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MLPA
Multiplex ligation-
dependent probe
amplification
Dra. Samantha González Ávila
Residente de Primer año de
Genética Médica
Laboratorio de Biología Molecular
Introducción
Variante de PCR
Amplificar diferentes fragmentos
de DNA (sondas ligadas)
En una misma reacción mediante
un solo par de cebadores y bajo
las mismas condiciones de ciclos
de temperatura
Se pueden amplificar regiones
génicas cercanas o
adyacentes con la finalidad de
determinar con certeza la
dosis génica en muestras de
DNA de pacientes con
mutaciones como deleciones o
duplicaciones grandes en
estado heterocigoto,
homocigoto o hemicigoto
Fundamento
Utiliza sondas de dos oligonucleótidos que reconocen sitios
adyacentes en el DNA
Cada región a analizar posee dos hemisondas con secuencias
inmediatamente adyacentes
Ambas sondas poseen una región de unión al primer (forward y
reverse) y solo una posee una secuencia de identificación
Todas las sondas que diseñemos para los targets utilizan un único
par de primers para la amplificación de todas las secuencias
Pasos: Desnaturalización
Hibridación
Ligacion
Amplificación
(PCR)
Separación de
fragmentos
Análisis de datos
Pasos:
Desnaturalización:
• 98°C durante 5 min
Incubar con sondas de hibridación:
• Se deja durante 1 min a 95 °
16 horas a 60°C
Pasos:
Ligación:
• Adicionar ligasa master mix (buffer de ligasa y ligasa 65 que es termoestable)
Se incuba 15 min a 54°C
Para inactivar, poner a 98° durante 5 min. ( para que se termine la ligación)
Si encuentra alguna alteración en la
hibridación no liga
Pasos
Amplificación por PCR:
• Se añade otro master mix de la polimerasa
• Cebador Forward ( con fluorocromo)
• Cebador reverse
• dNTPs
• Los primers no amplifican secuencias diana
• Cantidad de producto ligado es medida del numero de secuencias diana
Pasos
Separar los fragmentos por tamaño
• Como se añadió el fluorocromo que viene en la amplificación se puede
diferenciar y cuantificar en la electroforesis capilar
• También hay marcador de peso molecular
• Amplicones y el cargador de peso molecular tienen fluorocromos
diferentes
Análisis de MLPA
El análisis de los datos requiere varios pasos
Normalización de los datos: compara cada dato de la
muestra con datos de muestra de referencia
Intranormalización: esas intensidades absolutas que
se observan en el electroferograma se van a
convertir en valores relativos para poderlos comparar
con las muestras de referencia
Calcula asi una relación para cada sonda en cada
muestra
Se visualiza la intensidad de señal de cada sonda de
la muestra en el ratiochart
MRC-Holland desarrolló Coffalyser.net
Interpretación de resultados
Una disminución en el área de la señal indica deleción, al contrario un
incremento en el área de señal indica aumento del número de copias
Las deleciones o duplicaciones en heterocigosis producen una reducción o
aumento de la señal del 25% al 50% aprox de lo esperado para cada sonda
Cuidad con la interpretación de las deleciones o duplicaciones en
hemicigosis del cromosoma X en el varón
En ocasiones la interpretación es complicada y obliga a repetir el ensayo.
Cuidado con las deleciones o duplicaciones de una sola sonda
Como reconocer la calidad de la
muestra
Fragmento estándar: Es con el cual se hacen la comparación de todo lo demás
Permiten conocer si la cantidad de DNA fue adecuada
Va a determinar si la desnaturalización del DNA fue completa
Identificar si es femenino o masculino
¿Cómo resolver los posibles
problemas?
¿Cómo resolver los posibles
problemas?
¿Cómo resolver los posibles
problemas ?
