3. Introducción
Variante de PCR
Amplificar diferentes fragmentos
de DNA (sondas ligadas)
En una misma reacción mediante
un solo par de cebadores y bajo
las mismas condiciones de ciclos
de temperatura
Se pueden amplificar regiones
génicas cercanas o
adyacentes con la finalidad de
determinar con certeza la
dosis génica en muestras de
DNA de pacientes con
mutaciones como deleciones o
duplicaciones grandes en
estado heterocigoto,
homocigoto o hemicigoto
4. Fundamento
Utiliza sondas de dos oligonucleótidos que reconocen sitios
adyacentes en el DNA
Cada región a analizar posee dos hemisondas con secuencias
inmediatamente adyacentes
Ambas sondas poseen una región de unión al primer (forward y
reverse) y solo una posee una secuencia de identificación
Todas las sondas que diseñemos para los targets utilizan un único
par de primers para la amplificación de todas las secuencias
7. Pasos:
Ligación:
• Adicionar ligasa master mix (buffer de ligasa y ligasa 65 que es termoestable)
Se incuba 15 min a 54°C
Para inactivar, poner a 98° durante 5 min. ( para que se termine la ligación)
Si encuentra alguna alteración en la
hibridación no liga
8. Pasos
Amplificación por PCR:
• Se añade otro master mix de la polimerasa
• Cebador Forward ( con fluorocromo)
• Cebador reverse
• dNTPs
• Los primers no amplifican secuencias diana
• Cantidad de producto ligado es medida del numero de secuencias diana
9. Pasos
Separar los fragmentos por tamaño
• Como se añadió el fluorocromo que viene en la amplificación se puede
diferenciar y cuantificar en la electroforesis capilar
• También hay marcador de peso molecular
• Amplicones y el cargador de peso molecular tienen fluorocromos
diferentes
10.
11. Análisis de MLPA
El análisis de los datos requiere varios pasos
Normalización de los datos: compara cada dato de la
muestra con datos de muestra de referencia
Intranormalización: esas intensidades absolutas que
se observan en el electroferograma se van a
convertir en valores relativos para poderlos comparar
con las muestras de referencia
Calcula asi una relación para cada sonda en cada
muestra
Se visualiza la intensidad de señal de cada sonda de
la muestra en el ratiochart
MRC-Holland desarrolló Coffalyser.net
12.
13.
14. Interpretación de resultados
Una disminución en el área de la señal indica deleción, al contrario un
incremento en el área de señal indica aumento del número de copias
Las deleciones o duplicaciones en heterocigosis producen una reducción o
aumento de la señal del 25% al 50% aprox de lo esperado para cada sonda
Cuidad con la interpretación de las deleciones o duplicaciones en
hemicigosis del cromosoma X en el varón
En ocasiones la interpretación es complicada y obliga a repetir el ensayo.
Cuidado con las deleciones o duplicaciones de una sola sonda
15. Como reconocer la calidad de la
muestra
Fragmento estándar: Es con el cual se hacen la comparación de todo lo demás
28. Tipos de MLPA
Según la técnica Técnica
clásica
Deleciones/Duplicaciones
Variantes puntuales
específicas
Variantes de
la técnica
MS-MLPA
RT-MLPA
29. Variantes de la técnica
MS-MLPA
• MLPA específico de
metilación
• Detectar alteraciones
epigenéticas
• Cambios en el patrón
de metilación del DNA
en genes concretos
RT-MLPA
• MLPA transcriptasa
reversa
• Cuantificar la cantidad
de mRNA sintetizados
por genes de interés
específicos
• Se inicia desde RNA
• Retrotranscripción
31. Limitaciones
Resultados dependen de la calidad de la muestra que
se analiza
Cambios en la secuencia de DNA donde se une la
sonda del MLPA puede modificar el resultado
Desnaturalización inadecuada de la muestra se
asocia a falsas deleciones
No detecta: reordenamientos genómicos balanceados o
del/dup fuera de la región donde se une la sonda
34. Referencias
• Pierce B; Genética, un enfoque conceptual, 2da edición, Panamericana.
• Mérida F. & Moreno E; Manual para técnico superior de Laboratorio Clínico y
Biomédico, Panamericana, 2015.
