La tinción de Gram permite diferenciar bacterias en dos grupos principales mediante la observación microscópica después de la tinción. Las bacterias Gram-positivas retienen el colorante cristal violeta y se tiñen de azul, mientras que las bacterias Gram-negativas pierden el colorante durante el proceso y se tiñen de rosa. Esta diferenciación se debe a las diferencias estructurales en la pared celular de las bacterias.
1. COLORACION DE GRAM
La Coloración o Tinción de Gram
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1. FUNDAMENTOS TEORICOS
Esta tinción fue desarrollada empíricamente por el médico danés Hans Christian Joachim
Gram en 1884. A pesar del tiempo transcurrido, la tinción apenas se ha modificado y es uno de los
primeros pasos que se realiza para cualquier identificación bacteriana. La técnica es capaz de
diferenciar dos grandes grupos de eubacterias: Gram positivas (+) y Gram negativas (-).
En el estudio de la ciencia que nos ocupa, la microbiología, es fundamental la observación de los
microorganismos. Esta observación se hace necesaria para su clasificación e identificación. Para
ello se usa el microscopio tanto óptico como electrónico, y en sus diversas variantes (microscopio
de rayos UV, electrónico de barrido, de contraste de fase, de campo oscuro…). Nosotros
abordaremos únicamente el microscopio óptico compuesto de dos lentes (condensador y
objetivo).
Un microscopio suele tener cuatro objetivos, pero en microbiología se usa preferentemente el
objetivo de inmersión, aunque para visualizar una preparación siempre se recomienda empezar
por el objetivo de x10 y una vez localizada la muestra ir subiendo poco a poco el nivel de
aumentos.
Al microscopio óptico hay dos formas de ver las preparaciones:
1. Preparaciones en fresco con el objetivo seco. Tiene el inconveniente de que las preparaciones
son muy difíciles de ver debido al poco contraste del medio que les rodea.
2. Preparaciones fijadas y teñidas con el objetivo de inmersión. Se matan las bacterias, pero son
más visibles y su contraste es superior y de mayor calidad.
Entre los tipos de preparaciones del segundo tipo, hay un método de tinción que se usa
universalmente para distinguir a las bacterias en dos grandes grupos: se trata de la Coloración o
Tinción de Gram. Es una tinción diferencial que basa su distinción en la estructura diferente de la
pared bacteriana de las bacteria Gram (+) (pared más gruesa, y una sola capa de peptidoglucano)
y de las Gram (-) (pared más delgada y dividida en dos partes).
Para explicar el mecanismo de la tinción de Gram se han propuesto varias hipótesis fundadas en
la naturaleza química de las paredes celulares de los microorganismos. Los dos grupos
bacterianos que distingue esta técnica difieren en el color con el que finalmente aparecen. Las
bacterias Gram (+) se teñirán de azul por el cristal violeta y no perderán esta coloración durante
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COLORACION DE GRAM
los pasos sucesivos. Las bacterias Gram (-) perderán la coloración inicial del cristal violeta en los
siguientes pasos y se teñirán de rosa debido a la safranina.
La diferencia está determinada por la composición de su envoltura celular. Las bacterias Gram
(+) poseen una malla de peptidoglicano en su parte más externa, mientras que las Gram (-),
recubriendo una fina capa de peptidoglicano, presentan una membrana externa que envuelve toda
la célula.
Una de las precauciones al realizar esta tinción es la de trabajar con cultivos en fase exponencial.
De lo contrario se pueden obtener resultados falsos. Por ejemplo, las bacterias Gram (+) en fase
estacionaria pueden aparecer como Gram (-).
2. MATERIALES Y METODOS
Los tiempos de exposición a los colorantes son orientativos. Cada vez que se prepara la batería
de colorantes para realizar la tinción de Gram presentan algunas diferencias respecto a los
preparados en otro momento, por lo que puede ser necesario ajustar los tiempos.
En un laboratorio de Microbiología, cada vez que se preparan los colorantes, se suelen hacer
pruebas con cultivos patrón de los dos tipos (Gram (+) y Gram (-)) para ajustar así los tiempos y
tener la certeza de que el resultado de todas las tinciones que se hagan mientras duren esos
colorantes son fiables.
Otra posibilidad es adquirir el equipo completo de colorantes ya preparados, pero es mucho más
caro.
Los pasos más estandarizados a nivel mundial, son los siguientes:
a. Extensión: En un porta bien limpio (con alcohol, papel de filtro y flameado) se coloca una gota
de agua destilada a la que con el asa de siembra, previamente esterilizada a la llama, se lleva una
pequeña cantidad de suspensión de bacterias o, en su caso, de una colonia.
