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Determinación de concentraciones
de Dioxinas y Bifenilos
Policlorados en conservas de
caballa (S. japonicus) de la
industria peruana y evaluación de
su condición sanitaria
Vargas Huaco, Alfonso Isaias1; Hinojosa Blanco, Ignacio2;
1Dirección Sanitaria y de
Normatividad Pesquera y Acuícola
del Organismo Nacional Sanidad
Pesquera (SANIPES), Lima/Lima
– Perú
2Profesor investigador de la
Universidad Le Cordon Bleu
(ULCB), Lima/Lima –Perú
Noviembre 2017, Lima - Perú
Introducción
Los Contaminantes Orgánicos Persistentes (COPs) son
sustancias químicas orgánicas que poseen una serie
particular de propiedades fisicoquímicas: una vez
liberados al medio ambiente estos (i) permanecen
intactos durante períodos de tiempo excepcionalmente
largos; (ii) se distribuyen ampliamente en el medio
ambiente como resultado de procesos naturales; (iii) se
acumulan en el tejido graso de los organismos vivos,
incluidos los seres humanos, y se introduce en la
cadena alimentaria y (iv) son tóxicos para los seres
humanos y la vida silvestre (1).
Los alimentos son la principal vía de exposición a estos compuestos (2),
siendo los alimentos derivados de animales los de mayor riesgo, debido a
que los PCDDs, PCDFs, PCBs pueden bioacumularse en el tejido graso de
animales (3). Existe evidencia que en los productos hidrobiológicos, como
los derivados de algunas especies de peces, existen concentraciones
considerables de estos compuestos (6) (7). La bioacomulación de PCDD/F
es particularmente importante en peces depredadores y con alto contenido
graso (8).
Fig 1. Fórmula
estructural de PCDDs,
PCDFs y PCBs
CONAM (9): la generación total de dioxinas y furanos estimada para Perú,
fue de 424,09 g EQT/año para el año 2003, correspondiendo a 29,92 μg
EQT/hab.año y 0,3 mg EQT/ km2.año; siendo las mayores contribuciones
hacia el aire (46 %), los residuos (39%), y el suelo (14 %).
Estos compuestos pueden ser absorbidos por el cuerpo humano con una
eficiencia del 90% para el 2,3,7,8-TCDF por administración oral (4) y
bioacumularse por más de 7 años, con disminuciones mínimas en suero
sanguíneo a una tasa de 20 pg TEQ/g grasa por año (5).
Fig 2. Modelo de transmisión e introducción de los COPs a la cadena trófica
Materiales y métodos
Se diseñó el plan de muestreo de lotes de conservas de caballa a nivel
nacional de acuerdo a los lineamientos de la Norma Técnica Peruana NTP
700.002-2012. Se estableció seleccionar 1 pool de 5 unidades de cada lote
para la realización de un único ensayo de laboratorio. Se consideró a una
población de 52 plantas conserveras habilitadas.
El programa de toma de muestras incluyó 60 pools (300 latas) de conservas
de caballa de 23 empresas habilitadas ubicadas en los departamentos
costeros de Piura, Ancash, Lima e Ica. De acuerdo a la clasificación de
zonas de pesca de la FAO (10), se identificó las zonas de pesca de donde es
capturada la caballa, materia prima de las conservas.
