1. COPROLOGÍACOPROLOGÍA
Rita Morales / Módulo II / 2014

2.  Es un método de diagnóstico no invasivo, la obtención
de la muestra es relativamente fácil, se utiliza mx
recién obtenida por expulsión natural.
 Es el estudio de la materia fecal en la búsqueda de
formas parasitarias.
 El análisis de heces es efectivo en la identificación de
formas quísticas, trofozoitos, larvas y huevos.
 La identificación de los parásitos depende de la
preparación adecuada del material.
 El análisis inmediato es indispensable.

3. RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA
 Recolectar en un recipiente seco, limpio y sin orina.
 Considerar a pacientes que reciben bario, bismuto o
antibióticos pues las mx son insatisfactorias.
 Muestras formadas = ideales para quistes de
protozoarios.
 Muestras líquidas (diarreicas) o después de un
purgante = ideales para trofozoitos.
 Consistencia dura y sin sangre: procesamiento
idealmente en dos horas.
 Presencia moco y sangre: inmediatamente.

4. FASES DEL EXAMEN
 Examen Macroscópico
 Color
 Consistencia
 Sangre
 Restos alimenticios
 Moco
 pH
 Examen Microscópico
 Jabones, almidones, Grasas, Células vegetales,
Otros, Parásitos.

6.  COLOR
 Café: estercobilina (bilirrubina)
 BlanquecinoBlanquecino: ausencia de pigmentos biliares.
 Amarillo:Amarillo: Leche, o presencia de bilirrubina inalterada
 Gris oscuro: ingesta de grandes cantidades de
chocolate o cacao.
 Verde: ingesta de espinacas y vegetales clorofílicos.
Diarrea infantil –biliverdina.
 Rojo: remolacha
 Estrías rojas: sangrado porciones inferiores del SGI, o
hemorroides
 Negro: Hierro y bismuto.
 Melena: sangrado porciones altas del SGI.

7.  CONSISTENCIA
 Pastosas: presentan un aspecto moldeado
 Semi Líquidas o Semidiarreicas
 Líquidas o Diarreicas
 Formada
 Caproica “con forma de bolas”
 SANGRE
 Indica hemorragia, varía su coloración de acuerdo
a la parte del SGI de donde provenga.

8.  RESTOS ALIMENTICIOS
 Tejidos o fibras vegetales como indicador de mala
digestión.
 MOCO
Copos desgarrados traslúcidos, indica
procesos inflamatorios del intestino.

9.  pH
Regularmente neutro (6.9-7.2)
ácido en Amebiasis y abundancia de
carbohidratos
alcalino en Shigelosis y exceso de
consumo de proteínas.
 OLOR
 No se reporta, proviene del indol y escatol.

11.  JABONES: Formas varias, generalmente
color ámbar.
 ALMIDONES: coloreados de color oscuro
al observar con lugol.
 GRASAS: Refringentes regularmente
circulares.
 CELULAS VEGETALES: múltiples
formas, doble pared, inclusiones celulares,
diversas coloraciones provenientes de
pigmentos vegetales.

12. DIGESTIBILIDAD
Fibras Musculares: cilindros cortos, con
presencia de estrías o huellas. Prótidos:
aumento de fibras musculares = falta de
digestión. Nota: reportar en “otros”.
Los jabones indican mala digestión de lípidos.
Lípidos: grasas neutras y ácidos grasos.
Glúcidos: (almidón) indigestibilidad o exceso
de ingesta de vegetales ricos en ellos.
Células Vegetales: Provienen de la dieta y su
cantidad está relacionada con ésta.

13. Fibra muscular Grasas
Jabones Almidón

14. Fibra
Tricoma
Aire
Células
vegetales
Haces
vasculares
Célula
vegetal

15. EXAMEN MICROSCÓPICO
 OTROS: Aquí se reportan los Comensales, células
sanguíneas, cristales, levaduras, fibras musculares.
 Entamoeba coli: indicador de contaminación fecal por
excelencia. Quiste 6-8 núcleos
 Endolimax nana: indicador contaminación fecal en
alimentos, menor tamaño E. coli
 Iodamoeba butschlii: Un solo núcleo, vacuola de
glucógeno.
 Entamoeba poleckii: quiste con un núcleo excentrico,
cromatina concentrada y densa.
 Entamoeba hartmanni: quiste con 3 a 4 núcleos, tamaño
redondeado.
 Chilomastix mesnilli: Trofozoito con movimiento tirabuzón
y Quiste en “forma de limón”, núcleo excéntrico.

