los animales? ¿Cuál fue tu sentir al diseccionar el animal del laboratorio? REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 2 PASO POLARIZADO DE LA GLUCOSA A TRAVÉS DE LA PARED INTESTINAL OBJETIVO. Que el alumno comprenda el fenómeno de la digestión. Así como estudie el proceso fisiológico de absorción de la glucosa a través de la pared intestinal. FUNDAMENTO. Las moléculas digeridas de los alimentos, el agua y los minerales provenientes de la dieta se absorben en la parte superior del intestino delgado. Los materiales absorbidos atraviesan la mucosa intestinal y pasan al torrente sanguíneo (sangre), que los distribuyen a todos los rincones de nuestro cuerpo para almacenarlos o para que pasen a otras modificaciones bioquímicas, este proceso varía dependiendo de los diferentes tipos de nutrientes. Carbohidratos. La dieta normal de las sociedades industrializadas modernas está compuesta por hidratos de carbono (carbohidratos), proteínas y grasas, en una proporción de 2:1:1. Sólo son tres las fuentes principales de carbohidratos de la dieta humana normal: sacarosa (30%), disacárido, conocido habitualmente como azúcar de caña; lactosa (10%), el disacárido de la leche, y almidones (60%), que son polisacáridos presentes en casi todos los alimentos no animales, sobre todo en los granos. Algunas de nuestras comidas cotidianas, como el pan, las papas, pasteles, dulces, el arroz, espaguetis, las frutas y las verduras, contienen principalmente carbohidratos, muchas de ellas contienen además almidón, el cual es digerible, y fibra, que no lo es. Los carbohidratos digeribles se descomponen en moléculas más sencillas por la acción de la saliva, del jugo pancreático y de la mucosa intestinal. El almidón se digiere en dos etapas: primero, una enzima de la saliva y del jugo pancreático lo descompone en moléculas de maltosa, luego, la maltasa, una enzima de la mucosa del intestino delgado, divide la maltosa en moléculas de glucosa que pueden absorberse en la sangre. La glucosa viaja por el torrente sanguíneo al hígado, en donde se almacena o es utilizado como fuente de energía para las distintas funciones del cuerpo. El azúcar común (sacarosa) es otro carbohidrato que se debe digerir para que sea útil, una enzima en la mucosa del intestino delgado digiere este azúcar y lo convierte en glucosa y fructosa, cada una de las cuales puede absorberse en el intestino delgado y pasar a la sangre. La leche contiene lactosa, otro tipo de azúcar que se transforma en moléculas fáciles de absorber mediante la acción de una enzima llamada lactasa, que de la misma manera se encuentra en la mucosa del intestino delgado. MATERIAL Caja Petri Bisturí Tubos de ensayo Termómetro Alambre Tubo de vidrio Tapones de pipeta Parrilla eléctrica Jeringa MATERIAL BIOLÓGICO Intestinos de pollo REACTIVOS Solución de Ringer Glucosa al 5% Reactivos de Fehling A y B o Benedict TÉCNICA Se cortan dos porciones del intestino de 4 cm de longitud y se colocan en una caja Petri con solución de Ringer por unos minutos a 37° C. Posteriormente se toma una porción de intestino y se introduce un alambre a través de su luz (interior del intestino), y se atora el alambre en la parte de abajo del intestino e invertido mediante tracción y se retira el alambre. Después se anuda un extremo de cada intestino (intestino con la mucosa normal e intestino con la mucosa invertida) de modo que quede un saco de intestino y se verifica que no haya fuga. Enseguida se introducen los tubos de vidrio dentro de cada uno de los intestinos y se anudan de forma que no se resbalen, se colocan cada uno dentro de un tubo de ensayo y se sujetan con unos tapones. Se llena la cámara del intestino con solución de glucosa al 5% en volumen suficiente para que el intestino quede sumergido por completo (dentro del tubo de ensayo). Se llena la luz intestinal (interior del intestino) con la