Dioxinas PCBs
PCDD PCDF
PCB Doxin-
likes
PCB non
Doxin-likes
Congéneres
2,3,7,8 - TCDD 2,3,7,8-TCDF PCB n°.77 PCB n°.28
1,2,3,7,8-PeCDD 1,2,3,7,8-PeCDF PCB n°.81 PCB n°.52
1,2,3,4,7,8-HxCDD 2,3,4,7,8-PeCDF PCB n°.126 PCB n°.101
1,2,3,6,7,8-HxCDD 1,2,3,4,7,8-HxCDF PCB n°.169 PCB no.138
1,2,3,7,8,9-HxCDD 1,2,3,6,7,8-HxCDF PCB n°.105 PCB no.153
1,2,3,4,6,7,8-HpCDD 2,3,4,6,7,8-HxCDF PCB n°.114 PCB no.180
OctaCDD 1,2,3,7,8,9-HxCDF PCB n°.118
1,2,3,4,6,7,8-HpCDF PCB n°.123
1,2,3,4,7,8,9-HpCDF PCB n°. 156
Octa CDF PCB n°.157
PCB n°. 167
PCB n°.189
7 10 12 6
Total 35
Los métodos analíticos fueron: (i) EPA Method 1613 Tetra-through Octa-
Chlorinated Dioxins and Furans by Isotope Dilutión by HRGC/HRMS,
(11), con las modificaciones propuestas Hope et al (12); (ii) Método EPA
Method 1668 Chlorinated Biphenyl Congeners in Water, Soil, Sediment,
Biosolids, and Tissue by HRGC/HRMS (13), con las modificaciones
propuestas Pond et al (14).
Se consideró 35
congéneres de PCDDs,
PCDFs, PCBs similares
a las dioxinas (dl) y
PCBs no similares a las
dioxinas (non dl)
basados en su potencial
tóxico y la probabilidad
de contaminación en
alimentos. Los ensayos
se realizaron con
métodos acreditados.
Tab 1. Lista de congéneres incluidos para análisis
Fig 3. Fotografías del programa de muestreo, transporte de muestras y análisis de lab.
Resultados
PCDD/PCDF
WHO-TEQ´s 2015 (ng
TEQ/kg)
PCB´s dl
WHO-TEQ´s 2015 (ng
TEQ/kg)
PCDD/PCDF/PCB´s
dl
WHO-TEQ´s 2015 (ng
TEQ/kg)
PCB non dl
(ng/kg)
División Dept.
87 FAO’s
fishing Zones
n
Lower
bound
Upper
bound
Lower
bound
Upper
bound
Lower
bound
Upper
bound
Total
Norte Piura 87.1.13 Zone 2 ND 0.16125 0.00013 0.13120 0.00013 0.29245 63.60000
Total – división Norte 2 ND 0.16125 0.00013 0.13120 0.00013 0.29245 63.60000
Central
Ancash
87.1.13 Zone 36 0.00454 0.16517 0.01875 0.14725 0.02329 0.31241 72.29167
87.1.14 Zone 10 0.00752 0.16612 0.01449 0.14243 0.02200 0.30855 96.80000
General - Ancash 46 0.00518 0.16537 0.01782 0.14620 0.02301 0.31157 77.61957
Lima/
Callao
87.1.13 Zone 6 ND 0.16125 0.00019 0.13122 0.00019 0.29247 65.20000
87.1.14 Zone 1 ND 0.16125 0.00026 0.13129 0.00026 0.29254 52.40000
General - Lima/Callao 7 ND 0.16125 0.00020 0.13123 0.00020 0.29248 63.37143
Total – división Central 53 0.00450 0.16483 0.01550 0.14422 0.01999 0.30905 75.73774
Sur Ica
87.1.13 Zone 4 ND 0.16125 0.00034 0.13132 0.00034 0.29257 87.47500
87.1.14 Zone 1 ND 0.16125 ND 0.13112 ND 0.29237 28.70000
Total – división Sur 5 ND 0.16125 0.00027 0.13128 0.00027 0.29253 75.72000
Total 87.1.13 fishing zone 48 0.00340 0.16419 0.01412 0.14325 0.01752 0.30743 72.30833
Total 87.1.14 fishing zone 12 0.00626 0.16531 0.01209 0.14056 0.01836 0.30587 87.42500
Total nacional 60 0.00397 0.16441 0.01371 0.14271 0.01769 0.30712 75.33167
Tab 2. Resumen de concentraciones promedio de PCDFs, PCDFs y PCBs en las muestras