• Alecia S. Willis; Ignatia van den Veyver; Christine M. Eng (2012). Multiplex
ligation-dependent probe amplification (MLPA) and prenatal día
• Theophilus, Bimal D.M.; Rapley, Ralph (2011). [Methods in Molecular Biology]
PCR Mutation Detection Protocols Volume 688 || Multiplex Ligation-Dependent
Probe Amplification (MLPA®) for the Detection of Copy Number Variation in
Genomic Sequences. , 10.1007/978-1-60761-947-5(Chapter 8), 97–
126. doi:10.1007/978-1-60761-947-5_8gnosis. , 32(4), 315–
320. doi:10.1002/pd.3860
35. • No partes de un DNA total, si no de concentración 50-100 ng/ml
• Hibridacion dura mas porque son varias sondas
Notas del editor
En la técnica se recomienda emplear como controles muestras de DNA con deleciones o duplicaciones génicas grandes ya caracterizadas, desde un exón hasta varios de ellos o incluso loci contiguos
La capacidad de amplificar varias sondas en la misma reacción hace posible delimitar con mayor precisión los puntos de rotura y los sitios génicos de reunión de las deleciones o duplicaciones, asi como la extensión de dichos rearreglos
was developed by the “MRC-Holland” company and published in 2002 as a relative quantification method for the targeted screening for copy number changes in DNA
Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis
Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis
Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis
Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
Ligasa termoestable es muy especifica: si ella encuentra que hay alguna alteración, de solo un nucleótido en las secuencias de hibridación, no se une y no genera el enlace covalente; por ende no se puede amplificar esas sondas y no se genera señal en la electroforesis
Ventaja: Se puede diferenciar genes de pseudogenes, hasta 60 sondas que se pueden unir a 60 secuencias diferentes al mismo tiempo.
Separar los fragmentos por tamaño y es donde cobrra importancia la secuencia de relleno
Las líneas: promedio
El cuadrado muestra el intervalo de confianza de las muestras de referencia
Y los puntos negros es el intervalo de confianza estimado de la muestra que se esta estudiando.
Si el punto negro se sale del intervalo de confianza y se va hacia abajo: deleción, si se va hacia arriba : duplicacion
Interpretación de resultados:
Una disminución en el área de la señal indica deleción, al contrario un incremento en el área de señal indica aumento del número de copias
Las deleciones o duplicaciones en heterocigosis producen una reducción o aumento de la señal del 25% al 50% aprox de lo esperado para cada sonda
Cuidad con la interpretación de las deleciones o duplicaciones en hemicigosis del cromosoma X en el varón
En ocasiones la interpretación es complicada y obliga a repetir el ensayo. Cuidado con las deleciones o duplicaciones de una sola sonda
Existen estas señales al inicio del electroferograma, que son fragmentos cortos .
Fragmento estándar Pocas veces va a verse afectado por la desnaturalización. Es el fragmento con el cual se hacen la comparación de todo lo demas
Fragmentos q: permiten conocer si la cantidad de dna fue adecuada.
Si se tiene mucho dna, van a tender a irse a cero
Si hay poco dna , los fragmentos van a ser elevados
Si no hat dna, los fragmentos van a estar muy elevadas
El porcentaje para decir que esta optima la cantidad. Fragmentos q deben estar disminuidos en menos 33% del fragmento estandar
Fragmentos D: están a lado y lado del fragmento estándar. Lo que principalmente van a medir es , determinar si la denaturalizacion del dna fue completa
Lo normal es que se encuentren un poco mas elevados o al mismo nivel de el fragmento estándar.
Cuando hay denaturalizacion incompleta, se van a ver disminuidos
Se unen a islas de cpg.
Fragmentos xy
Es para identificar el sexo de la muestra
En las mutaciones puntuales, las sondas de MLPA van a ir con la función de buscar esa mutación que estamos sospechando en el paciente.
La persona que no tenga la mutación especifica que estoy buscando, el oligonucleótido no se va a unir adecuadamente a la secuencia objetivo y la ligasa no genera la ligación y no se va amplificar y por tanto no se va a ver el pico en la electroforesis
Para estudio de deleciones duplicaciones.
Ej: Duchenne (DMD)
A mano izquierda se ve la electroforesis. Se ven esos 4 puntos elevados que cuando se ven en la curva de normalización son los que están por arriba de la línea azul y aparte están fuera del rango de confianza.. Ahí se ve una duplicación.
La región gris se encuentra la lectura de sondas de referenica
En el electroferograma vemos zona donde no hay sondas probablemente donde esta la deleción y cuando vemos la curva de normlaizacion, la sonda se encuentra en cero.
Pero es posible que si hay alteración en la hibridación no va amplificar y se va a tomar como deleción. Se ha visto en Duchenne que hay mutaciones puntuales y por eso la sonda no se hibridaba
MS-MLPA:
En esta primero se utilizan enzimas de digestion que es especifica o que es sensible a la metilacion
La enzima donde esta metilada no va hacer digestion, no va a cortar
Donde no hay metilacion va haber digestion completa
Una de las muestras técnica convencional y la otra técnica de metilacion
}
Cuando si se corta es como si hubiera una alteración en la ligación y esos fragmentos no se van a amplificar
La calidad se afecta por tipo de muestra, método de extracción del DNA
La no localización exacta en el sitio de ligación de la sonda puede provocar disminución de la hibridación y una falsa deleción. Tener cuidado con las deleciones de una sola sonda o de un solo exón
Sales en la muestra de DNA provoca alteración en las zonas de desnaturalización en regiones ricas en GC
Se ven dos sondas disminuidos con respectoa los demás
Se ven los fragmentos q, d, x, estandar