#9 antibiogramas

 Centro Bachillerato Tecnológico Industrial y de Servicios No. 128
Práctica No. 9 Antibiogramas
Sub-modulo 3: Ejecuta técnicas de identificación de microorganismos con base en las
normas
Integrantes: Quistián García Hylary Estefanía, Ramírez Arellanos Génesis, Ramírez
Hernández Jessica, Ramos Franco Michelle Valeria, Ramos Juárez Mario Antonio, Rangel
Osorio Hugo Cesar, Rascón Castrejón Lizeth Guadalupe, Reyes Marcial Luis Diego, Ríos Palacios Selene.
Facilitadora: Ing. Jessica Alicia Acosta Bezada
Fecha: se inició el 19 de noviembre del 2014 y se terminó el 20 de noviembre del 2014.
Introducción
Un antibiótico es una sustancia química producida
por un ser vivo o derivado sintético, que mata o
impide el crecimiento de ciertas clases de
microorganismos sensibles, generalmente bacterias.
Los antibióticos se utilizan en medicina humana,
animal y horticultura para tratar infecciones
provocadas por gérmenes. Normalmente los
antibióticos presentan toxicidad selectiva, siendo
muy superior para los organismos invasores que
para los animales o los seres humanos que los
hospedan, aunque ocasionalmente puede
producirse una reacción adversa medicamentosa,
como afectar a la flora bacteriana normal del
organismo. Los antibióticos generalmente ayudan a
las defensas de un individuo hasta que las
respuestas locales sean suficientes para controlar la
infección. Un antibiótico es bacteriostático si impide
el crecimiento de los gérmenes, y bactericida si los
destruye, pudiendo generar también ambos efectos,
según los casos.
Es este caso mediante la utilización de
antibiogramas veremos la determinación de la
susceptibilidad (sensibilidad o resistencia) de una
bacteria a un antibiótico determinado. Las técnicas
de antibiograma son las utilizadas en el laboratorio
de microbiología para estudiar la actividad de los
antimicrobianos frente a los microorganismos
responsables de las infecciones.
Resumen
El objetivo del antibiograma es el de medir la
sensibilidad de una cepa bacteriana que se
sospecha es la responsable de una infección a uno
o varios antibióticos. Se debe realizar un
antibiograma siempre que una toma bacteriológica
de finalidad diagnóstica haya permitido el
aislamiento de una bacteria considerada
responsable de la infección.
Se utilizaron cuatro cajas Petri con agar nutritivo
para la realización del antibiograma. Se inoculó con
las muestras de: saliva humana, agua de baño, tierra
y trapo común.
Los antibióticos utilizados para determinar la
sensibilidad utilizando el método de difusión en agar
fueron: Amoxicilina/Ambroxol, Eritromicina y
Trimetoprima/sufametoxazol.
El crecimiento solo se encontró en el agar inoculado
con saliva humana y por ende el halo de inhibición
que fue medido con una regla común para la
determinación de su diámetro.
Así, de esta manera se determinó el antibiótico con
más efectividad respecto a posibles bacterias
patógenas.
ABSTRACT
The purpose of susceptibility testing is to measure
the sensitivity of a bacterial strain that is suspected
to be responsible for an infection with one or more
antibiotics. It should be performed whenever a
bacterial antibiograms making diagnostic purposes
has allowed the isolation of a bacterium responsible
for the infection considered.

Four Petri dishes with nutrient agar were used for the
realization of susceptibility. Was inoculated with
samples: human saliva, bath water, land and
common cloth.
Antibiotics used to determine the sensitivity using the
agar diffusion method were: Amoxicillin / Ambroxol,
Erythromycin and Trimethoprim / sufametoxazol.
The growth was only found in the agar inoculated
with human saliva and thus the inhibition zone was
measured with a common rule for determining its
diameter.
Thus, in this way more effectively antibiotic regarding
potential pathogenic bacteria was determined.
Materiales y métodos
ETAPA 1: Preparación del medio de cultivo y
preparación de los antibióticos.
Material
Matraz Erlenmeyer
Espátula
Bascula
Mecheros Bunsen
Guante de asbesto
4 Cajas Petri
3 vidrios de reloj
Reactivos
Agua destilada
Agar nutritivo
3 antibióticos (Amoxicilina, eritromicina,
trimetropima)
Procedimiento
Para la preparación del medio de cultivo:
1) Se pesó 2.3 gramos del agar nutritivo y se
agregó a un matraz Erlenmeyer con 100
mililitros de agua.