Piura
Ancash
Lima
Callao
Ica
División Central
División Sur
División Norte
Fig 4. Departamentos y zonas de pesca FAO incluidas en el estudio
Resultados
Fig 5. Perfil de congéneres porcentual de PCDDs, PCDFs, dl-PCBs y non dl-PCBs en
muestras por zonas FAO de pesca
Piura
Ancash
Lima
Callao
Ica
División Central
División Sur
División Norte
Fig 4. Departamentos y zonas de pesca FAO incluidas en el estudio
PCDDs PCDFs
Non dl -PCBs
8.42% 10.88% 14.74%
100%
15.43% 50.53%
0% 20% 40% 60% 80% 100%
2,3,7,8-TCDF 1,2,3,7,8-PeCDF 2,3,4,7,8-PeCDF
1,2,3,4,7,8-HxCDF 1,2,3,6,7,8-HxCDF 1,2,3,7,8,9-HxCDF
2,3,4,6,7,8-HxCDF 1,2,3,4,6,7,8-HpCDF 1,2,3,4,7,8,9-HpCDF
7.30%
7.60%
6.93%
7.89%
10.25%
11.25%
31.85%
31.41%
20.02%
27.25%
13.65%
14.49%
0% 20% 40% 60% 80% 100%
PCB 28 PCB 52 PCB 101 PCB 153 PCB 138 PCB 180
2.16%
3.40%
7.37%
11.68%
71.31%
66.38%
6.55%
10.31%
3.07% 2.65%
5.23%
4.90%
3.00%
0% 20% 40% 60% 80% 100%
PCB 81 PCB 77 PCB 123 PCB 118 PCB 114 PCB 105
PCB 126 PCB 167 PCB 156 PCB 157 PCB 169 PCB 189
dl -PCBs
1.59% 12.34%
3.39%
86.08%
96.61%
0% 20% 40% 60% 80% 100%
2,3,7,8 - TCDD 1,2,3,7,8-PeCDD
1,2,3,4,7,8-HxCDD 1,2,3,6,7,8-HxCDD
1,2,3,7,8,9-HxCDD 1,2,3,4,6,7,8-HpCDD
87.1.1487.1.13
FAOfishingzone
87.1.1487.1.13
FAOfishingzone
87.1.1487.1.13
FAOfishingzone
87.1.1487.1.13
FAOfishingzone
Resultados
Fig 6. Diagrama de caja de concentraciones de PCDD/PCDF and PCDD/PCDF/dl-PCBs y
comparación con los LMPs de la EU y EEU
Piura
Ancash
Lima
Callao
Ica
División Central
División Sur
División Norte
Fig 4. Departamentos y zonas de pesca FAO incluidas en el estudio
Fig 7. Diagrama de caja de concentración de non dl-PCBs y comparación con los LMPs de
la EU y EEU
Conclusiones
Agradecimientos
 Los resultados obtenidos de las concentraciones de los contaminantes en
las muestras a nivel nacional expresado en rangos promedios. Fueron: (i)
PCDD/PCDF 0.00397<x<0.16441 WHO-EQT 2015 (ng EQT/kg); (ii)
PCBs similares a las dioxinas: 0.01371<x<0.14271 WHO-TEQ´s 2015
(ng TEQ/kg); (iii) PCDD/PCDF/PCBs no similares a las dioxinas
0.01769<x<0.30712 WHO-TEQ´s 2015 (ng TEQ/kg); (iv) PCB-non dl
26.92<75.33<246.34 (ng/kg).
 Estos resultados evidencian la presencia de estos compuestos en
concentraciones muy bajas: (i) PCDDs: fueron detectados los 1,2,3,4,7,8-
HxCDD; 1,2,3,7,8,9-HxCDD; 1,2,3,4,6,7,8-HpCDD y OctaCDD, siendo
el congénere más abundante el OctaCDD; (ii) PCDFs: fueron detectados
los 1,2,3,4,7,8-HxCDF; 1,2,3,7,8,9-HxCDF; 1,2,3,4,6,7,8-HpCDF;
1,2,3,4,7,8,9-HpCDF y OctaCDD, siendo el congénere más abundante el
OctaCDF; (iii) PCBs-dl: fueron detectados PCB 81; PCB 77; PCB 118;
PCB 105, PCB 167, PCB 156 y PCB 169, siendo el congénere más
abundante el PCB 118. (iv) PCBs-non dl: fueron detectados los PCB 28;
PCB 52; PCB 101; PCB 153, PCB 138 y PCB 180, siendo el congénere
más abúndate fue el PCB 153.