solución de Ringer a través del tubo de vidrio con ayuda de una jeringa hasta observar la columna de solución a nivel del tapón de plástico. (Para cada tubo). Se dejan reposar las cámaras por 30 minutos, transcurrido el tiempo se toma una alícuota de luz intestinal, con ayuda de una jeringa. Se realizan los ensayos para la determinación de glucosa, agregando a cada uno de los tubos 0.5 mL de reactivo de Fehling A, B o Benedict; lea la concentración de glucosa en la muestra obtenida y regístrela como contracción basal. Posteriormente se colocan las cámaras de intestino en un baño maría a 37° C por 30 minutos, al finalizar el tiempo de incubación se realiza nuevamente la determinación de glucosa tomando una alícuota a cada tubo. Lea la concentración de glucosa en la muestra obtenida y repórtela como concentración final en ambos tubos. OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES CUESTIONARIO Describa el mecanismo de transporte de la glucosa para su absorción a nivel de intestino delgado. Describa el estímulo de secreción de la insulina. ¿Cuál es la acción de la insulina a nivel del hígado? ¿Cómo se transporta la glucosa por la membrana celular? ¿Qué necesitan para absorberse la maltosa, la sacarosa, y la lactosa, y en qué se desdoblan cada una de ellas? REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 3 PRESIÓN ARTERIAL Y FRECUENCIA CARDIACA OBJETIVO. Comprender la importancia de determinar la presión arterial en el organismo, así como la frecuencia cardiaca en el ser humano. FUNDAMENTO MATERIAL Estetoscopio Baumanómetro Cronómetro TÉCNICA La presión arterial se medirá por las técnicas de auscultación y de palpación. La palpación cardiaca, por palpación del tórax al nivel del corazón. La frecuencia del pulso se medirá por palpación de la arteria radial de la muñeca o de la carótida en el cuello. Nos podemos formar ideas de las presiones venosas observando a qué altura (por encima o por debajo del corazón) se colapsan las venas superficiales del dorso de la mano. El sujeto se acuesta con ambos brazos extendidos a lo largo del cuerpo de modo que la bolsa de aire en el manguito, quede sobre la cara anterior del brazo, como 3 cm., del pliegue del codo. El manguito debe apretar bien. Se busca el pulso radial cerca de la base del pulgar, en la cara anterior de la muñeca. Mientras se palpa el pulso radial, se infla rápidamente el manguito hasta que la presión del manómetro sea de 200 mm. La válvula del bulbo de hule se abre ligeramente de modo que la presión disminuya lentamente, se sigue palpando el pulso y se observa el manómetro mientras sale aire del manguito. Se anota la presión en la cual se vuelve a sentir el pulso. Se deja que la presión siga avanzando. Observando los cambios en el pulso radial. La presión del manguito se lleva ahora unos mm, por debajo de la presión en que sintió el pulso radial por primera vez. Se coloca la cápsula del estetoscopio sobre la piel en el pliegue del codo, sobre la arteria humeral, describiendo los sonidos recogidos por el estetoscopio. Se vacía el manguito y se deja descansar al sujeto por unos minutos. Se palpa la arteria radial y se eleva la presión hasta que el pulso radial desaparezca. Se coloca la cápsula del estetoscopio sobre la piel que cubre la arteria humeral y se deja que el aire salga lentamente del manguito. Se anotan las presiones en las cuales se siente por primera vez el pulso radial y se oye el primer sonido por el estetoscopio, se deja que siga saliendo el aire, el sonido se vuelve cada vez más intenso al bajar la presión y bruscamente adquiere un tono sordo y desaparece. De ordinario, la desaparición del sonido y su cambio de calidad (ruido sordo), son casi simultáneos. Las determinaciones, se realizan en posición sentado, parado, acostado y después que el sujeto sale a correr, dando dos vueltas a la cancha, anotando los resultados