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Pósters presentados al congreso Cientifícate

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Póster que hemos presentado al congreso cientifícate del años 2019. Han participado nuestros alumnos de 2º, 3º y 4º de ESO con cinco proyectos de investigación.

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Pósters presentados al congreso Cientifícate

  1. 1. Para medir la tasa mutagénica de la acrilamida hemos analizado la capacidad que adquieren las bacterias a resistir a un antibiótico (amoxicilina y ácido clavulánico) relacionándolo con la capacidad mutagénica de cada producto seleccionado (acrilamida que aparece al tostar alimentos: queso, café, lomo, pan de molde y azúcar. Otros productos: sacarina y tabaco). Se han usado dos dosis de antibióticos: Dosis 1 con 43 mg de amoxicilina y 6 mg de ácido clavulánico y Dosis 2 con 86 mg de amoxicilina y 12 mg de ácido clavulánico) Procedimiento: 1. Tostar el queso, lomo, pan de molde y azúcar (el café ya está tostado) y seleccionar el resto de productos sin tostarlos. 2. Sembrar las bacterias sobre las placas de Petri preparadas con medio TSA y añadir antibióticos en dos dosis. • Control positivo: se añade el producto mutagénico a testar sin antibiótico. • Control negativo: se añade solo antibiótico (dosis 1 y dosis 2). • Alimentos a testar: añadimos el alimento suspendido en agua y el antibiótico (poner dosis). 3. Esperar el crecimiento de las bacterias un tiempo de aproximadamente dos semanas y hacer un conteo del número de bacterias que han crecido, asegurándonos de que ni las bacterias crecen con antibiótico ni que los alimentos matan a las bacterias. • Comprobar la capacidad mutagénica de la acridamida en distintos alimentos y de otras sustancias • Hipótesis: los alimentos tostados inducen mutaciones en las bacterias ¿De verdad lo quemado te deja fastidiado?José Álvarez, Beatriz Vázquez, Javier Lorenzana, Luis Sánchez1 y Ángel Bardasco2 1- Alumnos de 4º de la ESO de Colegios Ramón y Cajal. 2- Profesor de Ciencias de Colegios Ramón y Cajal. C/ Arturo Soria 206, 28043 Madrid. Mayo 2019. OBJETIVOS MATERIALES Y MÉTODOS • La acrilamida tostada induce mutaciones en las bacterias causando que estas desarrollen una resistencia ante el antibiótico. • Los alimentos más artificiales inducen más mutaciones, seguramente debido a su ausencia como presión de selección en el pasado. CONCLUSIONES • Aumentar el número de muestras para conseguir resultados más concluyentes y ver si se mantiene la tendencia. • Realizar el experimento con levaduras para ver si la tendencia se mantiene en organismos eucariotas. TRABAJO PENDIENTE LA ACRILAMIDA AL ACECHO RESULTADOS Gráfico 2: media de colonias de bacterias mutantes resistentes al antibiótico. Las colonias mutantes aparecen como consecuencia de la exposición al agente mutagénico. Imagen 1. Resultados experimentales de la exposición de las bacterias al agente mutagénico y antibiótico junto con los controles positivo (crecimiento normal y abundante) y negativo (no hay crecimiento). Gráfico 1: número de colonias de bacterias mutantes resistentes al antibiótico. Las colonias mutantes aparecen como consecuencia de la exposición al agente mutagénico. Dosis 1 con 43 mg de amoxicilina y 6 mg de ácido clavulánico y Dosis 2 con 86 mg de amoxicilina y 12 mg de ácido clavulánico).
