El envío de las muestras debe contener información detallada, envases seguros, temperatura dependiendo del tipo de muestra y un tiempo determinado para la llegada al laboratorio(OIE 2015).

1. UNIVERSIDAD TÉCNICA DE AMBATO
FACULTAD DE CIENCIAS
AGROPECUARIAS
MEDICINA VETERINARIA
PATOLOGÍA CLÍNICA
TEMA: TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS
NOMBRE: AMANDA HERRERA
PROFESOR: DR. MARCO ROSERO

2. INTRODUCCIÓN
• El éxito del diagnóstico de una enfermedad depende de varios
aspectos como la historia, exámenes clínicos, pruebas de
laboratorio, entre otros(Tercero 2015). Los resultados
obtenidos en laboratorio nos permiten determinar
específicamente una patología, estos serán válidos cuando las
muestras tomadas sean correctas y de calidad. Las muestras
son fluidos o tejidos del animal en estudio, se las obtiene
directamente del sitio en sospecha. El envío de las muestras
debe contener información detallada, envases seguros,
temperatura dependiendo del tipo de muestra y un tiempo
determinado para la llegada al laboratorio(OIE 2015). El
objetivo de la siguiente presentación es especificar la toma y
envío de muestras de sangre, orina, heces y líquido sinovial.

3. DESARROLLO
• Extraer la muestra en un
lugar aséptico y con
materiales estériles.
Paso 1
• Colocar en un recipiente
primario e identificarlo, se
puede introducir en una
bolsa plástica hermética.
Paso 2
• Envolver el recipiente en
papel absorbente para
prevenir derrames.
Paso 3
• Poner en caja isotérmica, se puede
añadir hielo. Llenar toda la caja con
otros materiales para evitar el
movimiento de la muestra.
Paso 4
•Enviar la muestra al laboratorio con
una solicitud de análisis detallando los
datos del paciente y los exámenes que
se desean observar de la muestra
•( Figueirideo et.al 2017).
Paso 5
ENVÍODEMUESTRAS

4. SANGRE
De una muestra se
realiza pruebas:
 Hematológicas
 Bioquímicas
 Bacteriológicas
 Serológicas
 Parasitológicas
 Toxicológicas
Tipos de muestras:
• Sangre entera: con anticoagulante.
T° =de 4 °C. Recolección con
movimientos suaves invertidos
• Plasma: se obtiene por centrifugación
y con la recolección de sangre con
anticoagulante
• Suero: se recoge sin anticoagulante,
sin movimientos giratorios(Gallo
2014)
Volumen de extracción por
especie:
• Bovinos: 3.5-5 ml
• Equinos:4-5ml
• Ovinos y caprinos: 3ml
• Porcinos: 3-4ml
• Caninos y Felinos: 1-2ml

5. Materiales
TUBOS JERINGAS Y AGUJAS VACUTAINER
ALGODÓN Y ALCOHOL

6. ESPECIE PUNCIÓN CALIBRE
AGUJA
PULGADA
S
FOTO
Bovino Vena yugular, coxígea,
subcutánea abdominal
14-18 2,5-3,0
Ovino, Caprino Vena yugular 16-18 2,5-3,0
Equino Vena yugular 14-18 2,5-3,0
Porcino Vena cava anterior o
auricular externa
19-21 1,5-4
Canino, Felino Vena cefálica o safena 20-22 1,5

7. Extracción de sangre con sistema de vacío
( uso de vacutainer)
1. Quitar cobertura de la
aguja vacutainer y colocar
en el adaptador del
vacutainer.
2. Desinfectar el área
3. Retirar el capuchón de la
aguja y colocar el
torniquete
4. Punzar la vena e
introducir el tubo hasta
que la aguja del vacutainer
ingrese en el tubo
5. Esperar que la sangre
pase por el tubo.
6. Aflojar el torniquete,
retirar el tubo y luego la
aguja
7. Retirar la aguja del
adaptador y desechar en
un recipiente adecuado
para material
cortopunzante.

8. Extracción de sangre con Jeringa y Aguja
1. Poner la aguja en la
jeringa sin retirar el
capuchón
2. Retirar en aire de la
jeringa moviendo el
émbolo
3. Desinfectar el área
4. Retirar el capuchón de la
aguja y poner el torniquete
5. Punzar la vena, tirar del
émbolo y extraer la
sangre.
6. Sacar torniquete,
separar la aguja de la
jeringa
7. Transferir la sangre a un
tubo de ensayo o a un tubo
con o sin anticoagulante. La
sangre debe fluir por las
paredes del tubo
lentamente para prevenir
hemólisis.

