La tifoidea aviar es una enfermedad bacteriana causada por Salmonella gallinarum que afecta principalmente a pollos y otras aves de corral. Los signos clínicos incluyen debilidad, falta de apetito y mortalidad, mientras que las lesiones comunes son nódulos en el hígado y pulmones. El diagnóstico requiere el aislamiento e identificación de la bacteria mediante pruebas bioquímicas. No existe una cura, pero las vacunas y el control de la infección en la granja pueden prevenir la
2. • Tifoidea Aviar
• Tifosis Aviar
• Tifo Aviário
• Salmonelosis Aviar (Aunque se le denomina de esta misma manera a la Pullorosis
aviar).
3. Brugere-Picoux, J, Vaillancourt, JP. Manual de Patología Aviar. 2015, AFAS, China.
Enfermedad septicémica causada por una bacteria del género Salmonella que es
especie-específica de las aves, causada por Salmonella gallinarum. Puede causar
mortalidad en aves de cualquier edad. Los pollos de engorda y los huevos (ya que
se caracteriza por transmitirse por vía transovárica de las madres a su
descendencia) son especialmente más susceptibles. Los pollos son los más
afectados, pero también infecta a los pavos, aves de caza, gorriones, loros, canarios
y camachuelos.
La gravedad radica en la marcada reducción en los porcentajes de postura,
así́́ como en la escasa fertilidad e incubabilidad del huevo.
4. 1) Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-
Blackwell, USA
2) Freitas Neto, O.C., Setta, A., Imre, A., Bukovinski, A., Elazomi, A.,
Kaiser, P., Berchieri, A., Junior, Barrow, P., Jones, M.A., (2013). A
flagellated motile Salmonella Gallinarum mutant (SG Fla+) elicits a
pro-inflammatory response from avian epithelial cells and
macrophages and is less virulent to chickens. Veterinary
Microbiology 165, 425–433.
La enfermedad es producida por una bacteria del género Salmonella especie enterica subsp.
enterica serovariedad gallinarum biovariedad gallinarum.
• Bacilo gramnegativo (pertenece a la familia Enterobacteriaceae)
• Esta serovariedad junto con la serovariedad pullorum son los 2 miembros del género que son
inmóviles.
• Pertenecen al serogrupo D de acuerdo con el esquema de Kauffman White.
• Es anaerobio facultativo.
• No forma esporas.
• Sin capsula.
Salmonella gallinarum Salmonella enteritidis
5. • Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA
• Freitas Neto, O.C., Arroyave, W., Alessi, A.C., Fagliari, J.J., Berchieri, A., (2007). Infection of Commercial Laying Hens with Salmonella
Gallinarum: Clinical, Anatomopathological and Haematological Studies. Brazilian Journal of Poultry Science, 9 (2): 133-141.
• Figueroa, O. I. M., Mena, B. R., Mojica, S. M. A., et, al. Atlas Fotográfico de Laboratorio de Bacteriología y Micología Veterinarias. 2014,
FMVZ-UNAM, México.
• Las colonias de esta bacteria crecen en medios de enriquecimiento selectivos, como caldos
selenito y tetrationato, y medios diferenciales de placas como MacConkey, sulfito de bismuto y
agar verde brillante.
• Las colonias de S. gallinarum en extracto y/o en agar infusión carne de ternera (pH 7.0-7.2)
aparecen como pequeñas, lisas, de color azul grisáceo o blanco grisáceo, brillantes
homogéneas y completas. Miden 1 mm o menos.
6. • Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
• P. A. Barrow & O. C. Freitas Neto (2011). Pullorum disease and fowl typhoid—new thoughts on old diseases: a
review. Avian Pathology, 40:1, 1-13.
• Salmonella gallinarum es una bacteria gram negativa por lo que presenta una endotoxina
(LPS).
• Hemolisina
• Citolisina
• SPI 1 y SPI 2
• SST 3
La ausencia del flagelo se cree que juega un papel muy importante en la virulencia de
Salmonella gallinarum.
7. Typhoid fowl distribution maps. OIE. Disponible en:
https://www.oie.int/wahis_2/public/wahid.php/Diseaseinformation/Diseasedistributionmap?disease_type_hidden=0&disease_id_hidden=84&selected_disease_name_hidden=
Fowl+typhoid+%28-+-%29+&disease_type=0&disease_id_terrestrial=84&species_t=0&disease_id_aquatic=-
999&species_a=0&sta_method=semesterly&selected_start_year=2016&selected_report_period=2&selected_start_month=1
Distribución geográfica de FT: Ene-Dic 2016
9. Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
• Los principales huéspedes de Salmonella gallinarum son los pollitos y las aves adultas de
producción.
• Aunque también se ha descrito la enfermedad en especies silvestre como son: pavos, gallinas
de guinea, avestruces, codornices, faisanes, gorriones y loros.