2) Se calentó la disolución anterior con ayuda
de un mechero bunsen hasta que el agar se
disolvió por completo.
3) Se esterilizó el agar, junto con las 4 cajas
Petri previamente envueltas.
Para la preparación de los antibióticos:
1) Se marcó cada vidrio de reloj con el nombre de
uno de los antibióticos.
2) En cada vidrio de reloj se colocó 5 mililitros de
agua destilada o purificada.
3) Se colocó la tableta o el contenido de la capsula
del antibiótico en el vidrio de reloj
correspondiente.
4) Se disolvió la tableta o la capsula en el agua.
ETAPA 2: Inoculación de muestra infecciosa y
colocación de los antibióticos
Material
Asas de microbiología
4 Vidrios de reloj
Papel filtro
Pinzas de laboratorio
Mecheros bunsen
Agitador de vidrio
Reactivos
4 muestras infecciosas (tierra, agua de
baño, saliva, trapo)
4 cajas Petri con medio de cultivo
Agua destilada
3 antibióticos previamente preparados
Procedimiento
Se formó un triángulo de seguridad con mecheros
bunsen y se trabajó dentro de él.
Para la preparación de las muestras:
1) En un vidrio de reloj se colocó 2gr de tierra
aproximadamente, y se disolvió con un poco
de agua destilada.
2) En otro vidrio de reloj se colocó 5 ml de agua
de baño aproximadamente.
3) En el otro vidrio se colocó una muestra de
saliva de la cual se tomó una gota para ser
inoculada.
4) Para la última muestra, se mojó un trapo y
se exprimió encima del último vidrio de reloj.
Para la inoculación de las muestras:
1) Se marcó cada una de las cajas Petri con el
nombre de la muestra correspondiente que
se inoculo en ella.
2) Se esterilizo el asa de microbiología y con
ella se tomó una gota de la muestra.

3) Se estrió con ella en la caja correspondiente
de forma horizontal y se esterilizo el asa.
4) Sin tomar de nuevo muestra se volvió a
estriar en la caja pero esta vez de forma
vertical y se esterilizó el asa.
5) Nuevamente se estrió sin tomar, esta vez de
manera diagonal (de izquierda a derecha) y
se esterilizo el asa.
6) Para finalizar se estrió de nuevo en diagonal
(de derecha a izquierda) y se esterilizo el
asa.
Para la colocación de los antibióticos:
1) Se supuso que cada caja Petri estaba
dividida en tres partes iguales, y se marcó
cada parte con las iniciales de uno de los
agentes antibióticos.
2) Se esterilizó unas pinzas de laboratorio, con
ellas se tomó un papel filtro de 0.5 cm2
3) El papel filtro se remojo en la disolución
previamente preparada con los antibióticos y
este se colocó en la parte correspondiente
con sus iniciales.
4) Antes de tomar otro antibiótico se esterilizó
nuevamente las pinzas de laboratorio.
5) Se repitió el procedimiento con cada
antibiótico en cada una de las cajas Petri ya
inoculadas.
6) Se colocó las cajas en la incubadora por 24
horas a 36°C.
ETAPA 3: Morfología de colonias y medición del
halo de inhibición
Material
Marcador
Mecheros Bunsen
Regla
Reactivos
Cajas Petri con muestras previamente
inoculadas
Procedimiento
1) Se formó un triángulo de seguridad con mecheros
Bunsen y se trabajó dentro de él para evitar la
posible contaminación de bacterias.
2) Se procedió a realizar la lectura de colonias. Para
ello primero se identificó los diversos tipos de
colonias que había en cada caja Petri.
3) Se contó el número de cada tipo de colonias que
había en cada caja Petri, para ello se vio la caja a
contra luz para poder ver colonias que no eran muy
claras, con ayuda del marcador se punteo cada
colonia contada, se tomó notas sobre su:
 Forma
 Borde
 Superficie
 Color
(Véanse los resultados)
Para la medición de los halos de inhibición:
1) Con una regla se midió el radio de cada uno
de los halos formados en las cajas Petri.
2) De esta forma se comparó la efectividad
entre cada uno de los antibióticos, entre más
grande es el halo de inhibición mayor es su
efectividad.
(Véanse los resultados)
Resultados
En esta práctica se buscaba identificar la acción de
diversos antibióticos sobre los diferentes
microorganismos que crecían alrededor de los halos
producidos. Con ello se muestran a continuación si
estos datos se revelaron al término de esta práctica.