en un cuadro. OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES CUESTIONARIO ¿Qué significa PA y TA? ¿Qué nombre recibe el valor máximo de la Presión Arterial? ¿Qué nombre recibe el valor mínimo de la Presión Arterial? ¿Cómo se define la presión de pulso? En términos de Presión Arterial, define la siguiente ecuación P = T/r REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 4 ENZIMAS DIGESTIVAS OBJETIVO. El alumno conocerá que órgano posee la mayor cantidad de enzimas digestivas. FUNDAMENTO MATERIAL Pipetas Pasteur Mortero pequeño con pistilo Vaso de precipitado de 100 mL Vaso de precipitado de 250 mL Tubos de ensaye Pipetas graduadas de 1 mL Gradilla Parrilla eléctrica Baño maría Centrífuga Algodón Termómetro MATERIAL BIOLÓGICO Aparato digestivo de un pollo REACTIVOS Almidón Reactivo de Benedict Solución salina Agua destilada Amortiguador fosfato a pH 7 Solución patrón de invertasa al 0.5% Solución de almidón o sacarosa al 5% TÉCNICA PREPARACIÓN DE EXTRACTOS DEL TRACTO DIGESTIVO DEL POLLO Triturar por separado cada uno de estos segmentos y eliminar el contenido alimenticio, lavar vigorosamente cada segmento con solución salina. (Esófago, páncreas, intestino delgado, intestino grueso, estómago, duodeno). Añadir a cada segmento 2 mL de agua destilada para el proceso de trituración. Dejar sedimentar los restos celulares a 200 rpm durante 5 min y transferir el extracto acuoso por medio de una pipeta Pasteur a un tubo de ensayo. Una vez que se hallan preparado los 6 extractos, añadir agua destilada a cada uno hasta llevar un volumen de 4 mL. Para preparar los extractos desnaturalizados, tomar 2 mL de cada uno de los extractos y colocarlos en un tubo distinto. Mantenerlos en agua a ebullición durante 10 minutos. Los 2 mL restantes de tubo inicial (preparado en el inciso 3) sean los extractos activos. Al finalizar el procedimiento debe contarse con 6 extractos activos y 6 extractos inactivos. PRUEBAS ENZIMÁTICAS Preparar las mezclas de reacción activas y desnaturalizadas: Sustrato (solución de almidón o sacarosa) 0.5 mL. Amortiguador fosfato 1.0 mL. Extracto enzimático (activo o desnaturalizado) 0.5 mL. En un tubo por separado se prepara el patrón de comparación que en lugar del extracto enzimático, contenga 0.5 mL de solución de invertasa (si el sustrato fue sacarosa), 0.5 mL de una dilución de saliva 1:3 (si el sustrato fue almidón). Colocar la gradilla que contiene las mezclas preparadas en un baño de agua a 37° C, durante 30 min. Transferir a un tubo de ensaye distinto 0.5 mL de la mezcla de incubación y añadir 0.5 mL del reactivo de Benedict, colocar los tubos en un baño hirviendo durante 5 min. OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES CUESTIONARIO Explique el proceso de la digestión. ¿Cuáles son las enzimas que participan en la degradación de los alimentos? ¿Sobre qué sustrato actúan las enzimas Tripsina, Quimotripsina y Esterasa? ¿Sobre qué sustrato actúa la lipasa y cuáles son sus productos? REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 5 PUNCIÓN VENOSA Y MANEJO DE MUESTRA SANGUÍNEA OBJETIVO. Adquirir la destreza en la venopunción y manejo de las muestras sanguíneas. FUNDAMENTO MATERIAL Tubos de ensaye Ligaduras o torniquete Gradilla para tubos de ensaye Recipientes para RPBI´s Jeringa de 5 mL Toalla blanca Guantes Torundas Alcohol EQUIPO Centrífuga de laboratorio MATERIAL BIOLÓGICO De 5 a 8 mL de sangre completa incoagulable Anticoagulante TÉCNICA Identificamos al paciente, nos cercioramos que esté consciente, se le pregunta su nombre y su fecha de nacimiento. No hay que extraer muestra alguna sin identificar adecuadamente al paciente. Si se solicita una muestra en ayunas, debe verificarse que efectivamente el paciente no ha ingerido alimentos, el paciente debe estar en reposo antes de la toma de muestra, pues el ejercicio afecta los resultados. Se informa