16. Entamoeba
coli
Iodamoeba
butschlii
Chilomastix
mesnilii
Entamoeba
nana

17. Cristales de Charcot-leyden: disentería
amebiana o degradación de
eosinófilos.

18. EXAMEN MICROSCÓPICO
 Otros también…
 Blastocystis hominis, presenta múltiples fases.
 Levaduras: dependiendo cantidad (+++ con significado
clínico).
B. hominis
fase vacuolar
levadura

19.  PARASITOS
Entamoeba histolytica: Quiste maduro
con 4 núcleos, barra de cromatina, trofozoíto
grande, inclusiones celulares.
Indiferente morfológicamente de E. dispar
¿Cómo se reporta?
Utilizar tinciones especiales

20. Giardia lamblia: Patógeno,
axostilo y dos núcleos característicos.
Trofozoitos y quistes.
Generalmente, con forma ovoide.

21. Trichuris trichiura: Huevo como
fase infectante con forma “Balón
futbol americano”

22. Ascaris lumbricoides: Huevos
mamelonados (capa albuminosa).
Huevo fértil e infértil.

23. Taenia sp.: Huevos redondeados con una
especie de corona radiada y ganchos en su
interior.
Morfología de huevo similar en especies T.
saginata y T. solium.
Morfología de larba distintiva.

24. Hymenolepis nana: Huevos ovales con
dos engrosamientos polares cada uno con
4 filamentos polares finos.

25. Hymenolepis diminuta: Huevos
ovales carece de filamentos polares.

26. Uncinarias: No se diferencian entre sí en la
fase de huevo. Son ovoides con capa hialina,
delgada y transparente.

27. Enterobius vermiculari:
Huevo ovoide con larva en su interior.

28. Strongyloides stercolaris
Se aprecian las larvas rabditoides hembras
(cuerpo alargado) y machos (tiende a enrollar
parte de su cuerpo.

29. PROCESAMIENTO DE MUESTRAS
1. Identificar la muestra
2. Observar y anotar cuidadosamente las
características Macroscópicas.
3. Colocar 5 ml de Solución Salina 0.85% en
un vaso o recipiente
4. Agregar 1 g de materia fecal, mezclar y
homogeneizar.
5. Colocar en un segundo vaso un colador o
gasa doble con papel pH.
6. Colar la solución obtenida en el primer
vaso hacia el vaso dos.
7. Observar la cantidad de restos alimenticios
(+) y el valor de pH. Anota.
8. La solución colada se transfiere a un tubo
de centrífuga.

30. 7. Centrifugar a 2000 rpm por 5 minutos
8. Decantar el sobrenadante y homogeneizar la
muestra.
9. Montar la muestra en lámina portaobjetos:
 De lado izquierdo montar la muestra con
solución salina, y de lado derecho con
lugol + T. tricromica.
7. Observar en el microscopio toda la lámina
primero en seco débil y luego en seco fuerte.
 Recordar: en seco débil se cierra el diafragmaRecordar: en seco débil se cierra el diafragma
y en seco fuerte abrir un poco el diafragma yy en seco fuerte abrir un poco el diafragma y
subir el condensadorsubir el condensador
 En seco débil se inspecciona toda la lámina yEn seco débil se inspecciona toda la lámina y
en seco fuerte se observan las estructurasen seco fuerte se observan las estructuras
sospechosas de ser parásitos.sospechosas de ser parásitos.
7. Anotar y reportar adecuadamente.

31.  Rápida y sencilla
 El citoplasma de los protozoos se observa azul
verdoso con tintes púrpura.
 Los quistes se observan anaranjado a rojizo, con
cromatina, cuerpos cromatoidales de color rojo a
púrpura.
 Los eritrocitos y bacterias de color rojo o púrpura.
 El fondo de la preparación es verdosa
 Los huevos y larvas se tiñen de rojo o café-cobrizo.

32. Preguntas???