Interpretación de resultados
Interpretación de resultados
Tener cuidado…
Tipos de MLPA
Según la técnica Técnica
clásica
Deleciones/Duplicaciones
Variantes puntuales
específicas
Variantes de
la técnica
MS-MLPA
RT-MLPA
Variantes de la técnica
MS-MLPA
• MLPA específico de
metilación
• Detectar alteraciones
epigenéticas
• Cambios en el patrón
de metilación del DNA
en genes concretos
RT-MLPA
• MLPA transcriptasa
reversa
• Cuantificar la cantidad
de mRNA sintetizados
por genes de interés
específicos
• Se inicia desde RNA
• Retrotranscripción
RT-MLPA MS-MLPA
Limitaciones
Resultados dependen de la calidad de la muestra que
se analiza
Cambios en la secuencia de DNA donde se une la
sonda del MLPA puede modificar el resultado
Desnaturalización inadecuada de la muestra se
asocia a falsas deleciones
No detecta: reordenamientos genómicos balanceados o
del/dup fuera de la región donde se une la sonda
Ejemplo
Referencias
• Pierce B; Genética, un enfoque conceptual, 2da edición, Panamericana.
• Mérida F. & Moreno E; Manual para técnico superior de Laboratorio Clínico y
Biomédico, Panamericana, 2015.
• Alecia S. Willis; Ignatia van den Veyver; Christine M. Eng (2012). Multiplex
ligation-dependent probe amplification (MLPA) and prenatal día
• Theophilus, Bimal D.M.; Rapley, Ralph (2011). [Methods in Molecular Biology]
PCR Mutation Detection Protocols Volume 688 || Multiplex Ligation-Dependent
Probe Amplification (MLPA®) for the Detection of Copy Number Variation in
Genomic Sequences. , 10.1007/978-1-60761-947-5(Chapter 8), 97–
126. doi:10.1007/978-1-60761-947-5_8gnosis. , 32(4), 315–
320. doi:10.1002/pd.3860
• No partes de un DNA total, si no de concentración 50-100 ng/ml
• Hibridacion dura mas porque son varias sondas

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MLPA: Amplificación de múltiples fragmentos mediante sondas ligadas

  • 1. MLPA Multiplex ligation- dependent probe amplification Dra. Samantha González Ávila Residente de Primer año de Genética Médica Laboratorio de Biología Molecular
  • 2.
  • 3. Introducción Variante de PCR Amplificar diferentes fragmentos de DNA (sondas ligadas) En una misma reacción mediante un solo par de cebadores y bajo las mismas condiciones de ciclos de temperatura Se pueden amplificar regiones génicas cercanas o adyacentes con la finalidad de determinar con certeza la dosis génica en muestras de DNA de pacientes con mutaciones como deleciones o duplicaciones grandes en estado heterocigoto, homocigoto o hemicigoto
  • 4. Fundamento Utiliza sondas de dos oligonucleótidos que reconocen sitios adyacentes en el DNA Cada región a analizar posee dos hemisondas con secuencias inmediatamente adyacentes Ambas sondas poseen una región de unión al primer (forward y reverse) y solo una posee una secuencia de identificación Todas las sondas que diseñemos para los targets utilizan un único par de primers para la amplificación de todas las secuencias
  • 6. Pasos: Desnaturalización: • 98°C durante 5 min Incubar con sondas de hibridación: • Se deja durante 1 min a 95 ° 16 horas a 60°C
  • 7. Pasos: Ligación: • Adicionar ligasa master mix (buffer de ligasa y ligasa 65 que es termoestable) Se incuba 15 min a 54°C Para inactivar, poner a 98° durante 5 min. ( para que se termine la ligación) Si encuentra alguna alteración en la hibridación no liga
  • 8. Pasos Amplificación por PCR: • Se añade otro master mix de la polimerasa • Cebador Forward ( con fluorocromo) • Cebador reverse • dNTPs • Los primers no amplifican secuencias diana • Cantidad de producto ligado es medida del numero de secuencias diana
  • 9. Pasos Separar los fragmentos por tamaño • Como se añadió el fluorocromo que viene en la amplificación se puede diferenciar y cuantificar en la electroforesis capilar • También hay marcador de peso molecular • Amplicones y el cargador de peso molecular tienen fluorocromos diferentes
  • 10.