al paciente sobre el procedimiento al que va a ser sometido. El paciente debe estar tranquilo; eliminando la tensión en él. Colocar al paciente adecuadamente, para tener acceso fácil a la fosa antecubital y que el paciente cuente con un apoyo adecuado en caso de síncope. Preparar el material que utilizamos en la extracción: la toalla blanca, el torniquete o ligadura, los objetos que se empleen para limpiar la piel (alcohol, betadine), las jeringas o la aguja estéril. Se solicita al paciente que cierre el puño para que las venas resulten más palpables y, en caso de ser necesario, que cierre y abra su puño en repetidas ocasiones para bombear con más fuerza la sangre y así se puedan palpar las venas. Para seleccionar la vena, el brazo debe extenderse en línea recta desde el hombro hasta la muñeca. Buscamos con palpaciones la vena antecubital. También pueden utilizarse las venas de la muñeca, el tobillo y el dorso de la mano. Limpiar la zona de la venopunción con una torunda humedecida con alcohol o Betadine. Se aplica un torniquete varios centímetros por encima de la zona de punción, con un nudo que se suelte fácilmente, y se pide nuevamente al paciente que cierre el puño para que las venas sean más palpable. No hay que dejar nunca el torniquete más de un minuto. Realizamos la venopunción siguiendo los siguientes pasos: Penetrar la piel con la aguja de la jeringa formando un ángulo aproximadamente de 15° con el brazo y con el bisel hacia arriba. Introducir la aguja con suavidad, pero con la suficiente rapidez para que el paciente no presente incomodidad. Jalamos hacia atrás el émbolo una vez que la sangre haya aparecido en el interior del barril, lentamente y uniforme a medida que la sangre va fluyendo hacia el interior. No debe realizarse este movimiento con excesiva rapidez, ya que podría hemolizarse la muestra o colapsarse la vena. Ya extraída la muestra indicamos al paciente que relaje el puño y deje de bombear con la mano. Colocamos con mucho cuidado en el lugar de la punción una torunda de algodón y extraemos la aguja y se ejerce presión sobre la zona. Se le dice al paciente que mantenga la presión y flexione el brazo. La sangre de la jeringa se transfiere, con una presión suave a los tubos adecuados, los que contengan anticoagulante deben taparse y mezclarse por inversión. Se elimina el material contaminado: agujas, jeringas, algodones, etc., en los recipientes indicados para cada uno de ellos. OBSERVACIONES CONCLUSIONES CUESTIONARIO Define el término Punción Venosa. ¿Cuáles suelen ser las venas de mayor elección para la Punción Venosa? Menciona las recomendaciones generales para llevar a cabo una Punción Venosa. ¿Qué función tiene el anticoagulante en la muestra sanguínea? ¿Cuál es la forma correcta de desecha los residuos Biológico-Infecciosos? REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 6 FISIOLOGÍA DEL PULMÓN OBJETIVO. Identificar la morfología del pulmón y por medio de ésta, comprender sus funciones. FUNDAMENTO MATERIAL Charola de peltre Estuche de disección Guantes Franela o toalla Portaobjetos Cubreobjetos EQUIPO Microscopio MATERIAL BIOLÓGICO Pulmón de mamífero (porcino o bovino) cinco días antes para su manipulación. Pulmón fresco (o en refrigeración). Pulmón congelado. REACTIVOS Hematoxilina de Harris. TÉCNICA El pulmón ya lavado y fijado se coloca en la charola. Identificar las membranas que fijan y protegen el pulmón. Se inicia los cortes transversal y horizontal. Mediante una lupa identificar y analizar la distribución interna (los bronquios, bronquiolos y alvéolos pulmonares). Identificar la posición correcta en: Columna vertebral Cavidad pulmonar Emergencia de nervios, vasos sanguíneos, venas y arterias. Hacer una impronta de pulmones, tráquea y vena pulmonar y teñir con hematoxilina de Harris la pleura (dejar el colorante por 5 minutos, lavar con agua destilada, sumergir