chrysoperlas

1. Control Biológico de Pulgones en Nogal
Ing. Josías Ayala García
Coordinador Hermosillo.
2001-2007

2. Tipos de enemigos naturales de pulgones:
• Depredadores: Son insectos
que se alimentan de otros
insectos, que son usualmente
mas pequeños y débiles,
frecuentemente requieren mas
de una presa para completar su
desarrollo. Ejemplo: Chrysoperla
rufilabris, C. carnea, Olla v-
nigrum etc.
• Parasitoides: Insectos que
matan y consumen un solo
hospedero, durante su desarrollo.
Los parasitoides se pueden
desarrollar dentro o fuera de su
hospedero. Ejemplo:
Aphelinus perpallidus, etc.

3. Consumo de pulgones
Consumo promedio de afidos por dos estados biológicos de dos catarinitas y dos crisopas.
Afidos por día
Insecto Larva Adulto
Harmonia axyridis1 65 100
Olla v-nigrum2 62 60
Chrysoperla rufilabris2 40 0
Chrysoperla carnea1 30 0
1Afido de especie no reportada y 2 afido del nogal M. Caryella. Adaptado de Toschi (1965), Liao et. At. (1985), Tedders (1993),
Knodel y Hoebeke (1996).

4. Fluctuación poblacional

5. Requerimientos para la Cría de Insectos
benéficos contra pulgones
• Infraestructura.
• Personal Capacitado.
•Selección de la especie y pureza biológica.
•Técnica de Cría.
•Control de Calidad

6. Infraestructura
Desarrollo de larvas de chrysopa Desarrollo de adultos de chrysopa en Verificación de parámetros de calidad
en rejillas de 200 cavidades. cilindros con 800 individuos.

7. Personal capacitado
Actividades diarias en el CREROB

8. Selección de la especie
Chrysoperla carnea, Chrysoperla rufilabris, Chrysoperla comanche etc.
Ficha pictórica para la especie Ficha pictórica para la especie Ficha pictórica para la especie
Chrysoperla carnea. Chrysoperla rufilabris. Chrysoperla comanche.

9. Certificación de la pureza biológica
de la especie seleccionada (Chrysoperla rufilabris).
Separación de 100 huevecillos de Revisión al microscopio de la integridad
chrysoperla rufilabris. morfológica de la especie.
Verificación del adulto: La genas con manchas Verificación de los 3 estadios larvales: Las
rojas que van de los ojos a la boca. En las alas manchas paralelas casi uniformes inician de parte
anteriores, las venas gradatas cruzadas en AA. dorsal hacia el frente de la cabeza.

10. Técnica de cría
de Chrysoperla rufilabris
(Etapa de Desarrollo 1 )
Mezcla de huevecillo de sitotroga mas La mezcla alcanzara para sembrar 500
huevecillo certificado de Chrysoperla rejillas de 100 cavidades.
rufilabris en proporción 1 litro:100 cc3.
Una vez emergidas las larvas se
alimentaran cada 3er. Día esparciendo En la 1er. Alimentación se utiliza 1 litro
el huevecillo sobre la malla que cubre de huevecillo de sitotroga, en la 2da. 2
la rejilla. litros y la misma cantidad en la 3ra.

11. (Etapa de Desarrollo 2)
Después de la ultima alimentación las larvas Se colocan 10 rejillas en pupación por
pupan, formando un pequeño cocon. cubeta y se espera la emergencia de los
adultos.
Antes que inicie la emergencia de las Emergidas las adultas se retiran las rejillas
adultas se les coloca dieta en tablillas y un y se les mantiene con dieta y agua e
algodón con agua. iniciaran la colocación de huevecillos..

12. Obtención de huevecillos
Chrysoperla rufilabris
Sala con capacidad para tener 500 Obtención de huevecillos que fueron
cubetas con adultas ovipositando. colocados en las paredes de la cubeta.
Obtención de huevecillos colocados en las Obtención de huevecillos colocados en los
tablillas con dieta. gorros que cubren la cubeta.

13. Empaque y almacenaje
de Chrysoperla rufilabris
Cuando el huevecillo no será liberado el mismo El huevecillo destinado a liberación deberá
día de su colecta deberá ser almacenado de 6- eclosionar dentro de las primeras 12 horas
12 0C por no mas de 7 días. de su liberación.
Para liberaciones locales, el empaque es vasos Para liberaciones externas, deberá colocarse el
térmicos de 1 litro conteniendo la mezcla de material en hieleras con gel congelado, para
salvado y huevecillos de chrysopa dentro de garantizar optimas condiciones de temperatura
bolsas plásticas. hasta su llegada.