9. ORINA
De una muestra se realiza
pruebas:
Químicas: proteínas,
glucosa, cetonas,
bilirrubina, ph, pigmentos
Sedimento Urinario:
células ( leucocitos,
eritrocitos y epiteliales),
cristales y cilindros

10. Extracción directa de orina
1. Se recolecta la orina con
micción espontánea o
inducida
2. Desinfectar el área y
evitar la humedad
3. Recolectar la orina en un
recipiente colector
universal estéril
4. Colocar el frasco de
orina en un recipiente
hermético
5. Llevar la muestra al
laboratorio antes de las 48
horas
Nota: se puede estimular
en el orificio prepucial o
con masajes en la vulva
para estimular la micción

11. Sondaje o Cateterismo
MACHO
Se emplea con sondas de
mariposa o scalp.
Procedimiento:
1. Descubrir la punta del
pene
2. Coger el catéter e
introducirlo por la uretra
cuidadosamente
3. Esperar a que la orina
descienda por la sonda
4. Se puede presionar la
vejiga despacio para
aumentar el flujo de orina
5. Retirar el catéter
HEMBRA
Se emplea una sonda
metálica de 15 a 20 cm
Procedimiento
1. Desinfección de vulva
2. Lubricante en base de la
sonda
3. Se separan los labios
vulvares por medio de un
espéculo y se introduce la
punta de la sonda por el
orificio uretral
4. Recoger la muestra en un
recipiente universal

12. Cistocentesis
Cistocentesis o punción
suprapúbica
Procedimiento:
1. Realizar una tricotomía
2. Desinfectar la zona
3. Insertar la aguja en la
vejiga
Nota: no se recomienda este
método para uso rutinario
puesto que se puede perforar
otro órgano accidentalmente.

13. HECES
En las muestras se analiza:
La presencia de parásitos
internos
 Mala digestión de los
alimentos.
Presencia de sangre
oculta.
Bacterias patógenas
significativas

14. Materiales: guantes y
frasco recolector
1. Insertar 1 o 2 dedos
dependiendo del animal en
el esfínter anal con
movimientos circulares
2. Los dedos se introducen
con la cara dorsal hacia
arriba para luego girar y
extraer las heces hacia
afuera
4. Colocar en un recipiente
colector de heces
5. Se puede colocar en un
doble empaquetado o en
recipientes herméticos
Nota: Mantener a 4° C las
muestras
Procedimiento extracción de heces

15. LÍQUIDO SINOVIAL
Se obtiene de articulaciones:
escapulohumeral, coxofemoral,
carpo y tarso, dependiendo de la
especie
Exámenes: citológicos y análisis
del agente
Materiales: tubo estéril de 1,5 ml
Nota: La muestra se debe enviar
máximo hasta las 48 horas de
recolección y debe estar en una
temperatura de 2 a 8 °C

16. 1. Sedar al animal
2. Rasurar la zona y
desinfectar
3. Punzar la articulación
con jeringas de 0.8 mm de
diámetro y 40 mm de largo
4. Separar la muestra en
un tubo con
anticoagulante para
citología y en otro sin
anticoagulante para
identificar al agente
5. Retirar la aguja
6. Aplicar un vendaje en el
área
Procedimiento extracción de líquido sinovial

17. DISCUSIÓN
• Pérez (2017) nos menciona que: El envío al laboratorio
debe hacerse en el menor tiempo posible y de forma
apropiada para evitar el deterioro o alteración de la
muestra. En términos generales, el tiempo entre la
obtención de la muestra y su llegada al laboratorio no
debe exceder las 24 horas. Por lo tanto, lo expuesto por
Pérez (2017) tiene mucha relevancia puesto que en el
menor tiempo posible las muestras generarán resultados
específicos para una enfermedad. Además, existen
muestras que a partir de las 24 horas pueden presentar
autolisis en algunas células.

18. CONCLUSIONES
• La calidad y la rapidez con la que se tomen las
muestras permitirá obtener resultados de
laboratorio adecuados para el diagnóstico de
una enfermedad.
• Es importante recolectar las muestras en
envases seguros y térmicos que eviten
derrames o cambios en la temperatura para que
las muestras puedan llegar a salvo al
laboratorio.

19. BIBLIOGRAFÍA
• Figueiredo, G; Augusto, J; Martini, M .2017. Manual
Veterinario de Toma y Envío de Muestras. Panaftosa. 218p.
ISSN 0101-6970
• Gallo, C. 2014. Manual de diagnóstico con énfasis en
laboratorio clínico veterinario. Managua, NI. 211p.
• OIE.2015. Código Sanitario para los Animales Terrestres.
• Pérez, A. 2017. UN CASO APLICADO AL ÁREA DE
INGRESO DE MUESTRAS SEROLÓGICAS.
Guatemala.p.4.
• Tercero, D. 2015. TOMA, CONSERVACIÓN Y ENVÍO
CE MUESTRAS REPRESENTATIVAS AL
LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO VETERINARIO.