Orientación de las cajas petri
N ú m e r o d e c a j a p e t r i I n o c u l a d o c o n :
1 M u e s t r a d e s a l i v a
2 M u e s t r a d e t i e r r a
3 M u e s t r a d e s a l i v a
4 M u e s t r a d e t i e r r a
En seguida se muestran las morfologías de las colonias que crecieron en cada caja petri.
Morfología colonial
Número de c aj a pet r i N ú m e r o d e c o l o n i a M o r f o l o g í a
1 1 Forma puntiforme, borde entero, superficie convexa, color blanco opaco.
2 2 Forma irregular, borde lobulado, superficie convexa, color blanco opaco.
3 3 Forma circular, borde entero, superficie convexa.
4 4 Forma irregular, borde lobulado, superficie plana, color blanco opaco.
Enseguida se observan los halos producidos por los antibióticos.
Halos de inhibición
Número de c aj a pet r i A n t i b i ó t i c o Hal os de i nhi bi c i ón
1 A m o x i c i l i n a 3 c m
E r i t r o m i c i n a 2 c m
T r i m e t o p r i m a 3 c m

Conclusión
 Quistián García Hylary: realizar un
antibiograma tiene principalmente dos
objetivos, el primero es el de medir la
sabe o se tiene la sospecha es la
responsable de una infección de uno o
varios antibióticos, y el segundo es el de
seguir la evolución de la resistencia
bacteriana.
Para realizar un antibiograma se sigue el
mismo procedimiento que se llevó a cabo
para realizar los halos de inhibición, pero
esta vez en lugar de colocar un agente
inhibidor como el extracto de una planta
medicinal o un desinfectante, se utilizan
antibióticos.
De acuerdo a la resistencia que una cepa
bacteriana mantiene en contra de un
antibiótico, se dice que la resistencia de la
cepa es sensible, intermedia o resistente.
Además de esto, la resistencia bacteriana
puede ser “obtenida” de diversas formas ,
esta puede ser natural, adquirida, cruzada o
asociada.
 Ramírez Arellanos Génesis: Mediante un
antibiograma podemos establecer qué
tratamiento será el más adecuado para el
paciente afectado por una infección por la
bacteria que estemos estudiando. ¿Qué son
los halos de inhibición? Alrededor de cada
disco de antibiótico, las bacterias sensibles
a ese antibiótico no habrán podido
reproducirse, y por lo tanto, no forman
colonias, dejando un hueco alrededor del
disco. ¿Por qué se miden los halos? No
basta con ver si las bacterias han crecido o
no alrededor del antibiótico para saber si son
o no son sensibles.
 Ramírez Hernández Jessica: Las técnicas
de antibiograma son las utilizadas en el
laboratorio de microbiología para estudiar la
actividad de los antimicrobianos frente a los
microorganismos responsables de las
infecciones.
Esto es determinado por los halos de
inhibición que cada antibiótico presenta. Al
igual que con los demás procedimientos de
halos de inhibición un antibiograma nos
ayuda a determinar qué tan efectivo es un
medicamento para combatir
microorganismos patógenos que pudiesen
entrar al cuerpo humano.
Una cepa bacteriana puede ser sensible,
resistente o intermedia de acuerdo a las
características que se presenten en el agar
luego del tiempo de incubación.
Este tipo de procedimientos son importantes
en el área de la medicina, especialmente en
farmacología.
 Ramos Franco Michelle: En mi conclusión
seria que un antibiograma que es la
resistencia que tiene la bacteria hacia un
antibiótico, esta práctica se realiza un halo
de inhibición y si no se realiza es que la
bacteria tiene resistencia hacia los
antibióticos, los cuales usamos 3 antibióticos
que de uno de ellos no se ha visto reacción
del antibiótico. Lo cual se aplica un una
bacteria para poder observarla y crecer el
halo.
 Ramos Juárez Mario:
 Rangel Osorio Hugo: Al analizar los
resultados obtenidos podemos ver que los
antibióticos generalmente inhiben a algún
tipo de bacterias ya que observando los
halos podemos ver que algunas bacterias
crecen dentro del halo y otras fuera ya que
si tuviera un amplio espectro, es decir que
actuara con una gran variedad de bacterias
ocasionaría un desequilibrio de nuestra flora
intestinal, ocasionando estreñimiento,
diarrea, infecciones, cansancio o un
debilitamiento general en el sistema
inmunitario.