14. Estándares de calidad para la cría de Insectos
Benéficos
Los estándares de Calidad fueron obtenidos por la IOBC y
avalados y reconocidos por CNRCB, perteneciente a DGSV-
SAGARPA.
Centro Nacional de
Referencia de Control
Biológico CNRCB

15. Control de calidad
El Control de Calidad es un sistema que desarrolla, mantiene
y mejora la calidad del producto; en el insectario, este
sistema se efectúa en tres niveles:
a) Control de la Producción
b) Control del Proceso
c) Control del Producto

16. a) Control de la Producción

17. b) Control del Proceso
DIAGRAMA DE Flujo de la cría de Chrysoperla carnea (Stephens)
HUEVO REFRIGERACIÓN MADURACIÓN
48 horas 48-120 horas 48 horas
28 + 1 oC 10 + 1 oC 28 + 1 oC
LIBERACIÓN
100% por 22 días
LARVA
28 + 1 oC
1o Instar 3 días
2o Instar 3 días PIE DE CRÍA
3o Instar 5 días 20 %
Huevecillo de 3
días de postura
PUPA
5 días
CONTROL DE CALIDAD
Pureza Biológica
Num. Huevecillos/cm3
% Emergencia
ADULTO- % Larvas defectuosas
OVIPOSICIÓN % Larvas viables
25-30 días prod. % Huevecillos Infértiles
Huevo % Emergencia Post-
30 días de vida almacenaje
28 + 1 oC

18. CONTROL DE CALIDAD
Parámetros:
1) Pureza Biológica
2) Num. Huevecillos/cm3
c) Control del Producto 3) % Emergencia
4) % Larvas defectuosas
5) % Larvas viables
6) % Huevecillos Infértiles
7) % Emergencia Post-
almacenaje
1) Pureza Biológica: Se refiere a que la especie que se produce no este contaminada con otras especies
diferentes.
Para esto se toma una muestra de 100 huevecillos al azar, de los cuales se separa una muestra de 20 larvas hasta que lleguen
al estado adulto, que es donde se hace la identificación, ya sea por personal del laboratorio o por algún especialista.
2) Número de huevecillos/cm3:
Se realizan 3 repeticiones al azar de 1 cm3 cada una, con la ayuda de un contador de mano, se contabiliza el numero de
huevecillos totales/cm3 de cada una de las 3 repeticiones, se registra el promedio/cm3 (5000).
+ + > 5000
=

19. 3) Porcentaje de Emergencia (PE):
De las unidades de producción, tomar una muestra de huevecillo, de esta separar al azar 100 huevecillos y se ponen en
capsulas de gel (un huevo por capsula) en la sala de producción . Después de 5 días, se registra el porcentaje de larvas
emergidas ( > 92% ).
(LE / 100) x 100 = PE
4) Porcentaje de Larvas Defectuosas (PLD) = (LD / PE) x 100 = PLD
5) Porcentaje de Larvas Viables (PLV) = (PE - LD ) = PLV
6) Porcentaje de Huevecillos Infértiles PHI:
Huevecillos infértiles / Huevecillos iniciales x 100 = PHI
7) Emergencia Post-almacenaje (EPA): (LER / 100) x 100 = EPA
Se toma una muestra de 10 cm3 y se distribuye en 10 Viales ( 1 cm3 en cada uno); posteriormente se guardan durante 15
días en refrigeración a temperatura de 8-10 oC. Se escogen al azar 100 huevecillos de cada vial y se ponen en condiciones
normales de desarrollo. Se espera 3 a 5 días para que emerjan las larvitas y se calcula el EPA.

20. Millares de huevecillos de chrysopa liberados en
huertas de Nogal Costa de Hermosillo
13305
14000
Millares Huev/ha.
12000
10000
7949
8000 6875
6145
6000 4845
4000
1429 1092 980 837 1291
2000 0 0
0
2002 2003 2004 2005 2006 2007
Años en que se libero
HAS MILLARES DE HUEV.

21. Numero de especimenes
0
2
4
6
8
10
12
16/06/2006
23/06/2006
30/06/2006
07/07/2006
14/07/2006
21/07/2006
28/07/2006
C.carnea
04/08/2006
11/08/2006
18/08/2006
25/08/2006
C. rufilabris
01/09/2006
08/09/2006
15/09/2006
22/09/2006
29/09/2006
Año 2006
C. comanche 06/10/2006
Fechas de Muestreo
13/10/2006
20/10/2006
27/10/2006
03/11/2006
Ceaerocrysa
10/11/2006
17/11/2006
24/11/2006
01/12/2006
08/12/2006
C.Nigricornis
15/12/2006
22/12/2006
Especies de Chrysopas encontradas en Huerta de Nogal "Campo Palo Verde "

22. Conclusiones
• Los enemigos naturales son una alternativa eficaz
para la regulación de las poblaciones de pulgones.
• Contar con la Infraestructura adecuada nos permite
tener Material Biológico de Calidad en tiempo y
oportunidad.
• El Control de Calidad de cada uno de los niveles
(Control de producción, Control del Proceso y
Control del Producto) garantizan la calidad del
producto final que se libera en campo.