  2. 2. La metodología que utilizamos para analizar la peligrosidad de congelar y descongelar fue analizar el crecimiento de bacterias realizando ciclos de congelación y descongelación: 1. Los alimentos seleccionados: ternera, champiñón, acelgas, pollo, pescado, y lomo de cerdo (crudos y cocinados), son guardados en un recipiente y son sometidos a los ciclos de congelados. 2. Utilizamos placas de Petri que preparamos con medio de cultivo TSA. 3. Rellenamos un tubo de Eppendorf con 0,5 gr de cada alimento con unas pinzas y suspendidos en 1 mililitro de agua destilada. 4. Con ayuda de una micropipeta, sembramos en las placas de Petri, 20 microlitros del agua del tubo Eppendorf con alimento suspendido, siempre por duplicado. 5. Contamos las colonias de bacterias, entendiendo que cada colonia viene de una única bacteria y las apuntamos en una hoja de Cálculo de Drive para realizar el tratamiento de datos. 6. Realizamos el análisis cuatro veces en el caso de alimentos crudos (fresco y tres ciclos de congelados) y tres veces en el caso de cocinados (solo los ciclos de congelados). • Analizar el posible peligro que puede conllevar congelar y descongelar repetidas veces un alimento. • Hipótesis: el número de bacterias aumenta a medida que aumentamos el número de ciclos de descongelados. CUANTO MÁS RECONGELAS, APARECEN MÁS BACTERIAS: RIESGO DE INTOXICACIÓN María Suárez, Isabel Serra, Carlota López, Carlos García, Emma López1 y Ángel Bardasco2 1- Alumnos de 4º de la ESO de Colegios Ramón y Cajal. 2- Profesor de Ciencias de Colegios Ramón y Cajal. C/ Arturo Soria 206, 28043 Madrid. Mayo 2019. OBJETIVOS • A medida que aumentamos el número de veces que congelamos y recongelamos un alimento aumenta el número de bacterias, lo que puede llevar a una intoxicación alimentaria. • Apreciamos un comportamiento anormal en el caso de alimentos cocinados. CONCLUSIONES • Mayor rigurosidad para evitar posibles fallos experimentales, ya que hemos tenido algún resultado incoherente. • Repetir el trabajo con alimentos cocinados para ver si el comportamiento anormal es repetitivo o se debe a errores en la fase experimental. TRABAJO PENDIENTE ¿CONGELAS O RECONGELAS? RESULTADOS Alimentos cocinados Alimentos crudos Gráfica 1. Medias de bacterias durante los ciclos de descongelados en alimentos cocinados considerándolos todos juntos. Gráfico 3. Medias de los diferentes alimentos cocinados durante los ciclos de descongelados en alimentos por separado. Gráfica 4. Medias de los diferentes alimentos crudos durante los ciclos de descongelados en alimentos por separado. Gráfica 2. Medias de bacterias durante los ciclos de descongelados en alimentos crudos considerándolos todos juntos. MATERIALES Y MÉTODOS Imagen 1. Proceso de corte y selección de los alimentos. Imagen 2. Proceso de rellenado del tubo de Eppendorf. Imagen 3. Proceso de conteo de colonias de bacterias. Imagen 4. Proceso de siembra de bacterias. Imagen 5. Conjunto de muestras en “incubadora casera”. I M Á G E N E S
  3. 3. • Determinar cómo afecta la salinidad del terreno al crecimiento de las plantas. FOTOGRAFÍAS CONTROL COMO AFECTA LA SALINIDAD DELTERRENO AL CRECIMIENTO DE LAS PLANTAS Nerea Alcaín, Paula Ferreira, Laura Mur, Rodrigo Pérez 1- Alumnos de 3º de la E.S.O. de Colegios Ramón y Cajal. 2- Profesor de Ciencias de Colegios Ramón y Cajal. C/ Arturo Soria 206, 28043 Madrid. 2019 OBJETIVOS 1. Semillas de 6 variedades de plantas diferentes entre las que se encuentran: lechuga, judía, rúcula, tomate cherry y albahaca. 