 Rascón Castrejón Lizeth: Día a día la
sociedad estamos expuesto a una gran

cantidad de bacterias que en su gran
porciento pueden ser patógenos, Dichas
bacterias se pueden encontrar en lo más
cotidiano como es en la tierra, agua del W.
C, trapos limpiadores de cocina, saliva. Un
mal ámbito de limpieza, desinfección, y un
control de las antes mencionadas bacterias
tienen como consecuencia en nuestro
organismo enfermedades que pueden poner
en riesgo nuestra salud, hoy en día nos
encontramos con una inmensa variedad de
antibióticos en el mercado farmacéutico que
son sustancias químicas producidas por un
ser vivo o derivado sintético, que mata o
impide el crecimiento de ciertas clases de
microorganismos sensibles, generalmente
bacterias.
En el laboratorio de microbiología los
antibiogramas tienen como objetivo
comprobar la eficacia de dichos antibióticos
determinar la sensibilidad a diversos
antibióticos como lo son Eritromicina,
Trimetropina, Amoxicilina de un
determinado microorganismo (saliva, agua
de W.C, tierra, trapo limpiador de
laboratorio), identificar y analizar las cepas
sensible y resistente, conocer su
especificidad de acción sobre determinadas
bacterias.
 Reyes Marcial Luis Diego: En los
antibiogramas se observó como los
antibióticos actúan sobre los
microorganismos de diversas formas,
algunos microorganismos son sensibles a
ciertos antibióticos y otros son resistentes,
pero de igual manera los antibióticos solo
actúan sobre diversos microorganismos y no
sobre todos.
En la práctica se desarrolló conocimientos
de lectura de los antibiogramas y la medición
de los halos que se producen. Al final se
comprende más herramientas que
funcionan para análisis de la susptibilidad de
los microorganismos ante los antibióticos.
 Ríos Palacios Selene: Las pruebas de
sensibilidad bacteriana que se llevaron a
cabo mediante el antibiograma que sirve
para medir la sensibilidad de una cepa
bacteriana a uno o varios antibióticos. Se
considera exitosa ya que se obtuvo el
conocimiento de la sensibilidad a los
antibióticos, del microorganismo
engendrado en el medio de cultivo.
El método seleccionado, para el medio de
cultivo a emplear fue el que permito un buen
desarrollo del microorganismo cuya
sensibilidad se determinó y además no
ejerció ningún efecto inhibidor sobre la
actividad antibacteriana de los antibióticos
ensayados.
La lectura interpretada del antibiograma
arrojo cuales fueron los antibióticos con más
éxito en inhibición de bacterias, y cuales
fracasaron en un 50 o 0% de su acción, Con
estos resultados se cerró la práctica de
antibiogramas con distintos antibióticos
usados.
Discusión
Se entiende por antibiograma el estudio de la
sensibilidad "in vitro" de las bacterias a los
antibióticos. Por extensión, se suele incluir el estudio
de la sensibilidad a las sulfamidas y otros
quimioterápicos.
La razón por la cual es conveniente el estudio del
antibiograma de una bacteria determinada radica en
el hecho de la diferente sensibilidad a los antibióticos
de las distintas especies bacterianas y, más aún, en
el hecho de que en numerosas especies existen
grandes diferencias de sensibilidad a un
determinado antibiótico entre unas y otras cepas.
Para que la concentración de antibiótico que
impregna los discos no sea ni excesiva ni
insuficiente, y sea posible distinguir los halos de
inhibición, se puede proceder del siguiente modo,
realizando un banco de diluciones.

Una vez sembrada una placa de un medio de cultivo
adecuado y colocados los distintos discos
impregnados de antibiótico y una vez colocada a
incubación en la estufa durante unas horas, se
procede a la lectura de los resultados, que puede
hacerse a intervalos periódicos, basada en la
medición del halo de inhibición. Según la amplitud de
este halo los gérmenes se clasifican en:
 Resistentes
 Sensibles
 Muy Sensibles
Los datos que proporciona el antibiograma son muy
valiosos pero su aplicación no es tan sencilla. Para
la prescripción correcta de los antibióticos hay que
tener en cuenta siempre la naturaleza del proceso
infeccioso, la historia clínica del paciente, el
mecanismo de acción del antibiótico, la toxicidad, las
posibles sensibilizaciones del paciente, la vía de
administración, etc.