Con el asa se extiende la gota y las bacterias sobre el porta y se fija la extensión por el calor,
calentando suavemente a la llama del mechero hasta que se seque.
La figura detalla a continuación el procedimiento descripto.
3. COLORACION DE GRAM
b. Coloración:
a) 1 minuto en Cristal violeta de Hucker (colorante inicial)
b) se lava con agua destilada
c) 1 minuto en solución de Lugol (mordiente)
d) se decolora con Alcohol de 95º (decolorante)
e) se lava con agua destilada
f) 1 minuto en Fucsina o Safranina (colorante de contraste)
g) se lava con agua corriente
h) se seca suavemente y sin frotar con papel de filtro
Una vez que la preparación está totalmente seca, poner una gota muy pequeña de aceite de cedro
y observar al microscopio con el objetivo de inmersión. A continuación, brindaremos algunos
matices de los colorantes empleados:
1. Colorante básico Cristal Violeta o Violeta de Genciana: Es el primer colorante que se echa
sobre el frotis previamente preparado. Es un colorante selectivo que tiñe a todos los
microorganismos cargados negativamente. Se deja actuar durante un minuto y se lava con
agua a continuación.
2. Solución de Lugol. Producto compuesto de yodo y yoduro potásico. Es un mordiente, que
intensifica al Cristal Violeta haciendo que precipite. Fija las tinciones y aumenta la afinidad
entre el colorante y las células. Los mordientes empleados suelen ser sales metálicas, ácidos o
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4. COLORACION DE GRAM
bases Se deja actuar un minuto y se lava con alcohol, el tiempo justo para que no se arrastre el
colorante del todo.
3. Alcohol 96º. El alcohol retira el colorante de las Gram (-) debido a su diferente estructura de la
pared celular (tamaño de los poros). A veces se usa otro agente decolorante o disolvente
orgánico como alcohol-acetona (1:1).
4. Safranina o Fucsina: Colorantes básicos diferenciadores. Tiñen a las bacterias Gram (-). Se
dejan actuar treinta segundos y se lavan con agua. Siempre se añade ésta contratinción con
fucsina o eosina para teñir las bacterias decoloradas de color rojo y hacerlas más visibles. Se
denominan bacterias Gram positivas a aquellas que retienen la tinción azul y bacterias Gram
negativas a las que quedan decoloradas. Algunas bacterias presentan capacidad variable de
tinción de Gram y se llaman Gram variables. Bacterias Gram positivas típicas son los
estafilococos que producen forúnculos; Gram negativas representativas son la Escherichia coli
de la flora intestinal o los bacilos de la tos ferina; Gram variables son los bacilos de Koch de la
tuberculosis
Como puede verse en definitiva y una vez finalizada la tinción, las bacterias Gram (-) estarán
teñidas de un color rosáceo, y las Gram (+) de un color violeta. Esto sirve para diferenciarlas
claramente al microscopio óptico.
3. OBSERVACIÓN
Debe utilizarse el objetivo de inmersión. Se coloca una gota de aceite de cedro sobre la
preparación, se enfoca, preferentemente, con el micrométrico. Después de utilizar el objetivo de
inmersión debe limpiarse con xilol.
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5. COLORACION DE GRAM
4. RESUMEN Y FOTOGRAFIAS
La tinción de Gram, permite la demostración de bacterias y sus características tintoriales con la
tinción de Gram. En la imagen una tinción de Gram en la que se observa la presencia de cocos
gram positivos dispuestos en parejas y cadenas (Streptococcus) y en acúmulos (Staphylococcus
aureus)
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7. COLORACION DE GRAM
Pared Gram (+)
* capa densa y uniforme de 200 a 800 A)
* ácidos teicoicos
* polisacáridos
* proteínas (pocas veces)
* glicopéptido (50% del peso seco)
Pared Gram (-)
:
*capa interna delgada de 20 a 30 A
cubierta por capas externas de densidad
menor)
* lipopolisacáridos
* lipoproteínas
* proteínas
* glicopéptido (10% del peso seco)
Tinción Gram (-) de diplococos en PMN
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8. COLORACION DE GRAM
Bacilos Gram (+)
Enterobacter Gram (-)
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CORDOBA, 11 de enero de 2007.
Teniente Coronel Veterinario SANTIAGO PABLO BAGGINI
JEFE del SERVICIO de BROMATOLOGÍA – HOSPITAL MILITAR REGIONAL CÓRDOBA