M.B

1. Nancy Catunta
Liliana Cuellar
Edwin Mamani
Britania Flor
Yeheral Rodriguez
Luis Opi
Monica Aramayo
Jhomara Pardo
Dicla García
Joel Pereira
Rosmey Matha

3. Desde que el médico
requiere una muestra de
un paciente hasta que
evalúa los resultados de
ésta, hay que seguir un
proceso, el cual,
podemos resumirlo en
cuatro fases:

4.  Es importante que en estas fases no se cometan errores que puedan falsificar los resultados de
la analítica, es por ello, por lo que debemos hacer bien nuestro trabajo y procurar obtener bien la
muestra. Además, aunque no seamos nosotros los responsables de la obtención por el tipo de
muestra que sea, por ejemplo de sangre, sí intervendremos en el proceso de preparación al
paciente y el material necesario, ayudando en el procedimiento, recogiendo el material y
acomodando al usuario o usuaria al terminar el proceso.

5.  Hay diferentes tipos de muestras biológicas: orina, heces, esputo, sangre, .. las que más
frecuentemente recojamos serán las de orina por la información diagnóstica que puede
obtenerse sin ser una muestra invasiva, lo que facilita su obtención y la disponibilidad del
paciente para ello. No obstante aquí estudiaremos las diferentes técnicas de recogida que
podamos encontrarnos.

8. VENTAJAS Y DESVENTAJAS
VENTAJAS
SANGRE
DESVENTAJAS
Útil para el estudio de gases y
sustancias volátiles, para la
identificación de tóxicos ácidos
Los tóxicos orgánicos básicos
alcanzan concentraciones
muy bajas en la sangre,
siendo difícil su detección.
ORINA FACIL DE TOMAS Y NO INVASIVO
CONTAMINACION
FRECUENTE

9. Requiere dos visitas a la clínica
El diagnóstico toma al menos de 2 a
3 días
Alta carga de trabajo
Alto riesgo de perder un caso si
solamente se recibe la primera
muestra
Una muestra del paciente
está disponible en caso que
el paciente no regrese con la
muestra de la mañana
ESPUTO
Un resultado Negativo no
descarta Intoxicación.
Resultados no indican Grado de
Intoxicación ya que se refieren
al Tóxico no Absorbido.
Puede encontrarse cápsulas o
tabletas enteras de fácil
identificación.
Tóxico en elevada concentración
y sin metabolizar, lo cuál facilita
su detección.
CONTENIDO
GASTRICO

10. Toma de muestra de
sangre
Extracción utilizando soluciones no alcohólicas
Recipientes de plástico o vidrio con tapón de
goma, en lo posible precintado para cierre
hermético. Agregar fluoruro de sodio al 1%.

11. Pacientes vivos
 10 ml de sangre con heparina

12. Cadaveres
 Sangre de arteria femoral (10 ml)
 Sangre de cavidades cardíacas (25 a 50 ml)
 Sangre periférica (niños mayores)

13. CANTIDAD DE SANGRE
DEPENDE DE:
• Sustancias a investigar
• Método analítico que se va a utilizar
• Posibilidades de repetición
• Resguardo legal de una reserva para re-pericias.
La cantidad de muestra apropiada dependerá del
método analítico disponible y de la cantidad
de analitos diferentes que deban investigarse

14. Procedimiento para su recolección: Se deberá recoger la muestra de sangre
en dos tubos, uno de ellos con anticoagulante (EDTA) y otro tubo sin
anticoagulante. El volumen mínimo recomendable en cada caso será de 10
mL.
Tomar 20 mL de sangre con una jeringa y dividir el contenido en ambos tubos.
Los recipientes utilizados para recoger las muestras deben ser tubos de
polipropileno o similar con cierre hermético, de tapa a rosca y sellados con
cinta adhesiva. Es conveniente utilizar material nuevo o virgen, para evitar
contaminaciones.
Sangre (20 mL)
10 mL con Anticoagulante (EDTA) **
10 mL sin Anticoagulante ***

