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UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA-UNAD-

                            ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS TECNOLOGÍA E
                                           INGENIERIA




                   GUÍA DE LABORATORIO DE BIOLOGÍA



                                          2010

                          Carmen Eugenia Piña López1
                             Yurby Salazar Núñez2,
                              Bibiana Ávila García3



_________________________
1
  M. Sc. Ciencias Biológicas; M.Sc. Docencia Universitaria; Especialista en Nutrición Animal
Sostenible; Especialista en Informática y Multimedia.
2
  Bacterióloga Tutora José Acevedo y Gómez
3
  Magistra en Educación. Especialista en planeación para la educación ambiental.
Psicopedagoga Licenciada en Biología y química
GUIAS PARA PRÁCTICAS DE BIOLOGÍA GENERAL

INTRODUCCION

Las prácticas de laboratorio de biología permite que estudiante confronte los conocimientos
teóricos básicos del curso, adquiera la habilidad y destreza en el manejo de equipos e
integre     en      su     desarrollo     aspectos     de     bioseguridad      y     ética.

Las guías para las prácticas de biología, son un importante dispositivo de ayuda pedagógica
y didáctica en el proceso de formación profesional que inician los estudiantes de los
programas de pregrado

Estas guías están descritas de manera clara y sencilla con el fin de que la ejecución
práctica pueda hacerse completamente.

Antes de realizar la parte práctica se recomienda ver cada uno de los videos presentados
en el curso de Biología en el link Multimedia,
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/multimedia.htm para hacerse una idea del
material a utilizar y procedimiento a seguir lo cual le facilitará la comprensión y el
desarrollo de la práctica.

Quienes deseen descargar los videos en su computador pueden hacerlo ver orientaciones al
final de la guía.



                  Orientaciones para las actividades de Laboratorio


El componente práctico se desarrollará mediante laboratorios previamente apoyados en
vídeos didácticos introductorios y se complementará con observaciones en el laboratorio.
Los laboratorios se realizan de forma presencial en cada uno de los CEAD donde
estén matriculados, con un tutor asignado por el director del Cead para tal fin. La fecha de
realización la determinan en cada CEAD y saldrá publicada en el Foro Noticias del aula y
en cada CEAD, motivo por lo cual hay que estar pendiente " leer diariamente" las noticias
del foro, para que puedan hacer su inscripción. La realización de las prácticas de
laboratorio es obligatoria para aprobar el curso.

Los informes de laboratorio de los estudiantes virtuales deben ser entregados al tutor
de metodología tradicional con quien realicen el laboratorio. El Informe incluye las
respuestas a las preguntas sobre la observación de los videos de preparación previa, el
pre-informe y el desarrollo de las guías. El tutor tradicional con quien realizan el
laboratorio debe calificar su proceso y su informe, y envía la nota al tutor virtual
para sumarla con las notas obtenidas en las demás actividades y de esta manera se pueda
dar la nota definitiva de su curso.

Las actividades en campus tienen un valor de 60% sobre la calificación del curso. El 60%
equivale a 300 puntos, de los cuales 90 puntos corresponden a la nota del laboratorio
enviada por el tutor tradicional, o sea un 30% de este componente práctico. La




                                                                                           1
equivalencia es la siguiente por ejemplo para una nota de 4,5 enviada por el tutor
tradicional:




             Calificación de los laboratorios enviada por el       Valor en
                            tutor tradicional                       Puntos
                                       5                              90
                                      4,5                             X
                                X= (90 x 4,5) / 5= 81 puntos

El costo de los laboratorios está incluido en la matrícula

A continuación encontrarán una tabla con los nombres de las prácticas su duración y
porcentaje.

           Sesiones de Práctica                  Duración     Porcentaje
                                                               sobre el
                                                             100% curso

1. Normas de Seguridad en el laboratorio y       4 horas     6
Microscopía

2. La Célula y Tejidos Vegetales                 4 horas     6

3. Mitosis y Meiosis                             1 hora      4

4. Los Microorganismos                           3 horas     6

Total                                            12          22




            FORMATO PARA OBSERVACIÓN DE VIDEOS DE LABORATORIO.
Objetivos:
Identificar los temas, materiales, habilidades que podemos desarrollar con la observación
de los videos y prácticas de laboratorio.

Instrucciones:
Esta actividad no reemplaza los laboratorios nos prepara para la realización de los
mismos.
Observe detenidamente cada uno de los videos de laboratorio relacionados en el material
didáctico del curso de Biología.
Responda      las preguntas que se realizan para cada video de las experiencias de
laboratorio.
Con los compañeros de su grupo colaborativo compare las respuestas.




                                                                                        2
Consolide en un solo documento los datos y preséntelos al tutor virtual

Recursos:
Videos de las experiencias:

1. Vídeo: Normas generales de uso del laboratorio
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/videoseguridad.htm

2. Video:_El microscopio parte 1 ttp://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_microscopio1.htm
  Video: El microscopio parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_microscopio2.htm

3. Video: Célula parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula-1.htm
   Video: Célula parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula_2.htm

4. Video: mitosis y meiosis parte 1
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis1.htm

Video: mitosis y meiosis parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis2.htm

5. Video: biodiversidad microbiana parte 1
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad1.htm

Video: biodiversidad microbiana parte 2
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad_2.htm

6. Video: tejidos vegetales http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_Tej_vegetales.htm
Preguntas: RESPONDA PARA CADA VIDEO.
1. ¿Cuál es el objetivo de esta práctica?
2. ¿Qué materiales necesita? ¿Los conoce todos? ¿Cuáles desconoce?
3. ¿Qué temas del módulo puede relacionar con esta experiencia? Justifique su respuesta.
4. ¿Qué habilidades cree que se pueden desarrollar al realizar ésta práctica de laboratorio?
5. ¿Qué utilidad o aplicaciones prácticas puede derivar del conocimiento que se desarrolla
con estos laboratorios?
6. Después de observar el video ¿Cuál es la conclusión a la que llega?

Formato elaborado por:
Esp. Bibiana Ávila García.
Punto de contacto: 3004986704 – bibi.avila@gmail.com Tutora CEAD Barranquilla.

Nota: No olviden colocar en el informe a entregar al tutor tradicional de laboratorio el
número del grupo colaborativo, el nombre de su tutor virtual, además de sus datos nombre
apellidos y código.

                              Recomendaciones Generales

Implementos que deben llevar al laboratorio

Bata Blanca, Guantes.
Papel absorbente, Paños de cocina
Jabón



                                                                                            3
Láminas y laminilla
Tapabocas.
Papel y lápiz para tomar apuntes

Antes de iniciar las prácticas usted debe haber leído el capítulo correspondiente en el curso
de biología, observado los videos de preparación previa y resuelto las preguntas sobre la
observación de videos y lo que se solicite en cada práctica

Forma de Evaluación

La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades

1. Participación en el foro colaborativo con la presentación del pre-informe sobre los
laboratorios, el cual incluye las respuestas a las preguntas sobre observación de videos y
las respuestas a los cuestionarios de cada práctica. Los puntos del pre-informe son:

      Titulo
      Objetivos
      Resumen de la información teórica
      Esquema o diagrama de flujo en orden riguroso por cada observación
      Respuesta a cuestionario que encuentre en la guía de práctica

2. Evaluaciones parciales presenciales al iniciar algunas prácticas
3. Presentación de informes de prácticas realizadas en el laboratorio, el cual incluye
también el pre-informe
4. Resolución de cuestionarios para medir el rendimiento después de las prácticas

 Aspectos mínimos que debe llevar un informe final (que se entregará al tutor
tradicional para su calificación)

1. Titulo
2. Objetivos
3. Resumen de la información teórica
4. Esquema de pasos para las observaciones en el laboratorio o diagrama de flujo en orden
riguroso por cada observación
5. Respuesta a cuestionario de cada práctica
5. Descripción detallada de las observaciones
6. Conclusiones
7. Referencias bibliográficas

A continuación encontrará una tabla con la descripción de la actividad a realizar y los
productos a entregar

           Laboratorio 1 Normas de seguridad en el laboratorio.

Vídeo: Normas generales de uso del laboratorio

Objetivo




                                                                                                4
Conocer y cumplir las principales normas de seguridad e higiene que se deben seguir en el
laboratorio, con el fin de evitar posibles riesgos, tanto para las personas como para el
medio ambiente.

Introducción

La bioseguridad, es la aplicación del conocimiento, de las normas y técnicas en el desarrollo
de las prácticas que se realizan en el laboratorio para prevenir la exposición del personal y
del medio ambiente a cualquier riesgo. Los riesgos pueden estar relacionados con las
propias instalaciones, con las muestras de origen biológico, con los procedimientos y
manipulaciones que se realicen.

Marco Teórico: Principales Normas

Las principales normas a tener en cuenta para el desarrollo de prácticas en el laboratorio
de Biología son las siguientes:

       en la zona de trabajo del laboratorio no se debe consumir alimentos ni bebidas para
evitar riesgos de contaminación.
       está prohibido fumar en el área del laboratorio o sus alrededores. Recordemos que
se trabaja con gas y que algunos químicos generan vapores inflamables.
       no se deben llevar a la boca lápices, etiquetas o cualquier otro material utilizado en
el laboratorio.
       se debe mantener el laboratorio limpio y aseado. Por consiguiente al terminar la
práctica se debe descontaminar la superficie de trabajo.
       las manos se deben lavar después de manipular material infeccioso, así como al
abandonar el laboratorio.
       todo estudiante debe hacer uso de la bata blanca, esto le protegerá la ropa del
contacto con reactivos y colorantes empleados en el laboratorio.
       sólo se debe permitir el paso a la zona de trabajo del laboratorio a las personas
autorizadas. Durante el trabajo se mantendrán cerradas las puertas del laboratorio.
       no se debe pipetear con la boca.
       debe utilizarse siempre un dispositivo de pipeteo
       todas las pipetas deben tener tapones de algodón para reducir la contaminación de
los dispositivos de pipeteo.
       todo el personal debe poner especial cuidado en evitar el contacto de la piel con
materiales potencialmente infecciosos. Con este fin deben usarse guantes. Los guantes
deben ser desechados antes de salir del área de trabajo. Jamás se debe salir de la misma
con los guantes puestos, ni con ellos se debe coger el teléfono.
       marque y rotule adecuadamente las láminas. Deben llevar claramente escrito en un
lugar visible, el nombre o identificación del grupo de trabajo, practica realizada y fecha.
       una vez concluida la práctica, proceda a organizar el sitio de trabajo, desinfectando
el mesón con toallas de papel humedecidas con hipoclorito de sodio o alcohol y dejando
tanto el material como el equipo utilizado limpio y en el lugar adecuado.
       es importante conocer los agentes, sustancias y productos peligrosos que existen
en el laboratorio. Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para
asegurarse de que es el que se necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.
       es necesario conocer el manejo de cada uno de los equipos existentes en el
laboratorio. Todo el material, especialmente los aparatos delicados, como lupas y
microscopios, deben manejarse con cuidado evitando los golpes o el forzar sus




