1. Examen físico, químico y microscópico de heces
Método cocroparasitoscopico directo (Entamoeba coli)
Amiba en fresco (Entamoeba histolytica)
2. • Consistencia y forma: acuosa ó
líquida, blanda, pastosa y puede
estar semi-formada, formada y
dura.
• Olor
En este
examen se
toma en cuenta
las siguientes
características:
EXAMEN FÍSICO DE LAS HECES
3. Color: El color marrón de
las heces es provocado
por la estercobilina (color
normal)
Moco: Su aparición en
las deposiciones suele
ser reconocible
macroscópicamente, se
encuentra finamente
dividido y mezclado en las
heces, dándole un color
brillante
Pus: Se presenta en
pequeñas cantidades en
la enteritis y colitis de
cualquier etiología. Pero
la presencia brusca de
pus abundante es indicio
de la evacuación a la luz
intestinal de un absceso
próximo
5. EXAMEN QUÍMICO
pH: Varía entre 6,8 y 7,2 dependiendo del régimen alimenticio.
Sangre oculta en heces
Azucares reductores
Marcadores de inflamación intestinal
6. EXAMEN MICROSCÓPICO
El estudio microscópico de muestras fecales permite obtener datos con los
cuales determinar:
Situación del funcionamiento digestivo.
Infecciones intestinales causadas por bacterias, virus y hongos.
Infecciones por parásitos intestinales o de órganos anejos.
7. • Glóbulos Rojos: La presencia de eritrocitos en el examen de
heces significa que hay sangrando en alguna parte del tracto
gastrointestinal.
• Leucocitos: Si hay gran cantidad indica irritación bacteriana.
8.
9.
10. CRISTALES
• Oxalato de calcio: son los
cristales más abundantes en
las heces, presentan forma de
sobre, proceden de vegetales
como las espinacas.
• Cristales de colesterol
11. Fosfato amónico-magnésico: Abundantes en las heces
alcalinas en putrefacción; tienen forma de tapa de ataúd
Cristales de Charcot-Leyden: son incoloros, en forma de rombo con los extremos
agudos y de tamaño variable. Provienen de la destrucción de los eosinófilos
12. Cristales de Hematoidina: Los macrófagos fagocitan bacterias, cuerpos
extraños y células para combatir las noxas. Los cristales de Hematoidina se
forman en el interior de los macrófagos que han realizado eritrofagocitosis
pero se pueden ver de igual forma cristales libres luego de 5 a 7 días de
sangrado intersticial profuso.
13.
14. Método coproparasitoscópico directo
Es un método cualitativo, que sirve
para la identificar la presencia de un
determinado parásito.
Preparaciones directas de heces
frescas o no preservadas, los
exámenes ordinarios se hacen con
solución salina isotónica y lugol.
15. Fundamento
• La solución salina isotónica da las condiciones adecuadas para que la
célula se mantenga viva. El medio es ideal para todo tipo de parásito que
pueda encontrarse en las muestras de heces, en cualquier etapa de su
desarrollo.
• El lugol ha demostrado su eficacia para la tinción e identificación de
parásitos intestinales.
El yodo hace que se retarden los movimientos de los flagelados y permite
distinguirlos, tiñe de amarillo los núcleos de los quiste, de pardo las
vacuolas que contienen glucógeno y de azul los grano de almidón
16. En un portaobjetos
se coloca por
separado una gota
de SSI y otra de
lugol
Con un aplicador
de madera se toma
de 1 a 4 mg de
heces
Se mezcla con la
SSI hasta hacer
una suspensión
homogénea
Se retiran las fibras
y otros fragmentos
gruesos que se
observen con el
aplicador
Se coloca el
cubreobjetos
Se realiza lo
mismo con las gota
de lugol
Se observa al
microscopio a 10X
y 40X
17. a) Solución salina fisiológica. Reconocer trofozoítos de protozoos y otros estadios de diagnóstico de
helmintos y protozoos y elementos que aparecen en situaciones anormales.
El mejor método para detectar Entamoeba histolítica, Giardia lamblia, Balantidium coli, Trichomonas
hominis y Blastocytis hominis.
b) Solución de Lugol. Colorear en forma temporal trofozoítos y quistes de protozoos. Inmovilizar
larvas.
Se pueden identificar con facilidad quistes de protozoos.
18. Muestras requeridas
• Heces frescas recolectadas en frasco estéril.
• Cuando la muestra es diarreica o líquida:
Debe tomarse una muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción y
examinar el sedimento.
Si la muestra contiene moco, hacer otra preparación tomando muestra del
moco.