15. PRESERVACIÓN:
 Las muestras deben estar exentas de contaminación química externa (polvo,
pelos, tierra, etc),
 Las muestras deben ser congeladas a -20ºC inmediatamente tras su recolección
y enviadas manteniendo estas condiciones hasta su llegada al laboratorio. La
única excepción a esta regla se da en la muestra de sangre, la cual se
mantendrá a temperatura de refrigeración (aproximadamente +4ºC)
 Cada muestra debe ir contenida en un recipiente independiente (tipo envase
de muestras de orina o bolsa de plástico con cierre ziploc)
 Todos los contenedores deben estar herméticamente cerrados, tanto si son
bolsas o envases de plástico. En el caso de muestras en las que se deban
determinar niveles traza de compuestos orgánicos tipo PCBs o plaguicidas
podría usarse papel de aluminio para envolver la muestra antes de su
introducción en el envase.

16. En general con agregado de Na F y refrigeración es
satisfactorio para una gran gamma de tóxicos.
Para drogas de abuso (ej: cocaína) requiere además
pH ácido.
En caso de compuestos volátiles, tales como
amonio o intoxicación por cianuro, se debe
congelar inmediatamente el contenido ruminal,
sangre y suero tras la toma, con el fin de evitar su
pérdida por volatilización. v Todos los envases

17. ORINA

19. MUESTRA DE ORINA

21. PRUEBA DE DETECCIÓN DE DROGAS EN ORINA
 Pack Básico: detección de cocaína y Marihuana
 Pack Completo: detección de Anfetaminas ; Cocaina ;
Cannabis.,Benzodiacepinas, Antidepresivos Tricíclicos,
Barbitúricos, Metanfetamina, Morfina, Metadona, Extasis,

22. ORINA
• Ventajas:
- altas concentraciones de tóxico
- posibilidad de empleo de
inmunoensayos
- disponibilidad de gran cantidad de
muestra
- no necesita la adición de
conservantes
• Inconvenientes:
- no correlación con el estado clínico

23. Drogas de abuso
Definición.-
Es el uso de drogas ilícitas o uso de medicamentos de
venta con receta medica o de venta libre, con fines
diferentes a los que están destinados o para su consumo
en cantidades excesivas.

24. Clasificación:
• Azul.- drogas depresoras
• Amarillo.- drogas estimulantes
• Verde,. Drogas alucinógenas
• Morado.- drogas con efecto alucinógeno o estimulante
Tiempo de detección normal
• Cocaína 2 a 3 días
• Cannabis sativa 3 a 5 días para el consumidor
• Ocasional 14 días para el consumidor
• Crónico 30 días gran uso crónico
• Benzodiazepina 2 a 7 días dependiendo de la benzodiazepina
• Anfetaminas 3 a 5 días

25. Contenido gástrico
Es el procedimiento que se usa para
limpiar el estomago de sangre, venenos,
toxicos u otras sustancias ; un tubo es
insertado en el estomago y atreves de este
se irriga fluidos que posteriormente se
extraen para remover el material que
pueda estar contenido dentro del órgano.
El análisis gástrico de ácido puede ser
cualitativo o cuantitativo. El análisis
cualitativo tiene por objeto determinar
si el estómago es capaz de producir
ácido clorhídrico y permite diferenciar
algunas condiciones que se presentan
con una sintomatología parecida.