                                                                                             5
mecanismos. Cualquier material de vidrio no debe enfriarse bruscamente justo después de
haberlos calentado con el fin de evitar roturas.
      en neveras que no posean un sistema de protección antideflagración no deben
almacenarse reactivos que contengan compuestos volátiles inflamables como éter etílico.
      los productos inflamables como gases, alcohol, éter, entre otros deben mantenerse
alejados de la llama del mechero. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos productos,
se hará al baño María, nunca directamente a la llama. Si se manejan mecheros de gas se
debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al apagar la llama.
      se debe lavar muy bien la cristalería que se utilice. Preste atención y cuidado al
manipular cristalería mojada.
      en el laboratorio habrá un recipiente plástico, para cristalería rota y para plásticos
que hayan estado en contacto con cultivos de células o virus. Por favor, deseche cada cosa
en el envase apropiado.
      mantenga despejadas las áreas. Trate de traer la menor cantidad posible de
pertenencias al laboratorio. Coloque sus pertenencias en un área designada o donde no
estorben.

Cuestionario para el pre-informe

1.1 ¿Que es bioseguridad?
1.2 ¿Cuáles serían para usted las normas básicas de bioseguridad en el laboratorio de
biología?
1.3 ¿Cómo puede usted evitar en el laboratorio daños a su salud?
1.4 Conclusiones

Procedimiento

Para el desarrollo de esta práctica el estudiante debe observar el video normas de
seguridad en el laboratorio y contestar las preguntas presentadas en el formato de
observación del video

                            LABORATORIO 2: MICROSCOPÍA

Autoría: Carmen Eugenia Piña L

video:_El microscopio parte 1

video:_EL microscopio parte 2

OBJETIVOS:

    Señalar los componentes mecánicos y ópticos que constituyen el microscopio.
    Realizar montajes húmedos
    Comprobar las propiedades que posee el microscopio.
    Realizar correctamente el manejo del microscopio óptico
    Calcular el diámetro del campo de visión
    Comprobar los principios en que se basa la microscopía óptica.
    Desarrollar en trabajo colaborativo el informe de laboratorio




                                                                                            6
Marco Teórico

Tipos de Microscopio

El Microscopio óptico simple

Constituido por una lente biconvexa única o lupa que hace converger los rayos luminosos
que la atraviesan en un punto denominado foco y a una distancia focal muy corta.

El Microscopio óptico Compuesto

El microscopio se define como un instrumento óptico formado por un sistema de lentes:
objetivos y oculares que amplían los objetos extremadamente pequeños para posibilitar su
observación. La lente del objetivo proporciona una imagen intermedia ampliada del objeto,
es decir, funciona como una lente simple, y la lente del ocular que recoge la imagen dad
por el objetivo y la aumenta.

El Microscopio electrónico

Este microscopio en lugar de una fuente de luz, utiliza un haz de electrones que se
desplazan en el vacío y en línea recta. Con el microscopio electrónico es posible observar
objetos muy pequeños como los virus que no pueden ser resueltos con el microscopio
óptico. En el microscopio óptico en lugar de lentes se emplean campos magnéticos que
enfocan los haces de electrones.


El Microscopio óptico Compuesto: componentes

A continuación se describen las partes que lo conforman:




Los objetivos: están localizados en la parte inferior del tubo insertados en una pieza
metálica, denominada revólver o portaobjetivos, que permite cambiarlos fácilmente.
Estos generan una imagen real, invertida y aumentada, esta imagen intermedia es captada



                                                                                         7
y      sufre      una      nueva       ampliación      por       el      ocular.             .

                                        Los objetivos más frecuentes son los de 4X,
                                        10X, 40X y 100X aumentos. Este último de
                                        100x se llama de inmersión ya que para su
                                        utilización se necesita aplicar aceite de cedro
                                        sobre la preparación. Y se utiliza para observar
                                        láminas coloreadas completamente secas. El
                                        poder de aumento de cada objetivo se indica en
                                        el número grabado en la manga del lente.
                                        Generalmente el objetivo de 4X se encuentra
                                        marcado por un anillo rojo, el de 10X por un
                                        anillo de color amarillo, el de 40=x con un anillo
                                        de color azul y el de 100X con un anillo de color
                                        blanco

La abertura numérica se encuentra (A.N.) se encuentra grabada en la manga del objetivo,
junto a la indicación del aumento.

0,30   En el objetivo de 10X
0,65   En el objetivo de 40X
1,30   En el objetivo de 100X

A medida que aumenta la A.N. disminuyen las dimensiones de la lente frontal, montada en
la base del objetivo. La lente del objetivo de 100x tiene el tamaño de una cabeza de alfiler
es mayor el poder de resolución. Además a medida que aumenta A.N. es mayor el poder de
resolución. Cuanto mayor sea el poder de resolución del objetivo, será más clara la imagen
y aumentará la capacidad de poner de manifiesto detalles adyacentes muy cercanos,
separándolos y aclarándolos. El poder de resolución máximo de un buen microscopio es
aproximadamente 0,25 nanómetros, el poder de resolución del ojo humano es de 0,25
milímetros.

                Los oculares se denominan así porque están muy cercanos al ojo. Su
                función es la de captar y ampliar la imagen formada en los objetivos. El
                poder de aumento del ocular se encuentra marcado en el ocular. Un ocular
                por 4 aumenta 4 veces la imagen que produce el objetivo. Un ocular por 6
                la aumenta 6 veces. Un ocular por 10 la aumenta 10 veces Nunca se deben
                tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, se deben limpiar muy
                suavemente con un papel de óptica



El tubo óptico: es una cámara oscura unida mediante una cremallera. Tiene el revolver
con los objetivos en su parte inferior y los oculares en el extremo superior.

El Brazo: es una columna perpendicular al pie. Puede ser arqueado o vertical y une al pie
con el tubo.




                                                                                             8
Platina                                   Es una plataforma horizontal con un
                                          orificio central, sobre el que se coloca la
                                          preparación, que permite el paso de los
                                          rayos procedentes de la fuente de
                                          iluminación       situada   por    debajo.
                                          Dos pinzas sirven para retener el
                                          portaobjetos sobre la platina y un carro
                                          con un sistema de cremallera guiado por
                                          dos tornillos de desplazamiento que
                                          permite mover la preparación de delante
                                          hacia atrás o de izquierda a derecha y
                                          viceversa. Está dotado de una escala
                                          graduada para medir de forma precisa
                                          las observaciones.



El condensador: es un sistema de lentes convergentes situadas bajo la platina, su
función es la de concentrar la luz generada por la fuente de iluminación hacia la
preparación.




Diafragma-iris Es una cortinilla que regula la cantidad de luz que entra en el
condensador, eliminando los rayos demasiado desviados. Se acciona mediante una perilla.
Esta situado debajo de la platina, inmediatamente debajo del condensador. La disminución
del diafragma permite visualizar partes de protozoos u hongos se utiliza en las
preparaciones frescas




                                                                                        9
Tornillo Macrométrico: Se encuentra en la
                                        parte inferior del microscopio. Sirve para alejar o
                                        acercar el tubo y la platina moviéndola de arriba
                                        hacia abajo y viceversa. Permite un enfoque
                                        aproximado      o    grueso    de    la   muestra
                                        Tornillo    micrométrico:      Generalmente      se
                                        encuentra incorporado al tornillo macrométrico.
                                        Sirve para dar claridad a la imagen al lograr un
                                        ajuste fino y preciso, mediante movimiento de la
                                        platina hacia arriba y hacia abajo de forma lenta.
                                        Ambos tornillos llevan incorporado un mando de
                                        bloqueo que fija la platina a una determinada
                                        altura.


La fuente de iluminación: se trata de una lámpara halógena de intensidad graduable.
Está situada en el pie del microscopio. Se enciende y se apaga con un interruptor y en su
superficie externa puede tener una especie de anillo para colocar filtros que facilitan la
visualización.

Por último definimos el pie o base: sirve como base del microscopio y tiene un peso
suficiente para dar estabilidad al aparato. En él se integra la fuente luminosa.


Poderes o capacidades del       Poder de aumento: Permite magnificar la imagen.
microscopio                     Corresponde al aumento (A) dado por la relación:
                                Tamaño de la imagen / tamaño del objeto. La
                                ampliación es igual al producto del aumento del lente
                                ocular por el del objetivo. Cada objetivo y cada ocular
                                tienen grabado el número de veces que aumentan la
                                imagen. Si la imagen del objeto, se hace aumentar 40
                                veces mediante el objetivo y enseguida 10 mediante el
                                ocular,    su  aumento     total será    10X40=    400
                                 ¿Cómo se calcula el aumento de una muestra? Se
                                multiplica el aumento que señala el ocular por el
                                aumento del objetivo dando como resultado el aumento
                                total de la muestra o número de veces en que el objeto
                                se encuentra ampliado con respecto a su tamaño
                                original.
                                Aumento total = aumento del ocular X aumento del
                                objetivo




                                                                                          10
Poder de definición Es la capacidad del microscopio
                                   para formar imágenes nítidas y con       contornos
                                   definidos




                                                                Poder de penetración o
                                                                profundidad



                                                                Permite     visualizar los
                                                                diferentes planos de una
                                                                preparación y está dado
                                                                por el ajuste de precisión
                                                                que se logra con el
                                                                tornillo micrométrico.