2. Sistema cuyo objetivo es determinar a que grado de salinidad empieza a afectar la sal al crecimiento del vegetal. • 5 tipos de semillas de diferentes vegetales • 3 macetas (con abono) por cada tipo de vegetal • 3 dispensadores con diferentes concentraciones de sal en agua (agua normal - control, 15 g/l, 30 g/l) • Sistema de regado constante durante varios meses 3. Planificación cooperativa de recogida, análisis y gestión de datos. MATERIALES • La sal produce el efecto de deshidratación ya que anula el efecto del agua sobre la planta. Aunque el terreno esté mojado, la sal lo seca, de modo que la planta no recibe el agua necesaria para crecer. • Como resultado, esto genera que sólo las plantas regadas con agua (sin aditivos artificiales), germinen mientras que aquellas cuya agua ha sido alterada (con sal) no crezcan. CONCLUSIONES • Repetir el experimento para verificar los resultados. • Aumentar las variable vegetales (las utilizadas son sensibles a la sal) y aumentar el rango de disoluciones salinas para mayor exactitud. TRABAJO PENDIENTE LAS PLANTAS NO HAN SAL - IDO RESULTADOS 1. Valoración de la cantidad de sal necesaria para afectar a la germinación de una planta. Se riega cada modalidad de planta (en cada maceta) con las diferentes concentraciones de sal en agua. Se observan los resultados y se toman fotos. 2. Análisis visual de los datos y elaboración de conclusiones. MÉTODOS Análisis fotográfico de las diferentes concentraciones salinas FOTOGRAFÍAS 15g/l Figura 1: muestra el desarrollo final de las plantas regadas con agua sin aditivos (las marcadas en rojo son las que germinaron) Figura 2: muestra el desarrollo final de las plantas regadas con una disolución de sal en agua de 15g/l. Figura 3: muestra el desarrollo final de las plantas regadas con una disolución de sal en agua de 30g/l. FOTOGRAFÍAS 30g/l • Agrosal Ivia, (2019) http://www.agrosal.ivia.es/tolerancia.html • Jornadas Técnicas de Saneamiento y Depuración, (2017) https://www.jornadasesamur.com/wp-content/uploads/ 2017/12/4.4-Mª-angeles-Botella-SALINIDAD.pdf BIBLIOGRAFÍA
  4. 4. • Nuestro objetivo es comprobar cómo afecta el calor a la vitamina C en los cítricos, como el limón y la naranja. • Hipótesis: en los zumos que se encuentren a mayor temperatura, encontraremos una menor cantidad de vitamina C. Si la vitamina C quieres cuidar, con fuego no has de jugarAUTORES 1- Adrián García Sacristán, Alvaro Mayo García, Sara Vera Dorado y Sandra Fernández de Lis Farreres 2- Mercedes Fernández González y Patricia Martínez Obispo. C/ Arturo Soria 206, 28043 Madrid. OBJETIVOS E HIPÓTESIS Los materiales que hemos usado son: Limón, naranja, probetas, mechero Bunsen, maicena, agua, vasos de precipitados, yodo, pipeta, guantes, pinza, cucharillas, cuchillo, tubos de ensayo, hoja blanca, lápiz y celo. MATERIALES Hemos podido comprobar cómo la vitamina C se degrada con el calor, transformándose el ácido ascórbico en ácido dehidroascórbico. Por lo tanto, aquellos zumos sometidos al calor tienen menos vitamina C que los zumos a temperatura ambiente. CONCLUSIONES Cómo afecta el calor a la vitamina C 1. Preparamos el indicador de yodo, mezclando una cucharada de almidón de maíz con un volumen pequeño de agua, hasta que se disuelva. Agregamos 250 ml de agua y lo hervimos aproximadamente 5 minutos. 2. Agregamos con una pipeta 10 gotas de la solución hervida a 75 ml de agua y también agregamos yodo a la mezcla, hasta volverse de un color púrpura oscuro. 3. Exprimimos el jugo de los cítricos elegidos en 2 tubos de ensayo separados. Marcamos un tubo como “calentado” y el otro como “sin calentar”, calentamos el que está marcado como “calentado” hasta que hierve. Con el gotero, agregamos gotas de zumo a tubos de ensayo con el indicador, hasta que éste se vuelva transparente. 4. Observamos qué tubo de ensayo se vuelve transparente antes. Al añadir las gotas de los zumos, el indicador de yodo se vuelve transparente antes, cuánta mayor cantidad de vitamina C tenga la muestra. MÉTODOS Hemos necesitado añadir 20 gotas de zumo hasta lograr la transparencia en el indicador. Hemos necesitado añadir 18 gotas de zumo hasta lograr la transparencia en el indicador. Hemos necesitado añadir 40 gotas de zumo hasta lograr la transparencia en el indicador. Hemos necesitado añadir 28 gotas de zumo hasta lograr la transparencia en el indicador. Limón Sin Calentar RESULTADOS Naranja Calentada Naranja Sin Calentar Limón Calentado Fotos Universidad Complutense Webgrafía Universidad de Alcalá

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