 Quedó demostrado que las concentraciones de los contaminantes en las
muestras, estuvieron muy por debajo de los LMP utilizados para la
comparación: Legislación de la Unión Europea (LMP UE) (Dioxinas 3.5
pg/g FW; Dioxinas + PCBs-dl 6,5 pg/g FW; PCBs 75 ng/g) y de la Unión
Económica Europea (LMP UEE) (Dioxinas 0,000004 mg/kg, PCBs 2,0
mg/kg). En este sentido, se concluye que las muestras eran inocuas.
Esta investigación se enmarca dentro de la actividad de investigación
gubernamental "Fortalecimiento de la investigación y control sanitario en
las actividades pesqueras y acuícolas en el país", financiada por el
Ministerio de Producción del Perú (Resolución Ministerial No. 265-2015-
PRODUCE) Por la Agencia Nacional de Sanidad Pesquera (SANIPES).
Referencias bibliográficas
Datos de contacto
1.Convenio de Estocolmo (2010) Convenio de Estocolmo sobre Contaminantes Orgánicos
Persistentes (COP).
2.OMS (2002). Polychlorinated dibenzodioxins, polychlorinated dibenzofurans, and coplanar
polychlorinated biphenyls. Safety evaluation of certain food additives and contaminants.
3.Schecter A, Cramer P, Boggess K, Stanley J, and Olson J (1997) Levels of dioxins, dibenzofurans,
PCB, and DDE congeners in pooled food samples collected in 1995 at supermark across the United
States. Chemosphere, 34, 1437-1447.
4.Birnbaum L., Couture L. (1998) Disposition of octachlorodibenzo-p-dioxin (OCDD) in male rats.
Toxicol. Appl. Pharmacol., 93, 22–30.
5.Yamamoto K., Kudo M., Arito H., Ogawa Y., Takata T. (2015) Isomer pattern and elimination of
dioxins in workers exposed at a municipal waste incineration plant, Industrial Health, 53, 454–464.
6.Shelepchikov A., Shenderyuk V., Brodsky E., Feshin D., Baholdina L., Gorogankin S. (2008)
Contamination of Russian Baltic fish by polychlorinated dibenzo-p-dioxins, dibenzofurans and
dioxin-like biphenyls, Environmental Toxicology and Pharmacology. 25, 136-146.
7.Jensen E, Bolger, P. (2001) Exposure assessment of dioxins/furans consumed in dairy foods and
fish. Food Additives & Contaminants, 18, 395-403.
8.Sorencen S, Lund KH, Cedeberg T, Ballin N. (2015) Identification of Baltic Sea salmon based on
PCB and dioxins profiles. Food Control, 61,165-171.
9.CONAM (2006) Inventario Nacional de fuentes y liberación de dioxinas y furanos año base 2003.
Lima, Perú.
10.FAO (2000) Geographic profiles. Fishery & Aquaculture Country Profiles. FAO Major Fishing
Areas. [Online] [cited 2017 05 27]. Available from: http://www.fao.org/fishery/area/Area87/en.
11.Environmental Protection Agency (1994) Method 1613. Tetra- through Octa-Chlorinated Dioxins
and Furans by Isotope Dilution HRGC/HRMS, Washington.
12.Hope D, Pond P, Mudalige W, Del Pozo J, Wright M. (2015) Recent advances in lowering the cost
of dioxin analysis. Organohalogen Compounds, 77, 668-671.
13.Environmental Protection Agency (2010) Method 1668C Chlorinated Biphenyl Congeners in
Water, Soil, Sediment, Biosolids, and Tissue by HRGC/HRMS Washington.
14.Pond P, Hope D, Ma E (2009) Improved congeners specific analysis by HRGC-HRMS.
Organohalogen Compounds, 71, 1214-1219.
15.National Research Council (2001) A Risk Management Strategy for PCB-Contaminated
Sediments Washington.