     Poder de resolución es la capacidad de presentar dos puntos que se encuentran
muy cercanos entre sí como separados, lo cual permite observar detalles de los objetos que
con el ojo humano no se podrían ver. El ojo humano no puede ver separados dos puntos
cuando su distancia es menor a una décima de milímetro. Con el Microscopio óptico, el
poder separador máximo es de 0,2 décimas de micra. Mejora la visión unas 500 veces con
relación a la del ojo humano




   En la imagen se observan espacios         En la imagen se observan varias fibras de
blancos entre la tinta negra que a simple   hilo que a simple vista no serían vistos
          vista no serían vistos




                                                                                         11
El poder de resolución depende de la longitud de onda
                                 ( λ ) y de la apertura numérica del objetivo (A.N.)


                                 El Poder de resolución esta dado por la formula:

                                                 Poder de resolución= λ
                                                        2x A.N.

                                 A.N: relaciona el ángulo de apertura de los rayos de
                                 luz, que provienen de la muestra, con el índice de
                                 refracción.




Principios generales de microscopía

Principios ópticos

Una lente sencilla (biconvexa) posee dos focos, uno a cada lado de la lente (F y F´).
Cuando los rayos luminosos pasan a través de la lente se concentran en el foco. La
distancia focal es la distancia entre el centro de la lente y el punto en donde convergen los
rayos.

La distancia focal de una lente depende del índice de refracción del material del cual está
hecha, y del medio que envuelve la lente. Por eso, es diferente la distancia focal de una
lente en el agua, que esta misma en el aire. Como también es diferente la distancia focal
de una lente de vidrio en comparación con una construida en plástico.




          http://micro.magnet.fsu.edu/primer/java/lenses/simplethinlens/index.html

Cuanto más pequeña es la distancia focal de una lente tanto mayor es su aumento. Si el
objeto se coloca a distancia mayor del foco, se obtiene una imagen real invertida, mientras
que si el objeto se localiza a una distancia menor del foco la imagen será virtual. A medida




                                                                                           12
que se aleja el objeto del foco, la imagen se percibe más pequeña. La distancia de trabajo
focal de un objetivo, es el espacio que existe entre la superficie de la lente del objetivo y la
laminilla, una vez se encuentre enfocada la preparación. A mayor aumento del objetivo la
distancia de trabajo disminuye.




Como determinar la posición de los objetos observados

Los objetos que se observan en el campo microscópico se pueden localizar en relación con
las manecillas del reloj. Los objetos que aparecen en la parte inferior del fondo del campo
microscópico se encuentran realmente en la parte superior. Los objetos en el lado izquierdo
del campo microscópico se encuentran realmente al lado derecho.

Desplazamiento del objeto

Si se mueve el portaobjetos hacia la derecha, el objeto examinado se desplazará hacia la
izquierda. Si se mueve el portaobjetos hacia usted, el objeto examinado se alejará.


Formación de la imagen real invertida




http://www.edumedia-sciences.com/a301_l3-microscope.html

Las imágenes se observan invertidas por las lentes.




                                                                                             13
Refracción de la luz




La distancia focal de una lente depende del índice de refracción del material del cual esta
hecha y del medio que envuelve la lente. Cuando los rayos de luz se mueven en un medio
homogéneo como el aire, se propagan en línea recta, pero cuando caen sobre la superficie
de un medio de diferente densidad, a la del medio en el cual se venía propagando, cambian
de dirección y de velocidad a estos cambios se les conoce como refracción de la luz.

Los rayos de luz procedentes de los objetos sumergidos en el agua se desvían al atravesar
dos medios de diferente densidad (agua-aire), originando este efecto de refracción. Por
ejemplo si introducimos un lápiz en un vaso con agua, el lápiz se verá cortado al pasar del
agua al aire.

En la práctica de microscopía encontramos diferentes medios: aire, agua aceite de
inmersión y vidrio, cuyos índices de refracción son 1.0, 1.33, 1.51, .1.54 respectivamente.
Al observar una muestra a través del microscopio, los rayos de luz tienen que atravesar
estos medios y son refractados cambiando su dirección.




                                                                                         14
Al aplicar el aceite inmersión se entre el preparado y la lente, aceite de inmersión, que
tiene un índice de refracción igual al de la lente y evita la refracción de los rayos luminosos.

Campo de Visión




El campo de visión de un microscopio es la zona         circular que se observa al mirar la
preparación bajo un determinado aumento. Para           medir el campo de visión de un
microscopio, se debe usar una unidad llamada micra.     Una micra equivale a 0,0001 mm; en
otras palabras, hay 1000 micras en un milímetro.        El diámetro de este campo es su
medida.

Para calcular el diámetro del campo de visión para un determinado aumento hay que seguir
los siguientes pasos:




a) Recortar un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado.
b) Ponerlo sobre la abertura central del portaobjetos




                                                                                              15
c) Observando por el ocular y con el objetivo de 4X, mover la muestra hasta lograr que la
línea   0    mm      quede      en    el     borde    izquierdo  del    campo      visual

                          d) Enfocar con el objetivo de menor aumento 4X hasta que se
                          vea con claridad. Enfocar la preparación quiere decir situarla a la
                          distancia del objetivo que permite su observación nítida. Esta
                          distancia s e conoce como distancia de trabajo y es tanto menor
                          cuanto mayor es el poder de aumento del objetivo.
                          e) Medir el campo visual haciendo coincidir una de las líneas del
                          papel milimetrado con el borde del campo de visión.

                  f) Contar el número de milímetros que se ven (recuerde que la distancia
                  entre dos líneas es un milímetro) y estimar aproximadamente la fracción
                  sobrante, si la hay. El resultado será el diámetro del campo visual para
                  ese aumento (objetivo x ocular).
                  g) Si queremos calcular el diámetro del campo de visión para aumentos
                  mayores, hay que tener en cuenta que cuanto mayor sea el aumento, el
                  campo será menor, es decir, se verá menos de la muestra que estemos
                  observando. De forma que, si el aumento es el doble, el campo será la
                  mitad, si el aumento es el triple, el diámetro será la tercera parte, etc.
                  (inversamente proporcionales). Por tanto, bastará con realizar un sencillo
                  cálculo matemático para saber el nuevo diámetro.


Así se puede calcular los diámetros de objetos microscópicos, células, amibas, vistos.


     Medida en mm (escala del                                  Tamaño de las marcas
                                    Equivalencia en µm
          portaobjetos)                                            (divisiones)

               1mm                       1000 µm                      grandes

              0.1 mm                      100 µm                     medianas

             0.01mm                       10 µm                    más pequeñas



Recuerde que aunque la escala está marcando mm usted lo leerá en micras.

 Preparaciones Las preparaciones pueden ser de varios tipos: a) Frescas: Son montajes
generalmente húmedos. La muestra se observa sin modificar, diluida o concentrada.
Permite observar la movilidad de los microorganismos vivos. Se utiliza también para
observar procesos como la mitosis, meiosis, la formación d esporas. Para realizar un
montaje húmedo se debe verter una gota de agua o del líquido que contiene los
microorganismos en el centro de una lámina portaobjetos y cubrirlo con una laminilla
cubreobjetos. Para evitar la evaporación se puede sellar el espacio que hay entre el
portaobjetos y el cubreobjetos con vaselina o alguna sustancia similar. Frescas ligeramente
modificadas: Las muestras se pueden diluir con agua o con agua con sal, esta última evita
que la presión osmótica del medio no sea demasiado baja. Se puede aplicar un colorante o
reactivo para observar mejor las estructuras. b) Fijadas y teñidas: Se coloca una
suspensión homogénea de microorganismos en una gota de agua sobre el portaobjetos y




                                                                                           16
se fija (mediante calor o agentes químicos) y después se tiñen mediante diferentes
técnicas. Estas preparaciones se observan sin cubreobjetos y, habitualmente, con objetivos
de inmersión.

Cuestionario a resolver para el pre-informe

2.1 En la siguiente representación gráfica de un microscopio, reconozca y ubique cada una
de las siguientes partes y su función

                                                     Tubo
                                                     Oculares
                                                     Brazo
                                                     Objetivos de 4x, 10x, 40x y 100x
                                                     Platina
                                                     Condensador
                                                     Fuente de iluminación
                                                     Tornillo macrométrico y micrométrico
                                                     Pie




2.2   Clasifique   en   el   cuadro   las   partes     mecánicas      y   ópticas   del   microscopio.

Partes mecánicas                                     Partes ópticas




2.3 Qué es un montaje húmedo.
2.4 Defina los tipos de montaje que se pueden hacer en el laboratorio.
2.5 Describa los pasos para la elaboración de un montaje húmedo.
2.6 ¿Qué debe hacerse para lograr una iluminación adecuada?
2.7 ¿Cómo se enfoca el microscopio al iniciar la observación?
2.8 ¿Al mover el portaobjetos de derecha a izquierda a qué lado se mueve la imagen?
2.9 ¿Con qué objetivo se logra un campo de visión más grande?
2.10 ¿Con qué objetivo se observan mejor los detalles de una imagen?
2.11 ¿Con el objetivo de mayor aumento se necesita menor o mayor iluminación de la que
se necesita con el de menor aumento?
2.12 ¿Qué función cumple el aceite de inmersión? ¿Con qué objetivo se utiliza?




                                                                                                    17
2.13 ¿Cuál es el poder de aumento cuando se estén utilizando cada uno de los objetivos de
4X, 10X, 40X y el ocular de 10X?
2.14 ¿Cuáles son las propiedades del microscopio?

2.15 Defina los siguientes poderes o capacidades del microscopio

          a.   Poder   de   Aumento
          b.   Poder   de   definición
          c.   Poder   de   Resolución
          d.   Poder   de   Penetración de Foco o Campo

                                       PROCEDIMIENTO

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR AL LABORATORIO

Bata Blanca, Guantes.
Papel absorbente, Paños de cocina
Jabón
Tapabocas.
Papel y lápiz para tomar apuntes
Resueltas las preguntas sobre la observación de videos y las que se solicite en cada
práctica
Agua estancada o de solución de tierra de infusorios
Papel milimetrado
Hilos de colores
Tela de cuadros 2 centímetros
Recorte de periódico con la letra asimétrica: Pude ser la letra e o la letra a
Láminas portaobjetos, Laminillas (por grupo)
papel absorbente

MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO

Lamina con extendido coloreada
Microscopio
Aceite de inmersión
Papel de Arroz o de óptica
Alcohol isopropílico

Realización de Montaje húmedo

Tome con una pipeta agua estancada o de solución de tierra de infusorios
Coloque la gota de agua estancada o de solución de tierra de infusorios sobre una lámina
porta-objeto
Tome una laminilla cubreobjetos, en posición oblicua, (45 grados) y apoyando una arista
sobre la lámina al lado de la gota, déjela caer suavemente.