Bibliografía
salud.kioskea.net. (Noviembre de 2014). Recuperado el
21 de Noviembre de 2014, de
http://salud.kioskea.net/faq/5924-
antibiograma
www.apcontinuada.com. (01 de Julio de 2009).
Recuperado el 21 de Noviembre de 2014, de
http://www.apcontinuada.com/es/el -
antibioigrama-interpretacion-del-antibiograma/
articulo/80000504/
www.microinmuno.qb.fce.uba.ar. (s.f.). Recuperado el
21 de Noviembre de 2014, de
http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar/Semi
narioAntibioticos.htm
Anexos
¿Qué es un antibiograma?
El antibiograma es la prueba microbiológica que se
realiza para determinar la sensibilidad de una colonia
bacteriana a un antibiótico o grupo de antibióticos. El
antibiograma permite definir para cada antibiótico, si
la bacteria es sensible (antibiótico eficaz), intermedio
(antibiótico eficaz en ciertas condiciones) o
resistente (antibiótico ineficaz). El antibiograma
permite medir la capacidad de un antibiótico a inhibi r
el crecimiento bacteriano. Permite evaluar la eficacia
de un antibiótico sobre una bacteria.
¿Por qué y cuándo se realiza un antibiograma?
El primer objetivo del antibiograma es el de medir la
sospecha es la responsable de una infección a uno
o varios antibióticos. En efecto, la sensibilidad in
vitro es uno de los requisitos previos para la
eficacia in vivo de un tratamiento antibiótico. El
antibiograma sirve, en primer lugar, para orientar
las decisiones terapéuticas individuales.
El segundo objetivo del antibiograma es el de seguir
la evolución de las resistencias bacterianas. Gracias
a este seguimiento epidemiológico, a escala de un
servicio, un centro de atención médica, una región o
un país, es como puede adaptarse la antibioterapia
empírica, revisarse regularmente los espectros
clínicos de los antibióticos y adoptarse ciertas
decisiones sanitarias, como el establecimiento de
programas de prevención en los hospitales.
Siempre que una toma bacteriológica de finalidad
dìagnóstica haya permitido el aislamiento de una
bacteria considerada responsable de la infección.
Establecer esta responsabilidad exige una
colaboración entre el bacteriólogo y el clínico. En
efecto, en ciertas circunstancias, el microbiólogo no
podrá determinar con certeza que el aislamiento de
una bacteria exige un antibiograma, sin los datos

clínicos que le aporta el médico. Por ejemplo, una
bacteria no patógena puede ser responsable de la
infección de un enfermo inmunodeprimido o en un
lugar determinado del organismo. La presencia de
signos clínicos puede ser también determinante para
la realización de un antibiograma (por ejemplo: la
infección urinaria con un número reducido de
gérmenes).
Resistencia bacteriana
La determinación de la Concentración Inhibidora
Mínima (CIM) es la base de la medida de la
sensibilidad de una bacteria a un determinado
antibiótico. La CIM se define como la menor
concentración de una gama de diluciones de
antibiótico que provoca una inhibición de cualquier
crecimiento bacteriano visible. Es el valor
fundamental de referencia que permite establecer
una escala de actividad del antibiótico frente a
diferentes especies bacterianas.
Hay diferentes técnicas de laboratorio que permiten
medir o calcular de rutina, y de manera
semicuantitativa, las CIM (métodos manuales y
métodos automatizados o semiautomatizados).
Estos diferentes métodos de rutina permiten
categorizar una cierta cepa bacteriana en función de
su sensibilidad frente al antibiótico probado. Esta
cepa se denomina Sensible (S), Intermedia (I) o
Resistente (R) al antibiótìco.
Para un determinado antibiótico, una cepa
bacteriana es, según la NCCLS:
Sensible, si existe una buena probabilidad
de éxito terapéutico en el caso de un
tratamiento a la dosìs habitual.
Resistente, si la probabilidad de
éxito terapéutico es nula o muy
reducida. No es de esperar ningún
efecto terapéutico sea cual fuere el
tipo de tratamiento.
Intermedia, cuando el éxito
terapéutico es imprevisible. Se
puede conseguir efecto terapéutic o
en ciertas condiciones (fuertes
concentraciones locales o aumento
de la posología).
Ciertas moléculas son representativas de un grupo
de antibióticos. Los resultados (S, I, R) obtenidos con
estas moléculas pueden ser ampliados a los
antibióticos del grupo, que en ese caso no es
necesario ensayar. Este hecho permite ensayar un
número reducido de antibióticos, sin limitar por ello
las posibilidades terapéuticas.