un minuto en alcohol ácido y enjuagar con agua corriente). Observar al microscopio. OBSERVACIONES CONCLUSIONES CUESTIONARIO ¿En qué cavidad se aloja el pulmón? ¿Cuáles son las cubiertas que protegen el pulmón? ¿Qué forma tienen y cuáles son sus límites superior e inferior? ¿Qué es un alveolo pulmonar? Función primordial del pulmón REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 7 ANATOMÍA Y FISIOLOGÍA DEL OJO OBJETIVO. Que el alumno estudie y comprenda la anatomía y fisiología del ojo, reconocerá e identificará las membranas concéntricas, el sistema de refringencia y los diferentes lentes, describirán la conformación de las cámaras del ojo, describirá la papila y la pupila y finalmente describirá las diferentes partes en un plano coronal. FUNDAMENTO MATERIAL Bisturí Charola de peltre Tijeras rectas Pinzas de disección Franela MATERIAL BIOLÓGICO Ojo de cerdo TÉCNICA Se coloca el ojo en una charola y se separan los tejidos hasta dejarlo limpio. Realizar posteriormente una incisión con el bisturí a nivel del ecuador abrir y retirar el cristalino y el humor vítreo. Lavar el ojo con agua y observar la ora serrata, el iris, la pupila y la córnea. Observar en su parte posterior la papila y la mácula. Diferenciar los distintos medios de refracción: córnea, humor acuoso, humor vítreo y cristalino. Describir las distintas membranas envolventes. OBSERVACIONES CONCLUSIONES CUESTIONARIO ¿Cuáles son las membranas envolventes en orden de afuera hacia adentro? Definición de la pupila ¿Dónde se produce el humor acuoso? ¿Cuáles son las estructuras donde radica la visión a color y qué función tiene el cristalino? ¿Cómo se denomina el conducto por donde se drena el humor acuoso? REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 8 PRÁCTICA DE EQUILIBRIO OBJETIVO. Entender la importancia de la función vestibular. Distinguir entre aceleración angular y aceleración lineal. Identificar el nistagmo y entender cómo se produce. FUNDAMENTO MATERIAL Cronómetro Pintarrón TÉCNICA Se le pide a un sujeto que gire su propio cuerpo hacia la derecha a una velocidad constante de alrededor de 20 giros en 30 segundos. Y observe el nistagmo que se desencadena. Indique se detenga el giro y observe de nuevo el nistagmo. Se le pide que repita el mismo procedimiento pero que ahora gire sobre el lado izquierdo y repita los pasos 1 y 2. Indique que repita el mismo procedimiento pero ahora con los ojos cerrados mientras realiza los giros y que los abra cuando el movimiento cese para observar la dirección del nistagmo. Señale que repita el paso 4 pero ahora con gira hacia la izquierda y obtenga la información que se le pide. Como complemento a esta prueba, se pide de nuevo que gire hacia la derecha y al terminar se indica al sujeto que camine sobre una línea pintada en el piso. Observe hacia qué lado se desvía el sujeto. Pídale que gire ahora hacia la izquierda y al terminar que camine sobre la línea pintada en el piso. Observe hacia qué lado se desvía el sujeto. Solicítele que gire de nuevo hacia la derecha y que al terminar dibuje una línea recta en el pizarrón. Observe la dirección en la que dibuja la línea en el pizarrón. Indique que gire sobre la izquierda y que al terminar dibuje otra línea en el pizarrón. Observe la dirección en que dibuja la línea en el pizarrón. OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES CUESTIONARIO Función de los canales semicirculares. Definición de endolinfa. Definición de membrana otolítica. Diagrama de la Mácula del utrículo. ¿Cuál es la función de la Mácula del sáculo? REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 9 SENTIDO DEL GUSTO OBJETIVO. Se localizarán las partes sensibles de la lengua a los distintos sabores. FUNDAMENTO MATERIAL 1 Lupa 1 Piseta con agua destilada Gasas simples 4 Goteros simples Torundas de algodón REACTIVOS Solución de sacarosa al 10% NaCl al 