Manejo del microscopio

Encienda el microscopio
Coloque el objetivo de menor aumento 4X
Baje la platina completamente girando el tornillo macrométrico.




                                                                                           18
Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas
condiciones
Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior
Coloque la lámina con la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas.
Procure que la preparación quede centrada, girando el tornillo para desplazamiento del
carro móvil
Gire el tornillo macrométrico en sentido contrario a las agujas del reloj para subir la platina
hasta el tope. Debe hacerlo mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre
el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación.
Cierre o abra el diafragma hasta una posición intermedia, accionando su perilla en sentido
contrario a las agujas del reloj para que la luz no sea ni muy brillante ni demasiado tenue.
Inicie la observación con el objetivo de 4X.
Mirando a través de los oculares, separe lentamente el objetivo de la preparación con el
tornillo macrométrico en sentido de las agujas del reloj.
Hasta lograr observar la imagen
Cuando se observe algo nítida la muestra, gire el tornillo micrométrico hasta obtener un
enfoque fino
Gire el revolver
Coloque el objetivo de 10X
Visualice con el objetivo de 10X y detalle las estructuras
Gire el revólver y visualice con el objetivo de 40X enfoque con el tornillo micrométrico y
detalle las estructuras
Detalle como el campo se reduce y el alga y el protozoo se observan mejor.

Observación con el objetivo de inmersión 100X

Se utiliza para la observación de muestras fijadas, no para muestras frescas.
Coloque el objetivo de inmersión de manera que el orificio de la platina quede entre el
objetivo de 100X y el de 40X
Suba totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la
zona que se va a visualizar y donde habrá que aplicar el aceite
Coloque una gota de aceite de inmersión sobre la preparación en el círculo de luz
Coloque una lámina coloreada sobre la platina
Ubique el objetivo el objetivo de 100x
Suba la platina lentamente hasta que la lente toque la gota de aceite
Observe la imagen con aumento de 100X
En esta preparación se muestran eosinófilos un tipo de células sanguíneas coloreados con
colorante de Wright
Limpie el objetivo de inmersión con un papel especial para óptica y alcohol isopropílico
Deje el objetivo de menor aumento en posición de trabajo.

En la siguiente dirección encuentra un excelente ejercicio en línea sobre las partes del
microscopio y su función.
http://personales.ya.com/geopal/g-b_1bach/ejercicios/act10tema6.htm

Preguntas adicionales para el informe final

2.16 Observe y escriba cuál es el valor de los oculares_________________
2.17 Observe y escriba cual es el valor de cada uno de los objetivos_____,____,____,____




                                                                                            19
2.18 Calcule el aumento logrado para cada objeto observado en su práctica de laboratorio
(Al multiplicar el valor del ocular por el valor del objetivo se obtiene el aumento del
tamaño del objeto que observamos).

           3. Uso del microscopio. Organización del proceso paso a paso


      Tome una gota de la             Colóquela sobre una         Retire el exceso
      muestra   de  agua              lámina portaobjetos, y      de agua por los
      estancada                       cúbrala    con     una      bordes, usando
                                      laminilla.                  papel
                                                                  absorbente.


                                          Observe        el
      Dibuje sus                          montaje
      observaciones                       realizado      al
      anotando el aumento                 microscopio en
      utilizado                           4x, 10x y 40x.



3.1. De la muestra de agua estancada tome una gota y colóquela en una lámina
portaobjetos, cubra con una laminilla.
3.2 Retire el exceso de agua por los bordes usando papel absorbente.
3.3 Observe el montaje realizado al microscopio con aumentos de 4x, 10x y 40x. En el
informe debe incluirse el siguiente cuadro que debe registrar las observaciones realizadas.

   OBJETO       AUMENTO                      DIBUJO                     ANÁLISIS Y
OBSERVADO       UTILIZADO                                             CONCLUSIONES
Agua                4X
estancada
                     10X

                     40X


3.4 ¿Qué organismos pueden observarse en la gota de agua estancada?
3.5 ¿Son todos de igual tamaño y forma?
3.6 ¿Se observan organismos móviles o estáticos?

4. Comprobación de los poderes o capacidades del microscopio óptico

4.1 Realice un montaje húmedo con la letra asimétrica y obsérvela al microscopio siguiendo
los pasos anteriores.
4.2 Calcule el aumento del tamaño del objeto observado para cada objetivo del microscopio
con el cual le correspondió trabajar.
4.3 ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento al observar la letra?
5. Realice un montaje húmedo con un centímetro cuadrado de papel milimetrado y
obsérvelo al microscopio
5.1 Calcule el diámetro del campo de visión para un aumento de 4x en un cuadrado de 1
cm de lado de papel milimetrado.




                                                                                         20
Para calcular el diámetro del campo de visión para un determinado aumento hay que seguir
los siguientes pasos:




a) Recortar un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado.
b)      Ponerlo      sobre      la      abertura      central        del       portaobjetos:

                           c) Observando por el ocular y con el objetivo de 4X, mover la
                           muestra hasta lograr que la línea 0 mm quede en el borde
                           izquierdo del campo visual como se observa en la gráfica
                           d) Enfocar con el objetivo de menor aumento 4X hasta que se
                           vea con claridad. Enfocar la preparación quiere decir situarla a
                           la distancia del objetivo que permite su observación nítida. Esta
                           distancia s e conoce como distancia de trabajo y es tanto menor
                           cuanto mayor es el poder de aumento del objetivo

                      e) Medir el campo visual haciendo coincidir una de las líneas del papel
                      milimetrado con el borde del campo de visión.

                      f) Contar el número de milímetros que se ven (recuerde que la
                      distancia entre dos líneas es un milímetro) y estimar
                      aproximadamente la fracción sobrante, si la hay. El resultado será el
                      diámetro del campo visual para ese aumento (objetivo x ocular).




g) Si queremos calcular el diámetro del campo de visión para aumentos mayores, hay que
tener en cuenta que cuanto mayor sea el aumento, el campo será menor, es decir, se verá
menos de la muestra que estemos observando. De forma que, si el aumento es el doble, el
campo será la mitad, si el aumento es el triple, el diámetro será la tercera parte, etc.
(inversamente proporcionales). Por tanto, bastará con realizar un sencillo cálculo
matemático para saber el nuevo diámetro.

Así se puede calcular los diámetros de objetos microscópicos, células, amibas, vistos.

5.2 Calcule el diámetro del campo de visión para aumentos de 10X, 40X del mismo
cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado.
5.3 Compare la anchura del campo visual con cada uno de los tres objetivos
5.4 ¿Con cuál objetivo el campo de visión es mayor con el de mayor o menor aumento?

6. Realice un montaje húmedo con tres hebras de hilo superpuestas y obsérvelas al
microscopio
6.1 Para las muestras de la letra, la hebra de hilo observadas determine:




                                                                                          21
a.   ¿Cómo   se   manifiesta   el   poder   de   resolución?
    b.   ¿Cómo   se   manifiesta   el   poder   de   aumento?
    c.   ¿Cómo   se   manifiesta   el   poder   de   definición?
    d.   ¿Cómo   se   manifiesta   el   poder   de   penetración o profundidad?

6.2 ¿Cuál es la utilidad del microscopio?
6.3 ¿En qué montaje se observó mejor el poder de penetración?

7. Comprobación de los principios ópticos del microscopio

Después de observar la letra asimétrica, Conteste las siguientes preguntas:

7.1 ¿Al observar la letra asimétrica: ¿Se ve invertida, o en la misma posición en que estaría
si se viera a simple vista? ¿Parece como si se viera por un espejo?
7.2 ¿Al mover la preparación hacia la derecha. ¿Hacia dónde se mueve la imagen?
7.3 ¿Al alejara el portaobjeto o la muestra de usted hacia donde se nueve la imagen?
7.4 ¿Si la distancia focal es mayor el tamaño del objeto es mayor o menor?

8. Tome la lámina con el extendido coloreado y obsérvela en el microscopio enfocando
primero con el objetivo de 10x, luego ponga una gota de aceite de inmersión sobre el
extendido y ubique el objetivo de 100x.

Describa los detalles observados con cada objetivo.

Al finalizar el trabajo deje el microscopio en su correcta posición, limpie los objetivos,
colóquele la funda y guarde en su puesto. Al terminar de desarrollar las prácticas
usted debe ingresar al foro colaborativo del curso y participar con sus 4
compañeros de grupo colaborativo en la elaboración del informe de laboratorio
respondiendo a las anteriores preguntas compare las respuestas de los 5
integrantes y consolídelas en un solo documento que enviarán al foro para la
retroalimentación y calificación por parte de su tutor.


                                    Laboratorio 3: La Célula

vídeo Célula parte 1
Vídeo Célula parte 2

OBJETIVOS:

        Describir las diferentes formas y tamaños de las células
        Identificar las diferentes estructuras y organelos que posee una célula, con base en
         la capacidad de ampliación del microscopio óptico.
        Describir las diferentes formas y tamaños de una célula
        Señalar las diferencias fundamentales entre una célula animal y una vegetal
        Reconocer que una célula puede constituir un organismo.

Marco Teórico: Módulo de Biología, Unidad 1, lecciones 7 a 10

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR:




                                                                                           22
Bulbo de cebolla Allium cepa
Papa
Tomate
Hojas de Elodea
Laminas portaobjetos y Laminillas
Cuchilla o bisturí
Pinza
Tijeras pequeñas
hisopos

MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO:
1 caja de petri
Aguja o asa recta
Algodón
Alcohol
Lancetas
Lugol
Solución salina
Acetocarmin
Azul de metileno
Safranina
Colorante de Wright
Microscopio

Cuestionario a resolver para el pre-informe

Establezca claramente y de forma gráfica las diferencias entre célula procariota y
eucariota, entre una célula animal y vegetal. (la representación gráfica puede realizarla de
manera creativa)

Defina el concepto de tejido, y explique la función del tejido Epidérmico, Parenquimático,
Epitelial, Sanguíneo
Para cada una de las observaciones realice un esquema o diagrama de flujo en orden
riguroso

PROCEDIMIENTO

Observación de tejido epidermal de cebolla

Elabore un montaje de tejido epidermal de bulbo de cebolla y obsérvelo al microscopio.
Responda como mínimo las preguntas consignadas en la orientación para descripción
análisis y conclusiones.
1. Tome la cebolla y corte con el bisturí un pedazo de bulbo, levante suavemente con una
pinza una capa delgada y transparente de la parte interna, este es el tejido epidermal.
2. Levante suavemente con la pinza una capa delgada y transparente de la parte interna,
éste es el tejido epidermal. Divida el tejido que obtuvo en dos partes de 3-4 mm.
3. Coloque una gota de agua sobre la lámina portaobjetos y con ayuda de una aguja de
disección extienda sobre ella una parte de la epidermis, teniendo cuidado que la cara
externa quede hacia arriba y sin dobleces. Cubra el preparado con una laminilla.