E-mail: locador206@sanipes.gob.pe;
2011I0187@ulcb.edu.pe
Alfonso I. Vargas Huaco Prof. Ignacio Hinojosa Blanco
E-mail: ignacio.hinojosa@ulcb.edu.pe

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CISIPA 2017: 10. Determinación de concentraciones de Dioxinas y Bifenilos Policlorados en conservas de caballa de la industria peruana y evaluación de su condición sanitaria

  • 1. Determinación de concentraciones de Dioxinas y Bifenilos Policlorados en conservas de caballa (S. japonicus) de la industria peruana y evaluación de su condición sanitaria Vargas Huaco, Alfonso Isaias1; Hinojosa Blanco, Ignacio2; 1Dirección Sanitaria y de Normatividad Pesquera y Acuícola del Organismo Nacional Sanidad Pesquera (SANIPES), Lima/Lima – Perú 2Profesor investigador de la Universidad Le Cordon Bleu (ULCB), Lima/Lima –Perú Noviembre 2017, Lima - Perú
  • 2. Introducción Los Contaminantes Orgánicos Persistentes (COPs) son sustancias químicas orgánicas que poseen una serie particular de propiedades fisicoquímicas: una vez liberados al medio ambiente estos (i) permanecen intactos durante períodos de tiempo excepcionalmente largos; (ii) se distribuyen ampliamente en el medio ambiente como resultado de procesos naturales; (iii) se acumulan en el tejido graso de los organismos vivos, incluidos los seres humanos, y se introduce en la cadena alimentaria y (iv) son tóxicos para los seres humanos y la vida silvestre (1). Los alimentos son la principal vía de exposición a estos compuestos (2), siendo los alimentos derivados de animales los de mayor riesgo, debido a que los PCDDs, PCDFs, PCBs pueden bioacumularse en el tejido graso de animales (3). Existe evidencia que en los productos hidrobiológicos, como los derivados de algunas especies de peces, existen concentraciones considerables de estos compuestos (6) (7). La bioacomulación de PCDD/F es particularmente importante en peces depredadores y con alto contenido graso (8). Fig 1. Fórmula estructural de PCDDs, PCDFs y PCBs CONAM (9): la generación total de dioxinas y furanos estimada para Perú, fue de 424,09 g EQT/año para el año 2003, correspondiendo a 29,92 μg EQT/hab.año y 0,3 mg EQT/ km2.año; siendo las mayores contribuciones hacia el aire (46 %), los residuos (39%), y el suelo (14 %). Estos compuestos pueden ser absorbidos por el cuerpo humano con una eficiencia del 90% para el 2,3,7,8-TCDF por administración oral (4) y bioacumularse por más de 7 años, con disminuciones mínimas en suero sanguíneo a una tasa de 20 pg TEQ/g grasa por año (5). Fig 2. Modelo de transmisión e introducción de los COPs a la cadena trófica
  • 3. Materiales y métodos Se diseñó el plan de muestreo de lotes de conservas de caballa a nivel nacional de acuerdo a los lineamientos de la Norma Técnica Peruana NTP 700.002-2012. Se estableció seleccionar 1 pool de 5 unidades de cada lote para la realización de un único ensayo de laboratorio. Se consideró a una población de 52 plantas conserveras habilitadas. El programa de toma de muestras incluyó 60 pools (300 latas) de conservas de caballa de 23 empresas habilitadas ubicadas en los departamentos costeros de Piura, Ancash, Lima e Ica. De acuerdo a la clasificación de zonas de pesca de la FAO (10), se identificó las zonas de pesca de