20% Ácido acético al 1% Sulfato de quinina al 10% TÉCNICA Se pide al sujeto que saque la lengua, con una lupa se identifican las zonas ricas en papilas y botones gustativos. Se localizan también las papilas calciformes y las fungiformes. Se lava la lengua del sujeto y se seca con un pedazo de gasa. Se humedece la torunda de algodón con algunas gotas de la solución de sacarosa. Se aplica la torunda a la punta de la lengua y se dice que anote el sabor percibido. Se lava y se seca la lengua. Se estudia de la misma manera, la punta de la lengua con otras torundas humedecidas con las otras soluciones. En cada caso se emplea una nueva torunda y se lava y se seca la lengua cuidadosamente entrada prueba. Se repite la maniobra aplicando las torundas mojadas en soluciones problema a los lados, el tercio anterior, el tercio medio y el tercio posterior del órgano. La aplicación debe ser muy ligera, evitando que las soluciones difundan en una zona amplia, se anotan los resultados graduando la intensidad de la sensación gustativa como: Intensa(++++) Moderada (+++) Leve(++) Escasa(+) Nula(o) OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 10 FUNCIONES REFLEJAS DEL SISTEMA NERVIOSO OBJETIVO. Un mecanismo reflejo está constituido por un órgano receptor, un órgano efector, y, algún tipo de red de comunicación entre ambos. La acción refleja se inicia por un estímulo de entrada y tiene por resultado una respuesta de salida. La actividad refleja abarca desde el sencillo reflejo axónico hasta los reflejos complejos que suponen intervención cerebral. FUNDAMENTO MATERIAL 1 Abatelenguas 1 Martillo precursor 1 Lámpara de mano 1 Tarjeta de cartón para tapar los ojos 1 Silla de escritorio giratoria sin ruedas TÉCNICA Reflejo axónico. Se raspa la piel del antebrazo firmemente con un abate lenguas y se observa la respuesta. Se describe el aspecto inicial de la zona estimulada y el que adquiere más tarde. Se anota el tiempo necesario para que aparezca la zona de eritema y la anchura (mm), a los 5, 10 y 15 min., del estímulo. Reflejos tendinosos. Las inserciones tendinosas de los músculos receptores especiales, que responden a la distensión y tienen a su cargo el envío de información del sistema nervioso central cerca de la posición de un músculo o un miembro. Cuando estos receptores tendinosos son estimulados por una distensión rápida y brusca, mandan impulsos a la médula espinal y a través de una sinapsis, a la neurona motora anterior que inerva el músculo. Esta manda impulsos al músculo y se produce una rápida sacudida. Para buscar el reflejo rotuliano, el sujeto se sienta en posición cómoda y cruza las piernas. La pierna superior debe estar relajada. Por palpación, se localiza el tendón rotuliano y se da el consabido golpe seco con el martillo de caucho. La respuesta adecuada es la contracción del cuádriceps que produce extensión de la pierna. Para buscar el reflejo del tendón de Aquiles, se pide al sujeto que se ponga de rodillas sobre una silla, dejando colgar los pies por fuera sin contracción de los músculos gemelos y del soleo, que produce extensión del pie. Para el reflejo del bíceps, el sujeto flexiona su antebrazo noventa grados sobre el brazo, mientras el examinador soporta el antebrazo. El examinador busca el tendón del bíceps con el pulgar de la mano que sostiene el antebrazo, se deja el pulgar sobre el tendón, y el golpe del martillo se da sobre el pulgar del examinador. La respuesta apropiada es la contracción del bíceps y la reflexión del antebrazo. Para los reflejos radial y cubital, se golpean los tendones insertados sobre los extremos inferiores de dichos huesos, inmediatamente arriba de la muñeca. El examinador también detiene el brazo del sujeto. La respuesta adecuada para el reflejo cubital es la propagación de la mano, y para el radial, la reflexión del antebrazo. Reflejos oculares. En este caso, el