                                                                                          23
4. Coloque sobre en otra lámina una gota de lugol y la otra parte del tejido epidermal. Deje
actuar el colorante lugol durante 5 minutos. Acerque una laminilla, en posición oblicua, y
apoyando una arista sobre la lámina al lado de la gota, déjela caer suavemente sobre la
gota.
7. Enseguida proceda a la observación de las preparaciones con pequeño aumento de 10x.
8. A continuación revise las preparaciones con el objetivo de 40x.Tenga en cuenta que las
propiedades ópticas de los organelos son similares, por lo tanto se hace difícil distinguir
unos de otros. Sin embargo las propiedades químicas de los organelos son diferentes, por
esto, reaccionan de distinta forma ante determinados colorantes. Al utilizar Lugol se
pueden          distinguir      mejor         algunas          estructuras         celulares.
9. Anote y dibuje sus observaciones. Tenga en cuenta las diferencias observadas en la
lámina con agua y la lámina con lugol.

Orientación para la descripción, análisis y conclusiones de las observaciones

1.     Dibuje en su formato 2 o 3 de las células que forman el tejido epidermal de la
cebolla. Reconozca sus partes y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las
siguientes preguntas
a.     ¿Qué forma tiene las células de este tejido?
b.     ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) en 40X?
c.     ¿Qué conclusiones puede sacar de la utilización de diferentes aumentos?
d.     ¿Al hacer el montaje con tinción (lugol), que sucede, qué organelos se colorean?
e.     ¿Qué ventajas tiene el utilizar colorante? ¿Qué desventaja?
f.     ¿Qué función cumple el tejido epidermal?

Observación de tejido parenquimatoso en un corte transversal de papa

Elabore un montaje para observación del tejido parenquimatoso en un corte transversal
de papa:

1. Tome el bisturí y haga un corte transversal de la papa, este corte debe ser tan fino que
la apariencia de la porción que obtenga sea transparente.
2. En una caja de petri con agua, enjuague el corte para sacar el exceso de almidón,
contenido en las células de los tejidos de la papa.
3. Elabore dos montajes húmedos uno con una gota de agua y otro con una gota de lugol.
4. Observe con el objetivo de 10x. Anote y dibuje sus observaciones
5. Observe el montaje con el objetivo de 40x.

Observación, descripción, análisis y conclusiones

2.    Dibuje en su formato 2 o 3 de las células que forman el parénquima de la papa.
Reconozca sus partes y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes
preguntas
a.    ¿Qué forma tiene las células de este tejido?
b.    ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) en 40X?
c.    ¿Al hacer el montaje con tinción (lugol), que sucede, qué organelos se colorean?
¿De qué color? ¿Por qué?
d.    ¿Qué función cumple este tejido?

Observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico en hoja de Elodea




                                                                                           24
Para observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico utilice una hoja de Elodea:

1. Tome con la pinza una ramita de Elodea y corte con las tijeras una hojita.
2. Extiéndala sin invertirla sobre una lámina portaobjetos, adicione una gota de agua y
cúbrala con una laminilla.
3. Observe detenidamente a través del microscopio con aumento 10x, 40x. Ponga
   atención al movimiento del citoplasma. Anote y dibuje sus observaciones

Observación, descripción, análisis y conclusiones

Dibuje en su formato 2 o 3 de las células que forman el tejido. Reconozca sus partes y
señálelas mediante flechas con nombres. Indique mediante Flechas el movimiento del
citoplasma. Conteste las siguientes preguntas
    a. ¿Qué forma tiene las células de este tejido?
    b. ¿Qué estructuras se observan con el objetivo 40X?
    c. ¿Qué función cumplen los cloroplastos?
    d. ¿Qué es Ciclosis? ¿Por qué se realiza?
    e. ¿Qué es presión de turgencia?
    f. ¿Qué es ósmosis?

Observación de cromoplastos en pulpa de tomate

Para continuar realice un montaje con pulpa de tomate e identifique los cromoplastos:

1.   Con una hoja de afeitar o bisturí, haga una incisión y separe la cáscara.
2.     Extraiga una pequeña porción de pulpa con el extremo de una aguja y espárzalo sobre
un   porta objetos seco. No adicione agua.
3.    Coloque encima un cubreobjetos y comprima suavemente con los dedos hasta obtener
un   completo aplastamiento del fragmento de pulpa de tomate.
4.   Identifique las células con el objetivo de 10X
5.   Seleccione el mejor grupo de células y luego pase al objetivo de 40x.
       Anote y dibuje sus observaciones

Observación de células escamosas epiteliales

1.   Coloque una pequeña gota de solución salina en el centro del portaobjetos.
2.   Con un palillo raspe suavemente el interior de su mejilla, de abajo hacia arriba.
3.   Coloque el producto de este raspado en la gota de solución salina.
4.   Coloree con una gota de acetocarmin, azul de metileno o safranina.
6.   Coloque el cubre objetos y observe al microscopio con objetivo de 10x y 40x e
     identifique las células de forma irregular. ¿Qué forma tiene estas células? ¿Qué
     organelos se observan con el aumento de 10X y 40X?. Al aplicar colorante qué
     organelos se observan mejor? ¿Cuál es la función del tejido epitelial? Anote y dibuje sus
     observaciones

Observación de células sanguíneas

A    continuación   realice   un   extendido   para   observación   de   células   sanguíneas:

1. Desinfecte con un algodón humedecido en alcohol la punta del dedo anular o índice,
   deje secar el alcohol y con la lanceta, haga una punción en la yema del dedo.




                                                                                            25
2. Coloque una pequeña gota en una lámina portaobjetos limpia y seca.
3. Coloque otra lámina en ángulo agudo sobre la primera, acérquela a la sangre y deslice
   suavemente en forma continua hasta formar una capa o frotis delgado.
4. Deje secar la preparación al medio ambiente.
5. Una vez seca la lamina aplique sobre el frotis el colorante de Wright y déjelo actuar
   durante cuatro minutos. Con este procedimiento el colorante fijará la preparación.
6. Lave el exceso de colorante con agua de la llave y deje secar la lámina verticalmente.
7. Observe al microscopio con el objetivo de pequeño y mediano aumento e identifique los
   glóbulos rojos, leucocitos y plaquetas.
8. Posteriormente observe la preparación con el objetivo de 100X y detalle la forma de los
   eritrocitos, plaquetas y neutrofilos. ¿En cuáles de estas células no se encuentra
   núcleo? ¿Cuáles aparecen más frecuentemente? Identifique las células sanguíneas
   teniendo en cuenta la forma, ausencia o presencia de gránulos en el citoplasma,
   coloración que toman los gránulos y forma del núcleo. ¿Qué función cumplen cada una
   de estas células? Anote y dibuje sus observaciones

                                Formato de observaciones

     OBJETO               AUMENTO                 DIBUJO         ANÁLISIS Y
   OBSERVADO              UTILIZADO                            CONCLUSIONES




Conclusiones:

Deben estar relacionadas con la diferencia entre las células epidérmicas vegetales y
parenquimatosas vegetales; diferencias entre las células animales y vegetales, (forma
tamaño, distribución, entre otros)

Laboratorio 4: Mitosis y Meiosis

Video: mitosis y meiosis parte 1
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis1.htm

Video: mitosis y meiosis parte 2
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis2.htm

OBJETIVOS:

      Manejar correctamente los materiales y reactivos específicos de la práctica.
      Identificar cada uno de los periodos que comprende el ciclo celular
      Relacionar cada cambio presente en las células meristemáticas, con las diferentes
       fases de la mitosis.
      Reconocer los procesos de la meiosis con base en el material suministrado.

Marco Teórico Unidad 1 Capítulo 2 Lecciones 12 a 14

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR
bulbo de cebolla Allium cepa




                                                                                        26
Bisturí
Pinzas
vaso desechable
Palillos grandes
Tijeras
Papel de filtro
Portaobjetos
Cubreobjetos
Lanceta
Esmalte transparente
MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO
Pipeta Pasteur, Vaso de precipitado
Cubeta de disección
Aceto orceina
Eosina
Metanol
Bisturí

Preinforme Defina y explique de manera grafica la mitosis y meiosis, detallando sus
etapas y las células en las que se presenta este proceso.

PROCEDIMIENTO:

Para el desarrollo de esta práctica utilice       bulbos de cebolla, Allium cepa y realice
preparaciones con la raíz de material fijado y teñido, una vez obtenidos los extendidos de
células obsérvelos al microscopio óptico.

1. Con ayuda de una pinza retire la capa externa marronacea o rosácea y lave con
abundante agua, esto se realiza para eliminar restos de sustancias con las que
frecuentemente han sido tratadas para inhibir o retardar la germinación de las raicillas.
2. Llene un vaso de precipitados con agua y coloque un bulbo de cebolla sujeto con dos o
tres palillos de manera que la parte inferior quede inmersa en el agua.
3. Póngalo a germinar a 25°C o a temperatura ambiente durante 3 días, al cabo de estos
aparecerán numerosas raicillas en crecimiento de unos 3 o 4 cm. de longitud.
4. Revise diariamente y procure que la corona no se deseque para lo cual es necesario
rellenar con agua cada 24 horas.
5. Cuando las raíces tengan entre 0.5 y 1 cm de longitud, realice cortes de raíz de
aproximadamente 2 – 3 mm a partir del ápice.
6. colóquelas en una lámina portaobjetos. Adiciona una gota del colorante aceto orceina o
eosina.
7. Coloque el cubreobjetos con mucho cuidado sobre la raíz. Con ayuda de la punta de una
lanceta, de unos golpecitos sobre el cubre objetos sin romperlo, de modo que la raíz
quede extendida.
8. Use papel de filtro para retirar el exceso de colorante realice una suave presión,
evitando que él cubre objetos resbale. Si la preparación está bien asentada no hay peligro
de rotura por mucha presión que se realice.
9. Selle todos los bordes del cubre objetos con esmalte transparente, para evitar que se
seque y de esta manera conservar la preparación durante varios días.
10. Coloque la preparación al microscopio e inicie la observación con el objetivo de 10x e
identifique las células.