23. AMIBA EN FRESCO
Método o técnica que se
emplea para identificar
parasitos en especifico
cuando se sospecha de
Entamoeba histolytica.
24. FUNDAMENTO
Es un método sencillo de
realizar y que nos ayudara en la
búsqueda de protozoarios, así
como sus quistes y trofozoitos.
El diagnóstico de la amebiasis
se realiza demostrando la
presencia de trofozoitos o
quistes. Permite observar la
motilidad de los
microorganismos: amibas y otro
flagelados.
25. TÉCNICA
La muestra se toma
directamente del recto del
paciente (rotación
delicada).
Utilizar hisopo estéril de
algodón. Colocarlo en un
tubo de ensaye con 2-3
ml de solución salina.
Tomar una gota de la
muestra y colocarla en el
portaobjetos.
Colocar cubre objetos y
observar a microscopio.
Lo que se busca es la
presencia de trofozoitos
de E. histolytica estos
son móviles.
27. Parasitosis
Amibiasis
• Causada por amiba
• Infección intestinal
• Es cosmopolita (países tropicales)
• 10% padece de esta
• Ingiere en forma de quiste
• Puede dañas distintos organos
Vía de entrada
Oral
Alimentos y agua contaminados con materia fecal.
Heces frescas recolectadas en frasco estéril.
Cuando la muestra es diarreica o líquida:
Debe tomarse una muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción y examinar el sedimento.
Si la muestra contiene moco, hacer otra preparación tomando muestra del moco. Cuando la muestra contiene moco con o sin sangre, aquí podrían encontrarse los elementos patógenos en mayor cantidad.
Ejemplo: larvas de S. stercoralis, trofozoítos o quistes de G. lamblia, ooquistes de apicomplexa intestinales, trofozoítos de f. histolytica hematófaga en caso de disentería, trofozoítos y quistes de Balantidium coli, huevos de T. tríchiura atrapados en el moco.
Heces frescas recolectadas en frasco estéril.
Cuando la muestra es diarreica o líquida:
Debe tomarse una muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción y examinar el sedimento.
Si la muestra contiene moco, hacer otra preparación tomando muestra del moco. Cuando la muestra contiene moco con o sin sangre, aquí podrían encontrarse los elementos patógenos en mayor cantidad.
Ejemplo: larvas de S. stercoralis, trofozoítos o quistes de G. lamblia, ooquistes de apicomplexa intestinales, trofozoítos de f. histolytica hematófaga en caso de disentería, trofozoítos y quistes de Balantidium coli, huevos de T. tríchiura atrapados en el moco.
Heces frescas recolectadas en frasco estéril.
Cuando la muestra es diarreica o líquida:
Debe tomarse una muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción y examinar el sedimento.
Si la muestra contiene moco, hacer otra preparación tomando muestra del moco. Cuando la muestra contiene moco con o sin sangre, aquí podrían encontrarse los elementos patógenos en mayor cantidad.
Ejemplo: larvas de S. stercoralis, trofozoítos o quistes de G. lamblia, ooquistes de apicomplexa intestinales, trofozoítos de f. histolytica hematófaga en caso de disentería, trofozoítos y quistes de Balantidium coli, huevos de T. tríchiura atrapados en el moco.
Heces frescas recolectadas en frasco estéril.
Cuando la muestra es diarreica o líquida:
Debe tomarse una muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción y examinar el sedimento.
Si la muestra contiene moco, hacer otra preparación tomando muestra del moco. Cuando la muestra contiene moco con o sin sangre, aquí podrían encontrarse los elementos patógenos en mayor cantidad.
Ejemplo: larvas de S. stercoralis, trofozoítos o quistes de G. lamblia, ooquistes de apicomplexa intestinales, trofozoítos de f. histolytica hematófaga en caso de disentería, trofozoítos y quistes de Balantidium coli, huevos de T. tríchiura atrapados en el moco.
Heces frescas recolectadas en frasco estéril.
Cuando la muestra es diarreica o líquida:
Debe tomarse una muestra del fondo del frasco, o centrifugar una porción y examinar el sedimento.
Si la muestra contiene moco, hacer otra preparación tomando muestra del moco. Cuando la muestra contiene moco con o sin sangre, aquí podrían encontrarse los elementos patógenos en mayor cantidad.
Ejemplo: larvas de S. stercoralis, trofozoítos o quistes de G. lamblia, ooquistes de apicomplexa intestinales, trofozoítos de f. histolytica hematófaga en caso de disentería, trofozoítos y quistes de Balantidium coli, huevos de T. tríchiura atrapados en el moco.