10. Moreno DR. Principales Enfermedades en Aves de Combate. 2008, Quorum Editores, México.
La forma más importante de transmitirse es a partir de aves infectadas, pero existen varias
posibilidades:
a) Forma transovárica: Una forma importante de transmisión es por la infección del ovario en
gallinas que estén poniendo y cuyo huevo se a destinar a la incubación, para obtener crías.
b) Forma horizontal: Esta forma se lleva a cabo por el alojamiento de una ave infectada, con otras
susceptibles. Ingestión de alimentos y agua contaminados por la excreta de aves enfermas y
fomites. Aquí juegan un papel importante las aves silvestres.
c) Forma mecánica: Se produce por la entrada del germen a través de personas que llegan de visita
y tienen aves con problemas en su casa o granja.
11. Chappell, L., Kaiser, P., Barrow, P., Jones, M.A., Johnston, C., Wigley, P., (2009). The inmunobiology of avian systemic salmonellosis. Veterinary immunology and immunopathology 128,
53-59.
12. 1) Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
2) Gyles, C.L., Prescott, J.F., Songer, J.G., Thoen, C.O. Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals. 4th Ed, 2010, Wiley-Blackwell,
USA.
3) P. A. Barrow & O. C. Freitas Neto (2011). Pullorum disease and fowl typhoid—new thoughts on old diseases: a review. Avian
Pathology, 40:1, 1-13.
Signos clínicos:
• Aves nacidas de huevos infectados con S. gallinarum se observan moribundas en la incubadora o
después de la eclosión.
• Somnolencia
• Debilidad
• Disminución del apetito
• Crecimiento deficiente
• Disnea
• Muerte de los polluelos desde el día 5 a el día 10 de nacidos.
• Baja postura
• Deshidratación
• Disminución de la fertilidad
• Plumas erizadas
• Alas caídas
13. Dinev, I. Diseases of Poultry: A colour atlas. 2007, CEVA SANTE ANIMAL, Bulgaria.
14. Dinev, I. Diseases of Poultry: A colour atlas. 2007, CEVA SANTE ANIMAL, Bulgaria.
15. 1) Kumari D, Mishra SK and Lather D (2013). Pathomicrobial studies on Salmonella Gallinarum infection in broiler chickens. Veterinary World 6(10): 725-729.
2) Lopes, P.D., Freitas Neto, O.C., Batista, D.F.A., Denadai, J., Alarcon, M.F.F., Almeida, A.M., Vasconcelos, R.O., Setta, A., Barrow, P.A., Berchieri Junior, A., (2016).
Experimental infection of chickens by a flagellated motile strain of Salmonella enterica serovar Gallinarum biovar Gallinarum. The Veterinary Journal 214, 40-46.
16. El diagnóstico definitivo de la fiebre tifoidea require el aislamiento y la identificación de S.
gallinarum. Un diagnóstico presuntivo, puede estar basado en la historia clínica, signos clínicos,
mortalidad y las lesiones macroscópicas.
17. Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
Los signos clínicos y las lesiones producidas por la tifoidea aviar no son patognomónicos,
por lo que algunas lesiones son similares en otras enfermedades.
• Otras enfermedades causadas por especies del género Salmonella.
• Aspergilosis (lesiones en pulmón)
• Enfermedad de Marek (nódulos del corazón)
• Yersiniosis (Nódulos del hígado)
• Otras enterobacterias
• Cólera aviar
18. Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
Debido a que la infección por S. gallinarum es sistémica, este organismo puede ser aislado de casi
cualquier órgano.
• El hígado, bazo y sacos ciegos son los órganos preferidos para cultivar.
• Pero también pueden utilizarse pulmón, corazón, ventrículo, páncreas.
Para el aislamiento primario se utiliza infusión carne de ternera, agar triptosa, agar verde brillante
en placas o tubos de Petri.
• Se incuban durante 48 horas a 37 °C.
Se pueden moler varios órganos hasta dejar un líquido, se mezclan con infusión carne de ternera,
una proporción 1/10 y de la misma forma se incuban durante 24 horas a 37 °C.
Los hisopos también son utilizados para tomar muestras intestinales y se depositan en 10 mL de
caldo TBG.
19. Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
Las colonias sospechosas se transfieren a agar triples de hierro y azúcar (TSI) y agar de lisina y
hierro (LI) y se incuban a 37ºC durante 24 horas. Los cultivos que revelen reacciones típicas de
Salmonella deben identificarse mediante pruebas bioquímicas apropiadas.
21. Brugere-Picoux, J, Vaillancourt, JP. Manual de Patología Aviar. 2015, AFAS, China.
Las pruebas serológicas para detectar la enfermedad incluyen:
• Prueba de aglutinación en tubo macroscópico (TA)
• Prueba rápida de suero en placa
• Prueba de sangre completa con antígeno teñido en placa
La prueba de ELISA, es muy comúnmente empleada, sin embargo, los antígenos usados en
este tipo de pruebas pueden reaccionar cruzadamente con los sueros de aves infectadas
con otro tipos de salmonellas, especialmente con Salmonella enteritidis.
22. Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
Morbilidad y Mortalidad.
Tanto la morbilidad como la mortalidad son muy variables en pollos y están influenciadas por la
edad, la cepa de las aves, la nutrición, el manejo de la parvada, las enfermedades concurrentes y la
ruta y dosis de exposición.
Se ha informado una mortalidad que oscila entre el 10% y el 93% en pollos con tifoidea aviar.
La morbilidad es a menudo mucho más alta que la mortalidad (>50%) con algunas de las aves
afectadas que se recuperan espontáneamente.
La mortalidad es más alta en aquellas aves en trasporte debido al estrés que se someten respecto a
las que están en una incubadora.
23. Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
Se han desarrollado fármacos profilácticos y terapéuticos razonablemente eficaces contra la FT.
Pero en el caso de que haya una producción con esta enfermedad en países libre de ella, lo más
conveniente sería eliminar a la parvada.
Se ha encontrado que varias sulfonamidas, nitrofuranos, cloranfenicol, tetraciclinas y
aminoglucósidos son efectivos para reducir la mortalidad por FT.
24. Mantilla, J., Pulido, M., Jaime, J.
(2010). Prueba de sensibilidad
antimicrobiana de cepas de
Salmonella grupo D (Móviles e
Inmóviles) aisladas de
ponedoras comerciales en
Colombia. Red. Med. Vet, Zoot.
57 (3): 159-167.
25. Aplicación de la vacuna 9R de S. gallinarum. (PRONAVIBE)
En muchos países una vez que se establece el diagnóstico definitivo de FT, las aves enfermas
deberán sacrificarse y sus cadáveres deben ser incinerados o enterrados profundamente, cubiertos
con cal.
Programa de Vacunación
Vacunación inicial puede ser llevada a
cabo a partir de las seis semanas de
edad. Revacunaciones con intervalos
de 12 semanas son recomendados.
Dosis
0.2 ml por ave por vía SC.
26. 1) Moreno DR. Principales Enfermedades en Aves de Combate. 2008, Quorum Editores, México.
2) Brugere-Picoux, J, Vaillancourt, JP. Manual de Patología Aviar. 2015, AFAS, China.
3) Swayne, DE, [et al.]. Diseases of Poultry. 13th Ed, 2013, Wiley-Blackwell, USA.
4) Dinev, I. Diseases of Poultry: A colour atlas. 2007, CEVA SANTE ANIMAL, Bulgaria.
5) P. A. Barrow & O. C. Freitas Neto (2011). Pullorum disease and fowl typhoid—new thoughts
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8) Freitas Neto, O.C., Setta, A., Imre, A., Bukovinski, A., Elazomi, A., Kaiser, P., Berchieri, A.,
Junior, Barrow, P., Jones, M.A., (2013). A flagellated motile Salmonella Gallinarum mutant (SG
Fla+) elicits a pro-inflammatory response from avian epithelial cells and macrophages and is
less virulent to chickens. Veterinary Microbiology 165, 425–433.
27. 8) Lopes, P.D., Freitas Neto, O.C., Batista, D.F.A., Denadai, J., Alarcon, M.F.F., Almeida, A.M.,
Vasconcelos, R.O., Setta, A., Barrow, P.A., Berchieri Junior, A., (2016). Experimental infection
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Gallinarum. The Veterinary Journal 214, 40-46.
9) Kumari D, Mishra SK and Lather D (2013). Pathomicrobial studies on Salmonella
Gallinarum infection in broiler chickens. Veterinary World 6(10): 725-729.
10) Chappell, L., Kaiser, P., Barrow, P., Jones, M.A., Johnston, C., Wigley, P., (2009). The
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11) Freitas Neto, O.C., Arroyave, W., Alessi, A.C., Fagliari, J.J., Berchieri, A., (2007). Infection of
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Haematological Studies. Brazilian Journal of Poultry Science, 9 (2): 133-141.
12)Thomson, N.R., Clayton, D.J., Windhorst, D., Vernikos, G., Davidson, S., Churcher, C., Quail,
M.A., Stevens, M., Jones, M.A.,Watson, M., et al., (2008). Comparative genome analysis of
Salmonella Enteritidis PT4 and Salmonella Gallinarum 287/91 provides insights into
evolutionary and host adaptation pathways. Genome Research 18, 1624–1637.
28. 13) Flores A. Epizootiología de la Salmonelosis en Bovinos, Porcinos y Aves. Disponible en:
http://www.fmvz.unam.mx/fmvz/cienciavet/revistas/CVvol3/CVv3c05.pdf Consultado (26/10/17)
14) Collage of Vetrinary Medicine Iowa State University, Fowl Typhoid and Pullorum Disease. 2010
Disponible en: http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/tifosis_aviar_y_pullorosis.pdf
Consultado (26/10/17)
15) SECRETARIA DE GOBERNACIÓN, Diario Oficial de la Federación. 2014 Disponible en:
http://www.dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=5353455&fecha=23/07/2014 Consultado
(13/11/17)