                                                                                        27
11. Cambie al objetivo de 40X para detallar las células. Observe los núcleos y cromosomas
en color rosáceo – morado.
12. Ubique el objetivo de 100 x y anote sus observaciones anotando las diferencias en
cada uno de los aumentos mencionados.
13. Trate de observar detenidamente las preparaciones y distinga células en interfase y
células en división y dentro de estas, las diferentes etapas de la mitosis
Realice dibujos de lo observado.

Para la observación de las diferentes fases de la meiosis trabaje con micropreparados con
células en proceso de meiosis

Trate de observar detenidamente las preparaciones y distinga células en interfase y células
en división y dentro de estas, las diferentes etapas de la mitosis
Realice dibujos de las fases que distinga, tenga en cuenta la posición de los cromosomas
para identificar las fases.

INFORME.

     OBJETO             AUMENTO                DIBUJO             ANÁLISIS Y
   OBSERVADO            UTILIZADO                               CONCLUSIONES




1.     Dibuje en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué
tipo de tejidos pertenecen e identifique lo siguiente.

¿Qué etapas de la meiosis y mitosis observo?
¿Qué proceso se está desarrollando en las etapas observadas?
¿Qué tipo de células se están observando?
¿Cuántos cromosomas poseen las células en mitosis?
¿Cuántos cromosomas poseen las células en meiosis?

                    Laboratorio 5: Diversidad de Microorganismos


Video: biodiversidad microbiana parte 1
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad1.htm

Video: biodiversidad microbiana parte 2
http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad_2.htm

Descripción

A través de esta práctica el estudiante podrá realizar una descripción macroscópica de las
colonias bacterianas y de hongos, de microorganismos como protozoos y microalgas,
además de adquirir destrezas en técnicas de tinción.

OBJETIVOS:




                                                                                            28
   Reconocer en placas de cultivo diferentes tipos de microorganismos, en especial
       Colonias de bacterias y hongos.
      Conocer y aplicar la técnica de tinción de Gram
      Identificar bacterias Gram positivas y Gram negativas
      Observar microscópicamente bacterias con endosporas (Bacillus)
      Observar microscópicamente hongos.
      Observar microscópicamente levaduras.
      Observar microorganismos de fermentación ácido láctica y fermentación alcohólica
       a partir del kumis o yogurt.
      Observar protozoarios y algas en muestras de agua

Marco Teórico: Unidad Capitulo 4 Lecciones 22 a 26

MATERIAL SUMINISTRADO                                  MATERIAL QUE SE DEBE
Cultivos de diversos hongos                            TRAER
bacterias en cajas de petri                            Levadura de panadería
Solución salina                                        Yogur casero o probiótico
Agua destilada                                         Agua estancada
Mechero                                                Laminas portaobjetos Laminillas
Escobillones                                           Agua azucarada
Gotero                                                 Tajada de pan
Papel de filtro                                        Asa recta y de argolla
Tubo de ensayo                                         Cinta adhesiva
Varilla de vidrio
Microscopio
Coloración de Gram ( cristal violeta, lugol, alcohol
acetona y safranina)
Verde de Malaquita
Safranina 0.5%
Lactofenol
Azul de Metileno
Rojo neutro
Alcohol o Metanol

Preinforme

   1. Defina los principales linajes los organismos.       Enriquezca   gráficamente     su
      explicación.
   2. Complete el siguiente cuadro conceptual.

                                      Principales
                                     Características                     Impacto
  Organismo       Tipo de Célula     Morfológicas y    Hábitat          Ecológico
                                      Fisiológicas

   Bacteria


 Protozoario




                                                                                         29
Hongos


    Algas

PROCEDIMIENTO:

Entre los principales grupos de microorganismos se encuentran: bacterias, hongos, algas y
protozoarios.

Observación macroscópica de colonias

1. Realice una descripción macroscópica de las colonias bacterianas y de hongos
entregadas en las cajas de Petri. Haga un cuadro donde describa la forma (puntiforme,
circular, rizoide, irregular y filamentosa), el borde (entero, ondulado o filamentoso), la
elevación (plana, elevada, convexa, crateriforme y acuminada) y la superficie (lisa o
rugosa, mate o brillante, seca o cremosa, invasiva o superficial).

Dibuje en su formato 2 o 3 de las colonias observadas, señalando en el dibujo a que tipo de
organismo pertenece e identifique lo siguiente.

¿Qué forma tienen las colonias célulares observadas? ¿Cuál es su color?
¿Qué forma tienen las colonias observadas (puntiforme, circular, rizoide, irregular y
filamentosa), ¿Cómo es el borde de la colonia (entero, ondulado o filamentoso)
¿Cómo es la elevación (plana, elevada, convexa, crateriforme y acuminada)
¿Cómo es la superficie (lisa o rugosa, mate o brillante, seca o cremosa, invasiva o
superficial)


   Colonia            Forma             Borde            Elevación        Superficie




COLORACION DE GRAM

A partir de una de las colonias de los cultivos dados realice un frotis de la siguiente
manera:

1. Tome una lamina portaobjetos limpia y en ella coloque una gota de solución salina.
2. Con un asa previamente esterilizada a la llama del mechero, obtenga una pequeña
muestra de las colonias observadas. Mézclela en la gota de solución salina que coloco en
el portaobjetos.
3. Déjela secar al aire libre y fíjela pasándola por la llama del mechero.
Posteriormente proceda a colorear con la tinción de gram de la siguiente manera:
4. Cubra la preparación con cristal violeta y déjela actuar por 1 minuto. Lave con agua
corriente.
5. Cubra la preparación con lugol y déjelo actuar por 1 minuto. Lave con agua corriente.




                                                                                         30
6. Agregue alcohol acetona y déjelo actuar por 5 segundos. Lave con agua corriente.
7. Adicione safranina y déjela actuar por 30 segundos. Lave con agua corriente y ponga a
secar la lámina.
8. Ubique la lámina en el microscopio, localice las bacterias con el objetivo de menor
aumento y observe en detalle a mayor aumento.
9. Identifique las células observadas. Anote sus observaciones.

BACTERIAS DE LA CAVIDAD BUCAL

1. Prepare una lámina portaobjetos limpia y sin grasa.
2. Tome un escotillón desechable, páselo por el borde de la encía en la parte que hace
contacto con los dientes.
3. La muestra extraída con el escotillón colóquela sobre una lámina portaobjetos.
4. Deje secar por sí sola la lámina durante unos minutos con el fin de definir el frotis.
5. Pase lentamente el portaobjetos a través de la llama del mechero, con esto se fija el
frotis.
6. Deje enfriar y coloree con la tinción de Gram como se indicó anteriormente.
7. Deje secar la lámina y ubique las células con el objetivo de menor aumento y luego
observe con el objetivo de inmersión.
8. Tenga en cuenta que las bacterias Gram positivas toman coloración violeta y las Gram
negativas coloración roja. Anote sus observaciones.

BACTERIAS DEL YOGUR

1. Tome una lámina portaobjetos y en ella coloque una gota de agua destilada.
2. Con un asa de argolla, obtenga una gota de yogur y mézclela con la gota de agua
colocada en el portaobjetos.
3. Deje secar completamente la lámina. Pásela 3 veces por la llama del mechero. Tenga
cuidado de no sobre calentar la muestra.
4. Cubra la preparación con alcohol o metanol por unos segundos para eliminar la parte
grasa.
5. Escurra el alcohol y deje secar al aire. Luego cubra el extendido con azul de metileno
durante 2 minutos. Lave el exceso de colorante y deje secar.
6. Enfoque el microscopio con el objetivo de mayor aumento e identifique los estreptococos
y los lactobacilos. Anote sus observaciones.

Dibuje en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué tipo de
organismo pertenece e identifique lo siguiente.

a.    ¿Qué tipo de microorganismos se observan?
b.    ¿Cómo se denominan las bacterias según su forma?
c.    ¿Cómo se clasifican las bacterias según la manera de agruparse?
d.    ¿Qué color toman las bacterias de acuerdo a la coloración de gram?

OBSERVACION DE MOHOS

1. Prepare una solución de agua azucarada y agregue 20 gotas de esta a una tajada de
pan, déjela por espacio de media hora al aire libre.
2. Almacénela en una bolsa plástica y ciérrela. Guárdela en un lugar oscuro a 30°C y
obsérvela diariamente.




                                                                                         31
3. Cuando el pan esté enmohecido, coloque en un portaobjetos una pequeña gota de
solución de lactófenol.
4. Luego con un trozo de cinta adhesiva transparente de aproximadamente 2 cm toque la
superficie del pan enmohecido.
5. Pegue la cinta adhesiva sobre la gota del portaobjetos.
Elimine el colorante sobrante con un papel de filtro.
6. Observe al microscopio con objetivo de 40X e identifique el micelio y las hifas.

El procedimiento anterior también puede hacerlo con frutas u hortalizas dañadas que
presenten en su superficie mohos. Anote sus observaciones.

OBSERVACION DE LEVADURAS

1. Tome un poco de levadura de panadería y colóquela en un tubo de ensayo que
contenga agua con azúcar.
2. Incube a 37°C durante 15 minutos esto producirá el desarrollo de las levaduras.
3. Con una varilla de vidrio tome una gota del cultivo anterior y extiéndala en el
portaobjetos. Deje secar al aire
4. Adicione dos gotas de azul de metileno y deje actuar durante tres minutos
5. Coloque una laminilla y elimine el exceso de colorante con papel de filtro.
6. Observe al microscopio e identifique las levaduras por su forma ovalada.
Observe que algunas presentan gemaciones. Anote sus observaciones.