  • 11. Análisis de MLPA El análisis de los datos requiere varios pasos Normalización de los datos: compara cada dato de la muestra con datos de muestra de referencia Intranormalización: esas intensidades absolutas que se observan en el electroferograma se van a convertir en valores relativos para poderlos comparar con las muestras de referencia Calcula asi una relación para cada sonda en cada muestra Se visualiza la intensidad de señal de cada sonda de la muestra en el ratiochart MRC-Holland desarrolló Coffalyser.net
  • 12.
  • 13.
  • 14. Interpretación de resultados Una disminución en el área de la señal indica deleción, al contrario un incremento en el área de señal indica aumento del número de copias Las deleciones o duplicaciones en heterocigosis producen una reducción o aumento de la señal del 25% al 50% aprox de lo esperado para cada sonda Cuidad con la interpretación de las deleciones o duplicaciones en hemicigosis del cromosoma X en el varón En ocasiones la interpretación es complicada y obliga a repetir el ensayo. Cuidado con las deleciones o duplicaciones de una sola sonda
  • 15. Como reconocer la calidad de la muestra Fragmento estándar: Es con el cual se hacen la comparación de todo lo demás
  • 16. Permiten conocer si la cantidad de DNA fue adecuada
  • 17.
  • 18. Va a determinar si la desnaturalización del DNA fue completa
  • 19.
  • 20. Identificar si es femenino o masculino
  • 21.
  • 22. ¿Cómo resolver los posibles problemas?
  • 23. ¿Cómo resolver los posibles problemas?
  • 24. ¿Cómo resolver los posibles problemas ?
  • 28. Tipos de MLPA Según la técnica Técnica clásica Deleciones/Duplicaciones Variantes puntuales específicas Variantes de la técnica MS-MLPA RT-MLPA
  • 29. Variantes de la técnica MS-MLPA • MLPA específico de metilación • Detectar alteraciones epigenéticas • Cambios en el patrón de metilación del DNA en genes concretos RT-MLPA • MLPA transcriptasa reversa • Cuantificar la cantidad de mRNA sintetizados por genes de interés específicos • Se inicia desde RNA • Retrotranscripción
  • 31. Limitaciones Resultados dependen de la calidad de la muestra que se analiza Cambios en la secuencia de DNA donde se une la sonda del MLPA puede modificar el resultado Desnaturalización inadecuada de la muestra se asocia a falsas deleciones No detecta: reordenamientos genómicos balanceados o del/dup fuera de la región donde se une la sonda
  • 33.
  • 34. Referencias • Pierce B; Genética, un enfoque conceptual, 2da edición, Panamericana. • Mérida F. & Moreno E; Manual para técnico superior de Laboratorio Clínico y Biomédico, Panamericana, 2015. • Alecia S. Willis; Ignatia van den Veyver; Christine M. Eng (2012). Multiplex ligation-dependent probe amplification (MLPA) and prenatal día • Theophilus, Bimal D.M.; Rapley, Ralph (2011). [Methods in Molecular Biology] PCR Mutation Detection Protocols Volume 688 || Multiplex Ligation-Dependent Probe Amplification (MLPA®) for the Detection of Copy Number Variation in Genomic Sequences. , 10.1007/978-1-60761-947-5(Chapter 8), 97– 126. doi:10.1007/978-1-60761-947-5_8gnosis. , 32(4), 315– 320. doi:10.1002/pd.3860
  • 35. • No partes de un DNA total, si no de concentración 50-100 ng/ml • Hibridacion dura mas porque son varias sondas

Notas del editor

  1. En la técnica se recomienda emplear como controles muestras de DNA con deleciones o duplicaciones génicas grandes ya caracterizadas, desde un exón hasta varios de ellos o incluso loci contiguos La capacidad de amplificar varias sondas en la misma reacción hace posible delimitar con mayor precisión los puntos de rotura y los sitios génicos de reunión de las deleciones o duplicaciones, asi como la extensión de dichos rearreglos was developed by the “MRC-Holland” company and published in 2002 as a relative quantification method for the targeted screening for copy number changes in DNA
  2. Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
  3. Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
  4. Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