donde es capturada la caballa, materia prima de las conservas. Dioxinas PCBs PCDD PCDF PCB Doxin- likes PCB non Doxin-likes Congéneres 2,3,7,8 - TCDD 2,3,7,8-TCDF PCB n°.77 PCB n°.28 1,2,3,7,8-PeCDD 1,2,3,7,8-PeCDF PCB n°.81 PCB n°.52 1,2,3,4,7,8-HxCDD 2,3,4,7,8-PeCDF PCB n°.126 PCB n°.101 1,2,3,6,7,8-HxCDD 1,2,3,4,7,8-HxCDF PCB n°.169 PCB no.138 1,2,3,7,8,9-HxCDD 1,2,3,6,7,8-HxCDF PCB n°.105 PCB no.153 1,2,3,4,6,7,8-HpCDD 2,3,4,6,7,8-HxCDF PCB n°.114 PCB no.180 OctaCDD 1,2,3,7,8,9-HxCDF PCB n°.118 1,2,3,4,6,7,8-HpCDF PCB n°.123 1,2,3,4,7,8,9-HpCDF PCB n°. 156 Octa CDF PCB n°.157 PCB n°. 167 PCB n°.189 7 10 12 6 Total 35 Los métodos analíticos fueron: (i) EPA Method 1613 Tetra-through Octa- Chlorinated Dioxins and Furans by Isotope Dilutión by HRGC/HRMS, (11), con las modificaciones propuestas Hope et al (12); (ii) Método EPA Method 1668 Chlorinated Biphenyl Congeners in Water, Soil, Sediment, Biosolids, and Tissue by HRGC/HRMS (13), con las modificaciones propuestas Pond et al (14). Se consideró 35 congéneres de PCDDs, PCDFs, PCBs similares a las dioxinas (dl) y PCBs no similares a las dioxinas (non dl) basados en su potencial tóxico y la probabilidad de contaminación en alimentos. Los ensayos se realizaron con métodos acreditados. Tab 1. Lista de congéneres incluidos para análisis Fig 3. Fotografías del programa de muestreo, transporte de muestras y análisis de lab.
  • 4. Resultados PCDD/PCDF WHO-TEQ´s 2015 (ng TEQ/kg) PCB´s dl WHO-TEQ´s 2015 (ng TEQ/kg) PCDD/PCDF/PCB´s dl WHO-TEQ´s 2015 (ng TEQ/kg) PCB non dl (ng/kg) División Dept. 87 FAO’s fishing Zones n Lower bound Upper bound Lower bound Upper bound Lower bound Upper bound Total Norte Piura 87.1.13 Zone 2 ND 0.16125 0.00013 0.13120 0.00013 0.29245 63.60000 Total – división Norte 2 ND 0.16125 0.00013 0.13120 0.00013 0.29245 63.60000 Central Ancash 87.1.13 Zone 36 0.00454 0.16517 0.01875 0.14725 0.02329 0.31241 72.29167 87.1.14 Zone 10 0.00752 0.16612 0.01449 0.14243 0.02200 0.30855 96.80000 General - Ancash 46 0.00518 0.16537 0.01782 0.14620 0.02301 0.31157 77.61957 Lima/ Callao 87.1.13 Zone 6 ND 0.16125 0.00019 0.13122 0.00019 0.29247 65.20000 87.1.14 Zone 1 ND 0.16125 0.00026 0.13129 0.00026 0.29254 52.40000 General - Lima/Callao 7 ND 0.16125 0.00020 0.13123 0.00020 0.29248 63.37143 Total – división Central 53 0.00450 0.16483 0.01550 0.14422 0.01999 0.30905 75.73774 Sur Ica 87.1.13 Zone 4 ND 0.16125 0.00034 0.13132 0.00034 0.29257 87.47500 87.1.14 Zone 1 ND 0.16125 ND 0.13112 ND 0.29237 28.70000 Total – división Sur 5 ND 0.16125 0.00027 0.13128 0.00027 0.29253 75.72000 Total 87.1.13 fishing zone 48 0.00340 0.16419 0.01412 0.14325 0.01752 0.30743 72.30833 Total 87.1.14 fishing zone 12 0.00626 0.16531 0.01209 0.14056 0.01836 0.30587 87.42500 Total nacional 60 0.00397 0.16441 0.01371 0.14271 0.01769 0.30712 75.33167 Tab 2. Resumen de concentraciones promedio de PCDFs, PCDFs y PCBs en las muestras Piura Ancash Lima Callao Ica División Central División Sur División Norte Fig 4. Departamentos y zonas de pesca FAO incluidas en el estudio