BACTERIAS DEL SUELO

1. Entierre horizontalmente un portaobjetos en la tierra de una maceta o de un jardín,
déjela allí durante 5 días.
2. Transcurrido este tiempo saque la lamina y fíjela pasándola tres veces por la llama del
mechero.
3. Limpie los bordes del portaobjetos y la parte que no va a teñir.
4. Luego coloree la lamina con safranina al 0.5% durante 1 minuto. Lave el exceso de
colorante y deje secar.
5. Observe al microscopio con el objetivo de mayor aumento y anote sus observaciones.

ALGAS Y PROTOZOOS

1. Tome una muestra de agua estancada con un cuentagotas y deposítela en el centro de
un portaobjetos. Coloque un cubreobjetos.
2. Observe la preparación al microscopio. Mueva lentamente la preparación, e identifique
las algas y los protozoos.
3. Añada unas gotas de rojo neutro por el borde del cubre para que penetre en la
preparación y puedas ver los microorganismos, que por su transparencia son difíciles de
observar.
4. Anote sus observaciones.

CONTENIDO DEL INFORME:

      portada




                                                                                        32
   objetivos
      diligenciamiento de los formatos para cada uno de los diagramas:

       FORMATO #1

bacterias      tinción    Enfoque        Enfoque    forma    Gran    Gram      Observaciones
                           40X           100X                (-)     (-)




       FORMATO #2

hongos          tinción        Enfoque    Enfoque     Estructuras   nombre     Observaciones
                                40X       100X




       FORMATO #3

levaduras       tinción        Enfoque      Enfoque     Reproducción        Observaciones
                                40X         100X




(Utilice lápices de colores)

      Análisis de resultados
       conclusiones
      bibliografía

OBSERVACION DE ESPORAS

A partir del cultivo en caja de petri marcado como           Bacillus,   prepare un extendido del
microorganismo.

1. Fije por calor y cubra todo el portaobjetos con una solución de verde de Malaquita.
2. Caliente hasta emisión de vapores y siga dicho calentamiento durante 3 minutos.
3. Lave con agua y cubra con solución de safranina. Deje actuar 30 segundos. Lave con
agua y deje secar la lámina.
4. Enfoque con el objetivo de inmersión y observe los bacilos y en su interior las esporas
ubicadas en un extremo. Anote sus observaciones

Laboratorio 6: Tejidos Vegetales

Laboratorio 6: Tejidos Vegetales



                                                                                               33
º Vídeo: tejidos vegetales

Descripción

Esta práctica permite a los estudiantes comprobar la diversidad y especuialización de los
tejidos vegetales , además de adquirir la habilidad para realizar cortes a mano alzada


OBJETIVOS:

      Comprobar la diversidad y especialización de las células vegetales y sus
       agrupaciones en tejidos.
      Adquirir habilidad en la elaboración de cortes a mano alzada y en coloración
      Agudizar el sentido de la observación de las estructuras vegetales, aspecto
       importante para comprender la morfología vegetal.

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR

Hoja de lirio
Hoja de olivo
Hoja de Elodea
Rama de hiedra
Bulbo de cebolla
Tomate
Papa
Pera
Raíces de cebolla
Lápiz de madera de cedro
Bisturí o cuchilla
Pinza
Láminas portaobjetos y Laminillas

MATERIAL SUMINISTRADO
Fluoroglucina
Acido clorhídrico
Verde brillante
Microscopio




                                                                                       34
PROCEDIMIENTO:

En esta práctica   observe a través del microscopio la morfología de los    distintos tejidos
vegetales.

TEJIDO PROTECTOR

1. Tome una hoja de lirio y con un bisturí haga una pequeña incisión en el limbo

2. Con ayuda de una pinza levante la capa externa para obtener una lámina fina.

3. Coloque la lámina fina obtenida   en el   portaobjetos y agregue una gota agua.

4. Enfoque al microscopio con objetivo de 10x       y   40x. Identifique   los ostiolos y los
cloroplastos. Anote sus observaciones.

Observe otro ejemplo de tejido epidérmico realizando un montaje con cebolla como se
explico en la práctica de la célula.

Observe al microscopio con el objetivo de menor aumento e identifique        la forma de las
células epiteliales. Con el objetivo 40X identifique los nucleolos.

Otro ejemplo de tejido protector puede observarlo en la hoja de olivo.

Raspe el envés de una hoja de olivo.

Coloque el raspado en una lámina y adicione una gota de agua.

Observe los pelos escamiformes con forma de sombrilla. Anote sus observaciones


TEJIDO PARENQUIMÁTICO DE ALMACENAMIENTO.

Realice un montaje con pulpa de tomate como se explicó en la práctica           de la célula.
Observe al microscopio y anote sus observaciones.

Realice un montaje con el raspado de papa como se indico en la práctica de la célula.
Observe al microscopio y anote sus observaciones.

Realice un montaje con la hoja de Elodea     como se indico en prácticas anteriores. Observe
al microscopio y anote sus observaciones.

TEJIDOS MECÁNICOS O DE SOSTÉN.

Raspe con un cuchillo o bisturí una parte pequeña de mesocarpio de pera y colóquela en
un portaobjetos.

Cubra la muestra con fluoroglucina durante 2 minutos.

Elimine el exceso y cubra con ácido clorhídrico.




                                                                                           35
Coloque una lámina portaobjetos y observe el microscopio con objetivo de 40x. Anote sus
observaciones.


TEJIDOS CONDUCTORES

Realice un corte longitudinal y fino de un lápiz de madera de cedro. Coloque las virutas en
un portaobjetos, adicione agua. Coloque una laminilla y observe al microscopio.

Realice  finos cortes perpendiculares del pecíolo de la hiedra, a la dirección del tallo;
mínimo cuatro cortes.

Deposítelos en una lámina y adicione verde brillante durante 5 minutos. Lave con agua
corriente.

Cubra la lámina con fluoroglucina durante 2 minutos.

Transcurridos   los 2 minutos elimine el exceso de colorante.

Cubra con ácido clorhídrico, coloque un cubreobjetos y observe al microscopio. Anote sus
observaciones.

TEJIDO MERISTEMATICO

Realice un montaje con la raíz de la cebolla como se indico en la práctica de mitosis.
Observe las células que se encuentran en mitosis.




                                                                                         36
Anexo

Orientaciones para la descarga de los videos

Apreciados estudiantes para que no tengan dificultades para ver los videos en línea, los he
subido a un sitio Web desde el cual los pueden descargar y guardar en su computador y
así los pueden observar sin necesidad de internet. Solo deben tener flash que ya todos los
computadores lo traen.

1. Para descargar el video de normas de seguridad en el laboratorio deben entran a esta
dirección http://www.4shared.com/file/N9heZ5gz/NORMASB.html

2. dar clic en descargar ahora (ver pantallazos)




3. Dar clic para descargar este archivo ahora




                                                                                         37
4. Guardar el archivo del video en su computador




2. A continuación las direcciones para descargar los demás videos:

Microscopio parte 1 http://www.4shared.com/file/QLGjS_x3/MICROSCOPIO1.html

Microscopio parte 2 http://www.4shared.com/file/a5V8jaL-/MICROSCOPIO2.html

La célula parte 1 y 2 http://www.4shared.com/file/cjFouFzX/CELULA3F.html




                                                                             38
Los microorganismos parte 1 y 2
http://www.4shared.com/file/srcfinxo/MICROORGANISMOS.html

Mitosis 1 parte http://www.4shared.com/file/5SjzDkSJ/MITOSIS_1.html

Mitosis 2 parte http://www.4shared.com/account/file/__h3_PdC/MITOSIS_2.html

Tejidos vegetales http://www.4shared.com/file/e_Gw7Jl7/TEJIDOSV.html

Quienes quieran descargar el simulador de microscopía y practicar en él pueden hacerlo en
esta dirección:
http://www.4shared.com/file/D4dxxdnY/Simulador_microscopa.html

Este archivo está comprimido con Winrar deben descargarlo, guardarlo en su PC y luego
descomprimirlo.

Si quieren descargar el curso completo con videos y animaciones pueden hacerlo desde
esta dirección
http://www.4shared.com/file/H7lcGfwu/sitiocursohipermedia.html

No deben borrar ningún archivo abren la carpeta sitiocursohipermedia     y dan clic en el
archivo index




                                                                                       39

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Guías laboratorio biología UNAD