Interpretación de un antibiograma
El análisis de los resultados de sensibilidad es un
aspecto esencial para una adecuada información del
antibiograma y tiene una gran trascendencia clínica.
En este sentido, la lectura interpretada del
antibiograma analiza los fenotipos de sensibilidad y
permite deducir posibles mecanismos de resistencia.
Además, este proceso permite inferir la sensibilidad
de antibióticos no estudiados en el antibiograma y la
corrección, en su caso, de falsas sensibilidades
observadas in vitro, como ocurre en el caso del
antibiograma de una enterobacteria con una BLEE,
en el que no siempre aparecen como resistentes
todas las cefalosporinas, si bien, en la práctica debe
evitarse su uso. Asimismo, favorece la adecuación
del tratamiento, el control de las políticas de
antimicrobianos, la detección de nuevos
mecanismos de resistencia y el conocimiento de su
epidemiología. Un requisito esencial para poder
realizar una adecuada lectura interpretada es
conocer la identidad del microorganismo estudiado,
tanto el género como la especie, ya que sin ella el
resultado puede llevar a errores en la utilización de
los antimicrobianos. Así, una cepa de S. aureus con
CMI de cloxacilina de 1 mg/l es sensible a cloxacilina
y a todos los b-lactámicos, mientras que si se trata
de un estafilococo coagulasa negativa la CMI de 1
mg/l indica resistencia a cloxacilina.
Otro ejemplo es que una CMI de ampicilina de 8 mg/l
frente a una enterobacteria indica sensibilidad, pero
frente a un estafilococo esta misma CMI indica

resistencia, ya que un estafilococo es ya resistente a
ampicilina con una CMI de 0,5 mg/l. De esta manera,
CMI más bajas no siempre indican mayor actividad
y, además, son variables dependiendo del
microorganismo y del antibiótico, como se ha
indicado anteriormente. También hay otros casos de
microorganismos que, aunque pertenecen al mismo
género, presentan mecanismos de resistencia
diferentes, como es el caso de Proteus vulgaris que
es siempre resistente a ampicilina, mientras que
Proteus mirabilis es generalmente sensible; o el de
Citrobacter freundii que siempre es resistente a
ampiclina, amoxicilina-clavulánico y a cefalosporinas
de primera y segunda generación, mientras que
Citrobacter koseri es siempre resistente a ampicilina
pero no a amoxicilina-clavulánico.
Otro requisito para poder realizar correctamente la
lectura interpretada del antibiograma es conocer el
fenotipo de sensibilidad de un microorganismo, ya
que hay bacterias que siempre son resistentes a
determinados antibióticos y otras que siempre son
sensibles, y la desviación de estos patrones indica si
el patrón del antibiograma corresponde a un fenotipo
habitual, raro o imposible (tabla 1). Los fenotipos
habituales son los aislamientos con mecanismos de
resistencia cuya presencia es epidemiológicamente
normal en el medio donde se realiza el antibiograma.
Un ejemplo de ello son la resistencia a penicilina y
sensibilidad a cloxacilina en un aislado de S. aureus.
Los fenotipos raros son los que presentan
resistencias poco habituales, bien porque han sido
recientemente caracterizadas o porque son muy
poco frecuentes en nuestro medio. Un ejemplo de los
primeros es la resistencia a imipenem en
Enterobacter cloacae, y de los segundos las cepas
de enterococo resistentes a la vancomicina.
Finalmente, los fenotipos imposibles no responden a
mecanismos de resistencia conocidos y, por tanto,
es necesaria su comprobación. Estos fenotipos
imposibles, en muchas ocasiones, representan un
error en la identificación del microorganismo o bien
problemas técnicos en la realización del
antibiograma, pero también hay que tener en cuenta
que la repetición de estos fenotipos en bacterias
correctamente identificadas puede suponer un
nuevo mecanismo de resistencia, tal es el caso de la
resistencia a linezolid en enterococos.
En la tabla 1 se indican algunos ejemplos de
fenotipos habituales, raros e imposibles, y en la tabla
2 algunos casos de bacterias intrínsecamente
resistentes a ciertos antibióticos. En un próximo
capítulo, en el que se analizarán con mayor detalle
los fenotipos de sensibilidad más comunes, se
expondrán algunos ejemplos de lectura interpretada
del antibiograma.

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