  • 5. Resultados Fig 5. Perfil de congéneres porcentual de PCDDs, PCDFs, dl-PCBs y non dl-PCBs en muestras por zonas FAO de pesca Piura Ancash Lima Callao Ica División Central División Sur División Norte Fig 4. Departamentos y zonas de pesca FAO incluidas en el estudio PCDDs PCDFs Non dl -PCBs 8.42% 10.88% 14.74% 100% 15.43% 50.53% 0% 20% 40% 60% 80% 100% 2,3,7,8-TCDF 1,2,3,7,8-PeCDF 2,3,4,7,8-PeCDF 1,2,3,4,7,8-HxCDF 1,2,3,6,7,8-HxCDF 1,2,3,7,8,9-HxCDF 2,3,4,6,7,8-HxCDF 1,2,3,4,6,7,8-HpCDF 1,2,3,4,7,8,9-HpCDF 7.30% 7.60% 6.93% 7.89% 10.25% 11.25% 31.85% 31.41% 20.02% 27.25% 13.65% 14.49% 0% 20% 40% 60% 80% 100% PCB 28 PCB 52 PCB 101 PCB 153 PCB 138 PCB 180 2.16% 3.40% 7.37% 11.68% 71.31% 66.38% 6.55% 10.31% 3.07% 2.65% 5.23% 4.90% 3.00% 0% 20% 40% 60% 80% 100% PCB 81 PCB 77 PCB 123 PCB 118 PCB 114 PCB 105 PCB 126 PCB 167 PCB 156 PCB 157 PCB 169 PCB 189 dl -PCBs 1.59% 12.34% 3.39% 86.08% 96.61% 0% 20% 40% 60% 80% 100% 2,3,7,8 - TCDD 1,2,3,7,8-PeCDD 1,2,3,4,7,8-HxCDD 1,2,3,6,7,8-HxCDD 1,2,3,7,8,9-HxCDD 1,2,3,4,6,7,8-HpCDD 87.1.1487.1.13 FAOfishingzone 87.1.1487.1.13 FAOfishingzone 87.1.1487.1.13 FAOfishingzone 87.1.1487.1.13 FAOfishingzone
  • 6. Resultados Fig 6. Diagrama de caja de concentraciones de PCDD/PCDF and PCDD/PCDF/dl-PCBs y comparación con los LMPs de la EU y EEU Piura Ancash Lima Callao Ica División Central División Sur División Norte Fig 4. Departamentos y zonas de pesca FAO incluidas en el estudio Fig 7. Diagrama de caja de concentración de non dl-PCBs y comparación con los LMPs de la EU y EEU
  • 7. Conclusiones Agradecimientos  Los resultados obtenidos de las concentraciones de los contaminantes en las muestras a nivel nacional expresado en rangos promedios. Fueron: (i) PCDD/PCDF 0.00397<x<0.16441 WHO-EQT 2015 (ng EQT/kg); (ii) PCBs similares a las dioxinas: 0.01371<x<0.14271 WHO-TEQ´s 2015 (ng TEQ/kg); (iii) PCDD/PCDF/PCBs no similares a las dioxinas 0.01769<x<0.30712 WHO-TEQ´s 2015 (ng TEQ/kg); (iv) PCB-non dl 26.92<75.33<246.34 (ng/kg).  Estos resultados evidencian la presencia de estos compuestos en concentraciones muy bajas: (i) PCDDs: fueron detectados los 1,2,3,4,7,8- HxCDD; 1,2,3,7,8,9-HxCDD; 1,2,3,4,6,7,8-HpCDD y OctaCDD, siendo el congénere más abundante el OctaCDD; (ii) PCDFs: fueron detectados los 1,2,3,4,7,8-HxCDF; 1,2,3,7,8,9-HxCDF; 1,2,3,4,6,7,8-HpCDF; 1,2,3,4,7,8,9-HpCDF y OctaCDD, siendo el congénere más abundante el OctaCDF; (iii) PCBs-dl: fueron detectados PCB 81; PCB 77; PCB 118; PCB 105, PCB 167, PCB 156 y PCB 169, siendo el congénere más abundante el PCB 118. (iv) PCBs-non dl: fueron detectados los PCB 28; PCB 52; PCB 101; PCB 153, PCB 138 y PCB 180, siendo el congénere más abúndate fue el PCB 153.  Quedó demostrado que las concentraciones de los contaminantes en las muestras, estuvieron muy por debajo de los LMP utilizados para la comparación: Legislación de la Unión Europea (LMP UE) (Dioxinas 3.5 pg/g FW; Dioxinas + PCBs-dl 6,5 pg/g FW; PCBs 75 ng/g) y de la Unión Económica Europea (LMP UEE) (Dioxinas 0,000004 mg/kg, PCBs 2,0 mg/kg). En este sentido, se concluye que las muestras eran inocuas. Esta investigación se enmarca dentro de la actividad de investigación gubernamental "Fortalecimiento de la investigación y control sanitario en las actividades pesqueras y acuícolas en el país", financiada por el Ministerio de Producción del Perú (Resolución Ministerial No. 265-2015- PRODUCE) Por la Agencia Nacional de Sanidad Pesquera (SANIPES).