sujeto ve acercarse rápidamente un objeto y automáticamente cierra los párpados, para proteger los ojos. Se pasa rápidamente una mano frente a la cara del sujeto y se observa la respuesta. No deben tocarse los ojos y de ser posible no deben producirse corrientes de aire, que podrían dar origen a reflejos conjuntivales o cornéales. Reflejos vestibulares. El utrículo, con sus otolitos, manda constantemente impulsos a la parte integradora del sistema nervioso para informar al cerebro acerca de la orientación de la cabeza en el espacio. Puesto que la orientación de la cabeza y la del cuerpo o son obligatoriamente iguales, el cerebro recibe impulsos propioceptores de los músculos del cuello y del tronco. Esta información es analizada junto con la que viene del utrículo y parten hacia los músculos, las órdenes apropiadas para ajustar su contracción de modo de mantener el cuerpo en posición normal. También puede colaborar a este resultado la información visual procedente de la retina, pero esto no es indispensable para orientación en el espacio. Los conductos semicirculares, están junto con el utrículo sin embargo, las células ciliadas en estos órganos, sólo responden a aceleraciones y no a la posición estática. De esta suerte, el organismo conoce no sólo su orientación en el espacio, sino también si existe una aceleración positiva o negativa. La percepción visual es la única fuente de información acerca de la velocidad, o sea, para saber si el cuerpo se mueve a una velocidad constante, de cero km/h o a una velocidad constante de 1000 km/h. Pruebas de equilibrio y orientación en el espacio. Puede estudiarse, el equilibrio estático, diciendo que se mantenga de pie, juntando los talones y extendiendo los brazos. Se observan las oscilaciones del cuerpo y los movimientos de corrección que se necesitan para mantener el equilibrio. Primero s hace la prueba, con los ojos abiertos y después con los ojos cerrados. Luego se le pide al sujeto, que se mantenga de pie, y, después en el otro. Esta prueba también se realiza con los ojos abiertos y cerrados después, anotando las observaciones. Conductos semicirculares. El sujeto se sienta en una silla giratoria de oficina, sin ruedas. Varios miembros del grupo, deben encontrarse presentes, para que no se lastimen en caso de caer la silla. Sentado, sin tocar el piso con los pies, inclina la cabeza 30 grados hacia adelante. Se hace girar rápidamente la silla (una vuelta por segundo), hasta completar diez vueltas y se para bruscamente, se observa el movimiento de los ojos. Se anota la dirección del giro de la silla, y la dirección del componente rápido de los movimientos oculares. Se repite el experimento, diciendo al sujeto que flexione la cabeza sobre un hombro, a un ángulo de unos 90 grados. Se anotan también las observaciones. Se repite otra vez, pero la cabeza ahora se echa hacia atrás, hasta formar un ángulo de 60 grados con el cuerpo. Se anotan las observaciones. Se escoge otro sujeto y se repiten los ejercicios. Esta vez, inmediatamente después de cada periodo experimental, se pide al sujeto que se levante y camine. Se describe la actitud y marcha del sujeto. Se pide al voluntario que describa las sensaciones que experimenta al intentar caminar después de la rotación. OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 11 FISIOLOGÍA DEL CEREBRO OBJETIVO. Estudiar la fisiología del cerebro así como cada uno de los componentes y sus funciones. Identificar la morfología del cerebro y por medio de esta aprender y comprender sus funciones. FUNDAMENTO MATERIAL 1 Bisturí 1 Tabla de madera 1 Lupa 1 Equipo de disección 1 Franela MATERIAL BIOLÓGICO Cerebro de cerdo TÉCNICA Un día antes se lava el cerebro con formol. Identificar los lóbulos, hemisferios, circunvoluciones, cisuras, fisuras y cerebelo. Efectuar un corte sagital para separar los hemisferios, identificar cuerpo calloso, lóbulo de la ínsula, trígono y ventrículos. Realizar un corte longitudinal a un hemisferio y un corte coronal al otro. Identificar estructuras observadas. OBSERVACIONES CONCLUSIONES CUESTIONARIO ¿Cuáles son los huesos del cráneo? ¿Cuáles son las cubiertas o capas del sistema nervioso? ¿Cuántos lóbulos tiene el cerebro y cuáles son? ¿Cuántos y cuáles son los ventrículos cerebrales? Escriba una función principal de cada uno de los lóbulos cerebrales. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 12 FISIOLOGÍA DEL CORAZÓN OBJETIVO. Estudiar la fisiología del corazón así como cada uno de los componentes y sus funciones. Identificar la morfología del corazón y por medio de esta comprender sus funciones. FUNDAMENTO MATERIAL 1 bisturí 1 tabla de madera 1 Lupa 1 Equipo de disección 1 Franela MATERIAL BIOLÓGICO Corazón de cerdo TÉCNICA 1.Un día antes se lava el corazón en formol. 2.Identificar las membranas que fijan y protegen al corazón. 3.Se indican los cortes transversal y longitudinal. 4.Mediante una lupa identificar y analizar la distribución interna. 5.Identificar la posición correcta. 6.Identificar las estructuras observadas OBSERVACIONES CONCLUSIONES CUESTIONARIO 1.¿Cuáles son las cubiertas o capas que recubren al corazón? 2.¿Cuántos y cuáles son las aurículas y ventrículos del corazón? 3.¿Cuántas y cuáles son las válvulas del corazón y en dónde se localizan? 4.¿Hacia dónde desembocan su riego sanguíneo el llamado corazón derecho e izquierdo? 5.Escriba una función principal de cada uno de las cámaras del corazón. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS PRÁCTICA No. 13 VALORACIÓN NUTRIMENTAL MEDIANTE ANTROPOMETRÍA OBJETIVO. El alumno adquirirá destreza para realizar valoración nutricional utilizando métodos antropométricos disponibles. FUNDAMENTO. MATERIAL 1 Cinta métrica 1 Báscula 1 Plicómetro TÉCNICA Revise una valoración nutricional de su compañero utilizando los métodos antropométricos disponibles; para ello obtenga los siguientes valores: Peso Estatura Circunferencia del brazo. Marque el punto por medio de bíceps flexionado y a este nivel, con los bíceps relajados, obtenga la circunferencia con una cinta métrica. Medición de los pliegues cutáneos. Para realizarla utilice el plicómetro de la siguiente manera: Marque con un lápiz graso un punto a medir. Pellizque la piel en el sitio señalado entre su dedo pulgar e índice. Aplique los dos brazos del plicómetro al pliegue cutáneo de manera que la marca del lápiz graso quede a la mitad. Quite su pulgar de la manivela del plicómetro, de manera que éste pellizque directamente la piel y haga de inmediato la lectura de valores que marca la escala graduada. Repita los pasos b), c) y d) tres veces y promedie los valores obtenidos. Las mediciones se realizan en los siguientes pliegues: Tricipital. A mitad de la distancia entre el codo y el hombro con el brazo extendido y el plicómetro en posición horizontal. Bicipital. En el punto medio del bíceps flexionado, pero la medición se hace con el bíceps relajado y en posición perpendicular al cuerpo y el plicómetro horizontal. Subescapular. Inmediatamente abajo del ángulo inferior de la espátula, con el plicómetro a 45° de la vertical. Suprailiaco. Inmediatamente arriba de la cresta iliaca, en la línea axilar media, siguiendo el pliegue horizontal natural de la piel. Calcule el índice de masa corporal. Anote la circunferencia del brazo, calcule la circunferencia del músculo del brazo y regístrela. OBSERVACIONES Y RESULTADOS CONCLUSIONES CUESTIONARIO ¿Qué es antropometría? Defina al sobrepeso y la obesidad según la NORMA Oficial Mexicana NOM-008-SSA3-2010, Para el tratamiento integral del sobrepeso y la obesidad. Defina al Índice de Masa Corporal (IMC) y la forma de calcularlo. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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