26. VENTAJAS
DESVENTAJAS

27. PELOS COMO
MATRIZ DE
ANALISIS

28. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS
ESTRUCTURA
QUIMICA
70% agua
28% proteínas
2% lípidos
ESTRUCTURA Y
MORFOLOGIA
 Cutícula o escamas
 Corteza o córtex
 medula

29. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS
MUESTRA
LABORATORIO
OBSERVACION
MICROSCOPICA
Y LIMPIEZA
EXAMEN DEL PELO
EN CRIMINALISTA

30. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS
1. ORIGEN DEL PELO
PELO HUMANO O ANIMAL
HUMANO ANIMAL
Canal medular Red área granulosa
Células medulares indivisible
Índice medular 0,30
Pelo del vello sin medula
Contiene área mas o menos voluminoso
Células medulares aparentes
Índice medular 0,50
Medula en escalones en los pelos del vello
Sustancia
cortical
Forma un grueso manguito
Pigmento en granulaciones
Constituye un cilindro hueco
Pigmento en granulaciones irregulares
Cutícula Escamas delgadas poco salientes
Pequeña e imbricadas
Escamas gruesas, salientes menos
imbricadas que en el hombre

31. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS
2.DETERMINACION DE LA RAZA
3.SEXO DEL INDIVIDUO
4.GRUPO SANGUINEO

32. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS
5.REGION DEL CUERPO
6.CABELLO TEÑIDO
7.CABELLO CORTADO, CAIDO O ARRANCADO
8.ENFERMEDAD DEL PELO

33. PELOS COMO MATRIZ DE ANALISIS
ANALISIS DEL CABELLO POR:
 ENSAYO ENZIMATICOS (invasiva)
 ACTIVACION NEUTRONICO (no invasiva)

49. INTERPRETACIÓN DE
RESULTADOS

50. El toxico no detectado puede deberse:
Defecto del método analítico (extracción).
Descomposición del toxico.
Eliminación del toxico antes de la muerte.
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

51. DIFERENCIAS
INDIVIDUALES
Diferente sensibilidad de los
receptores.
Diferente capacidad de las
proteínas plasmáticas
Diferente adaptación metabólica
ACCIÓN DE MÁS DE UN XENOBIÓTICO EL
CUÁL POR SINERGIA, POTENCIACIÓN O
ANTAGONISMO
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

52. COMPARACIÓN ERRÓNEA DE DIFERENTES
FÁRMACOS RELACIONADOS QUÍMICAMENTE
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
DIFERENTE FARMACODINAMIA DE UN FÁRMACO EN
FUNCIÓN DE LA HORA DEL DÍA O DE LA ÉPOCA DEL AÑO
EN QUE SE ADMINISTRA.

53. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
DIFERENCIAS DEBIDAS A LAS
TÉCNICAS ANALÍTICAS
Diferencias en la sensibilidad y exactitud
Diferencias entre las técnicas analíticas que
distinguen entre xenobióticos y metabolitos y
las que no
Técnicas analíticas que emplean como
referencias disoluciones acuosas del
producto.

54. DIFUSIÓN POSTMORTEM
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
SÓLO PARA CIERTAS SUSTANCIAS HAY
SUFICIENTE SOPORTE ESTADÍSTICO

55. RECORDAR
 la muestra para análisis toxicológica debe recogerse
tomando en cuenta condiciones
 También considerar la calidad, cantidad de la
conservación de la muestra

56. RECORDAR
 los tóxicos gaseosos o volátiles se debe evitar que contenga cámara de aire
en el frasco, debe ser herméticamente bien cerrados.
 No añadir conservantes en muestras
 evitar conservar muestras de vísceras con formol para análisis toxicológico

57. SELECCIÓN DE LA MUESTRA
Selección, la preparación y
remisión de acuerdo al
análisis solicitado

58. CANTIDAD DE LA MUESTRA
La cantidad de la muestra de
acuerdo al análisis solicitado y
método a ser realizado.
• Sangre tubo seco 5 cc,
• orina 50 ml
• contenido gástrico 25 ml
ENVASADO Y CONSERVACIÓN
Colocar cada tipo demuestras
en recipientes individualizados
Se debe disponer de
refrigeradores con una
temperatura 2 a 8 ºC

59. ETIQUETA DE LA MUESTRA
Cada muestra debe estar rotulado
con letra clara y legible
• Nombre y apellido
• Fecha
• Hora
• Tipo demuestra
CADENA CUSTODIO
Es un procedimiento escrito que
garantice la integridad de la muestra en
condiciones optimas