  • 8. Referencias bibliográficas Datos de contacto 1.Convenio de Estocolmo (2010) Convenio de Estocolmo sobre Contaminantes Orgánicos Persistentes (COP). 2.OMS (2002). Polychlorinated dibenzodioxins, polychlorinated dibenzofurans, and coplanar polychlorinated biphenyls. Safety evaluation of certain food additives and contaminants. 3.Schecter A, Cramer P, Boggess K, Stanley J, and Olson J (1997) Levels of dioxins, dibenzofurans, PCB, and DDE congeners in pooled food samples collected in 1995 at supermark across the United States. Chemosphere, 34, 1437-1447. 4.Birnbaum L., Couture L. (1998) Disposition of octachlorodibenzo-p-dioxin (OCDD) in male rats. Toxicol. Appl. Pharmacol., 93, 22–30. 5.Yamamoto K., Kudo M., Arito H., Ogawa Y., Takata T. (2015) Isomer pattern and elimination of dioxins in workers exposed at a municipal waste incineration plant, Industrial Health, 53, 454–464. 6.Shelepchikov A., Shenderyuk V., Brodsky E., Feshin D., Baholdina L., Gorogankin S. (2008) Contamination of Russian Baltic fish by polychlorinated dibenzo-p-dioxins, dibenzofurans and dioxin-like biphenyls, Environmental Toxicology and Pharmacology. 25, 136-146. 7.Jensen E, Bolger, P. (2001) Exposure assessment of dioxins/furans consumed in dairy foods and fish. Food Additives & Contaminants, 18, 395-403. 8.Sorencen S, Lund KH, Cedeberg T, Ballin N. (2015) Identification of Baltic Sea salmon based on PCB and dioxins profiles. Food Control, 61,165-171. 9.CONAM (2006) Inventario Nacional de fuentes y liberación de dioxinas y furanos año base 2003. Lima, Perú. 10.FAO (2000) Geographic profiles. Fishery & Aquaculture Country Profiles. FAO Major Fishing Areas. [Online] [cited 2017 05 27]. Available from: http://www.fao.org/fishery/area/Area87/en. 11.Environmental Protection Agency (1994) Method 1613. Tetra- through Octa-Chlorinated Dioxins and Furans by Isotope Dilution HRGC/HRMS, Washington. 12.Hope D, Pond P, Mudalige W, Del Pozo J, Wright M. (2015) Recent advances in lowering the cost of dioxin analysis. Organohalogen Compounds, 77, 668-671. 13.Environmental Protection Agency (2010) Method 1668C Chlorinated Biphenyl Congeners in Water, Soil, Sediment, Biosolids, and Tissue by HRGC/HRMS Washington. 14.Pond P, Hope D, Ma E (2009) Improved congeners specific analysis by HRGC-HRMS. Organohalogen Compounds, 71, 1214-1219. 15.National Research Council (2001) A Risk Management Strategy for PCB-Contaminated Sediments Washington. E-mail: locador206@sanipes.gob.pe; 2011I0187@ulcb.edu.pe Alfonso I. Vargas Huaco Prof. Ignacio Hinojosa Blanco E-mail: ignacio.hinojosa@ulcb.edu.pe