  5. Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo. Separar los fragmentos por tamaño y es donde cobrra importancia la secuencia de relleno
  6. Las líneas: promedio El cuadrado muestra el intervalo de confianza de las muestras de referencia Y los puntos negros es el intervalo de confianza estimado de la muestra que se esta estudiando. Si el punto negro se sale del intervalo de confianza y se va hacia abajo: deleción, si se va hacia arriba : duplicacion
  7. Interpretación de resultados: Una disminución en el área de la señal indica deleción, al contrario un incremento en el área de señal indica aumento del número de copias Las deleciones o duplicaciones en heterocigosis producen una reducción o aumento de la señal del 25% al 50% aprox de lo esperado para cada sonda Cuidad con la interpretación de las deleciones o duplicaciones en hemicigosis del cromosoma X en el varón En ocasiones la interpretación es complicada y obliga a repetir el ensayo. Cuidado con las deleciones o duplicaciones de una sola sonda
  8. Existen estas señales al inicio del electroferograma, que son fragmentos cortos . Fragmento estándar Pocas veces va a verse afectado por la desnaturalización. Es el fragmento con el cual se hacen la comparación de todo lo demas
  9. Fragmentos q: permiten conocer si la cantidad de dna fue adecuada. Si se tiene mucho dna, van a tender a irse a cero Si hay poco dna , los fragmentos van a ser elevados Si no hat dna, los fragmentos van a estar muy elevadas
  10. El porcentaje para decir que esta optima la cantidad. Fragmentos q deben estar disminuidos en menos 33% del fragmento estandar
  11. Fragmentos D: están a lado y lado del fragmento estándar. Lo que principalmente van a medir es , determinar si la denaturalizacion del dna fue completa
  12. Lo normal es que se encuentren un poco mas elevados o al mismo nivel de el fragmento estándar. Cuando hay denaturalizacion incompleta, se van a ver disminuidos Se unen a islas de cpg.
  13. Fragmentos xy Es para identificar el sexo de la muestra
  14. En las mutaciones puntuales, las sondas de MLPA van a ir con la función de buscar esa mutación que estamos sospechando en el paciente. La persona que no tenga la mutación especifica que estoy buscando, el oligonucleótido no se va a unir adecuadamente a la secuencia objetivo y la ligasa no genera la ligación y no se va amplificar y por tanto no se va a ver el pico en la electroforesis
  15. Para estudio de deleciones duplicaciones. Ej: Duchenne (DMD) A mano izquierda se ve la electroforesis. Se ven esos 4 puntos elevados que cuando se ven en la curva de normalización son los que están por arriba de la línea azul y aparte están fuera del rango de confianza.. Ahí se ve una duplicación. La región gris se encuentra la lectura de sondas de referenica
  16. En el electroferograma vemos zona donde no hay sondas probablemente donde esta la deleción y cuando vemos la curva de normlaizacion, la sonda se encuentra en cero. Pero es posible que si hay alteración en la hibridación no va amplificar y se va a tomar como deleción. Se ha visto en Duchenne que hay mutaciones puntuales y por eso la sonda no se hibridaba
  17. MS-MLPA: En esta primero se utilizan enzimas de digestion que es especifica o que es sensible a la metilacion La enzima donde esta metilada no va hacer digestion, no va a cortar Donde no hay metilacion va haber digestion completa Una de las muestras técnica convencional y la otra técnica de metilacion } Cuando si se corta es como si hubiera una alteración en la ligación y esos fragmentos no se van a amplificar
  18. La calidad se afecta por tipo de muestra, método de extracción del DNA La no localización exacta en el sitio de ligación de la sonda puede provocar disminución de la hibridación y una falsa deleción. Tener cuidado con las deleciones de una sola sonda o de un solo exón Sales en la muestra de DNA provoca alteración en las zonas de desnaturalización en regiones ricas en GC
  19. Se ven dos sondas disminuidos con respectoa los demás Se ven los fragmentos q, d, x, estandar
  20. Delecion en heterocigosis