  • 1. UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA-UNAD- ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS TECNOLOGÍA E INGENIERIA GUÍA DE LABORATORIO DE BIOLOGÍA 2010 Carmen Eugenia Piña López1 Yurby Salazar Núñez2, Bibiana Ávila García3 _________________________ 1 M. Sc. Ciencias Biológicas; M.Sc. Docencia Universitaria; Especialista en Nutrición Animal Sostenible; Especialista en Informática y Multimedia. 2 Bacterióloga Tutora José Acevedo y Gómez 3 Magistra en Educación. Especialista en planeación para la educación ambiental. Psicopedagoga Licenciada en Biología y química
  • 2. GUIAS PARA PRÁCTICAS DE BIOLOGÍA GENERAL INTRODUCCION Las prácticas de laboratorio de biología permite que estudiante confronte los conocimientos teóricos básicos del curso, adquiera la habilidad y destreza en el manejo de equipos e integre en su desarrollo aspectos de bioseguridad y ética. Las guías para las prácticas de biología, son un importante dispositivo de ayuda pedagógica y didáctica en el proceso de formación profesional que inician los estudiantes de los programas de pregrado Estas guías están descritas de manera clara y sencilla con el fin de que la ejecución práctica pueda hacerse completamente. Antes de realizar la parte práctica se recomienda ver cada uno de los videos presentados en el curso de Biología en el link Multimedia, http://www.unad.edu.co/curso_biologia/multimedia.htm para hacerse una idea del material a utilizar y procedimiento a seguir lo cual le facilitará la comprensión y el desarrollo de la práctica. Quienes deseen descargar los videos en su computador pueden hacerlo ver orientaciones al final de la guía. Orientaciones para las actividades de Laboratorio El componente práctico se desarrollará mediante laboratorios previamente apoyados en vídeos didácticos introductorios y se complementará con observaciones en el laboratorio. Los laboratorios se realizan de forma presencial en cada uno de los CEAD donde estén matriculados, con un tutor asignado por el director del Cead para tal fin. La fecha de realización la determinan en cada CEAD y saldrá publicada en el Foro Noticias del aula y en cada CEAD, motivo por lo cual hay que estar pendiente " leer diariamente" las noticias del foro, para que puedan hacer su inscripción. La realización de las prácticas de laboratorio es obligatoria para aprobar el curso. Los informes de laboratorio de los estudiantes virtuales deben ser entregados al tutor de metodología tradicional con quien realicen el laboratorio. El Informe incluye las respuestas a las preguntas sobre la observación de los videos de preparación previa, el pre-informe y el desarrollo de las guías. El tutor tradicional con quien realizan el laboratorio debe calificar su proceso y su informe, y envía la nota al tutor virtual para sumarla con las notas obtenidas en las demás actividades y de esta manera se pueda dar la nota definitiva de su curso. Las actividades en campus tienen un valor de 60% sobre la calificación del curso. El 60% equivale a 300 puntos, de los cuales 90 puntos corresponden a la nota del laboratorio enviada por el tutor tradicional, o sea un 30% de este componente práctico. La 1
  • 3. equivalencia es la siguiente por ejemplo para una nota de 4,5 enviada por el tutor tradicional: Calificación de los laboratorios enviada por el Valor en tutor tradicional Puntos 5 90 4,5 X X= (90 x 4,5) / 5= 81 puntos El costo de los laboratorios está incluido en la matrícula A continuación encontrarán una tabla con los nombres de las prácticas su duración y porcentaje. Sesiones de Práctica Duración Porcentaje sobre el 100% curso 1. Normas de Seguridad en el laboratorio y 4 horas 6 Microscopía 2. La Célula y Tejidos Vegetales 4 horas 6 3. Mitosis y Meiosis 1 hora 4 4. Los Microorganismos 3 horas 6 Total 12 22 FORMATO PARA OBSERVACIÓN DE VIDEOS DE LABORATORIO. Objetivos: Identificar los temas, materiales, habilidades que podemos desarrollar con la observación de los videos y prácticas de laboratorio. Instrucciones: Esta actividad no reemplaza los laboratorios nos prepara para la realización de los mismos. Observe detenidamente cada uno de los videos de laboratorio relacionados en el material didáctico del curso de Biología. Responda las preguntas que se realizan para cada video de las experiencias de laboratorio. Con los compañeros de su grupo colaborativo compare las respuestas. 2
  • 4. Consolide en un solo documento los datos y preséntelos al tutor virtual Recursos: Videos de las experiencias: 1. Vídeo: Normas generales de uso del laboratorio http://www.unad.edu.co/curso_biologia/videoseguridad.htm 2. Video:_El microscopio parte 1 ttp://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_microscopio1.htm Video: El microscopio parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_microscopio2.htm 3. Video: Célula parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula-1.htm Video: Célula parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula_2.htm 4. Video: mitosis y meiosis parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis1.htm Video: mitosis y meiosis parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis2.htm 5. Video: biodiversidad microbiana parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad1.htm Video: biodiversidad microbiana parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad_2.htm 6. Video: tejidos vegetales http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_Tej_vegetales.htm Preguntas: RESPONDA PARA CADA VIDEO. 1. ¿Cuál es el objetivo de esta práctica? 2. ¿Qué materiales necesita? ¿Los conoce todos? ¿Cuáles desconoce? 3. ¿Qué temas del módulo puede relacionar con esta experiencia? Justifique su respuesta. 4. ¿Qué habilidades cree que se pueden desarrollar al realizar ésta práctica de laboratorio? 5. ¿Qué utilidad o aplicaciones prácticas puede derivar del conocimiento que se desarrolla con estos laboratorios? 6. Después de observar el video ¿Cuál es la conclusión a la que llega? Formato elaborado por: Esp. Bibiana Ávila García. Punto de contacto: 3004986704 – bibi.avila@gmail.com Tutora CEAD Barranquilla. Nota: No olviden colocar en el informe a entregar al tutor tradicional de laboratorio el número del grupo colaborativo, el nombre de su tutor virtual, además de sus datos nombre apellidos y código. Recomendaciones Generales Implementos que deben llevar al laboratorio Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Paños de cocina Jabón 3
  • 5. Láminas y laminilla Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes Antes de iniciar las prácticas usted debe haber leído el capítulo correspondiente en el curso de biología, observado los videos de preparación previa y resuelto las preguntas sobre la observación de videos y lo que se solicite en cada práctica Forma de Evaluación La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades 1. Participación en el foro colaborativo con la presentación del pre-informe sobre los laboratorios, el cual incluye las respuestas a las preguntas sobre observación de videos y las respuestas a los cuestionarios de cada práctica. Los puntos del pre-informe son:  Titulo  Objetivos  Resumen de la información teórica  Esquema o diagrama de flujo en orden riguroso por cada observación  Respuesta a cuestionario que encuentre en la guía de práctica 2. Evaluaciones parciales presenciales al iniciar algunas prácticas 3. Presentación de informes de prácticas realizadas en el laboratorio, el cual incluye también el pre-informe 4. Resolución de cuestionarios para medir el rendimiento después de las prácticas Aspectos mínimos que debe llevar un informe final (que se entregará al tutor tradicional para su calificación) 1. Titulo 2. Objetivos 3. Resumen de la información teórica 4. Esquema de pasos para las observaciones en el laboratorio o diagrama de flujo en orden riguroso por cada observación 5. Respuesta a cuestionario de cada práctica 5. Descripción detallada de las observaciones 6. Conclusiones 7. Referencias bibliográficas A continuación encontrará una tabla con la descripción de la actividad a realizar y los productos a entregar Laboratorio 1 Normas de seguridad en el laboratorio. Vídeo: Normas generales de uso del laboratorio Objetivo 4
  • 6. Conocer y cumplir las principales normas de seguridad e higiene que se deben seguir en el laboratorio, con el fin de evitar posibles riesgos, tanto para las personas como para el medio ambiente. Introducción La bioseguridad, es la aplicación del conocimiento, de las normas y técnicas en el desarrollo de las prácticas que se realizan en el laboratorio para prevenir la exposición del personal y del medio ambiente a cualquier riesgo. Los riesgos pueden estar relacionados con las propias instalaciones, con las muestras de origen biológico, con los procedimientos y manipulaciones que se realicen. Marco Teórico: Principales Normas Las principales normas a tener en cuenta para el desarrollo de prácticas en el laboratorio de Biología son las siguientes:  en la zona de trabajo del laboratorio no se debe consumir alimentos ni bebidas para evitar riesgos de contaminación.  está prohibido fumar en el área del laboratorio o sus alrededores. Recordemos que se trabaja con gas y que algunos químicos generan vapores inflamables.  no se deben llevar a la boca lápices, etiquetas o cualquier otro material utilizado en el laboratorio.  se debe mantener el laboratorio limpio y aseado. Por consiguiente al terminar la práctica se debe descontaminar la superficie de trabajo.  las manos se deben lavar después de manipular material infeccioso, así como al abandonar el laboratorio.  todo estudiante debe hacer uso de la bata blanca, esto le protegerá la ropa del contacto con reactivos y colorantes empleados en el laboratorio.  sólo se debe permitir el paso a la zona de trabajo del laboratorio a las personas autorizadas. Durante el trabajo se mantendrán cerradas las puertas del laboratorio.  no se debe pipetear con la boca.  debe utilizarse siempre un dispositivo de pipeteo  todas las pipetas deben tener tapones de algodón para reducir la contaminación de los dispositivos de pipeteo.  todo el personal debe poner especial cuidado en evitar el contacto de la piel con materiales potencialmente infecciosos. Con este fin deben usarse guantes. Los guantes deben ser desechados antes de salir del área de trabajo. Jamás se debe salir de la misma con los guantes puestos, ni con ellos se debe coger el teléfono.  marque y rotule adecuadamente las láminas. Deben llevar claramente escrito en un lugar visible, el nombre o identificación del grupo de trabajo, practica realizada y fecha.  una vez concluida la práctica, proceda a organizar el sitio de trabajo, desinfectando el mesón con toallas de papel humedecidas con hipoclorito de sodio o alcohol y dejando tanto el material como el equipo utilizado limpio y en el lugar adecuado.  es importante conocer los agentes, sustancias y productos peligrosos que existen en el laboratorio. Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para asegurarse de que es el que se necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.  es necesario conocer el manejo de cada uno de los equipos existentes en el laboratorio. Todo el material, especialmente los aparatos delicados, como lupas y microscopios, deben manejarse con cuidado evitando los golpes o el forzar sus 5
  • 7. mecanismos. Cualquier material de vidrio no debe enfriarse bruscamente justo después de haberlos calentado con el fin de evitar roturas.  en neveras que no posean un sistema de protección antideflagración no deben almacenarse reactivos que contengan compuestos volátiles inflamables como éter etílico.  los productos inflamables como gases, alcohol, éter, entre otros deben mantenerse alejados de la llama del mechero. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos productos, se hará al baño María, nunca directamente a la llama. Si se manejan mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al apagar la llama.  se debe lavar muy bien la cristalería que se utilice. Preste atención y cuidado al manipular cristalería mojada.  en el laboratorio habrá un recipiente plástico, para cristalería rota y para plásticos que hayan estado en contacto con cultivos de células o virus. Por favor, deseche cada cosa en el envase apropiado.  mantenga despejadas las áreas. Trate de traer la menor cantidad posible de pertenencias al laboratorio. Coloque sus pertenencias en un área designada o donde no estorben. Cuestionario para el pre-informe 1.1 ¿Que es bioseguridad? 1.2 ¿Cuáles serían para usted las normas básicas de bioseguridad en el laboratorio de biología? 1.3 ¿Cómo puede usted evitar en el laboratorio daños a su salud? 1.4 Conclusiones Procedimiento Para el desarrollo de esta práctica el estudiante debe observar el video normas de seguridad en el laboratorio y contestar las preguntas presentadas en el formato de observación del video LABORATORIO 2: MICROSCOPÍA Autoría: Carmen Eugenia Piña L video:_El microscopio parte 1 video:_EL microscopio parte 2 OBJETIVOS:  Señalar los componentes mecánicos y ópticos que constituyen el microscopio.  Realizar montajes húmedos  Comprobar las propiedades que posee el microscopio.  Realizar correctamente el manejo del microscopio óptico  Calcular el diámetro del campo de visión  Comprobar los principios en que se basa la microscopía óptica.  Desarrollar en trabajo colaborativo el informe de laboratorio 6
  • 8. Marco Teórico Tipos de Microscopio El Microscopio óptico simple Constituido por una lente biconvexa única o lupa que hace converger los rayos luminosos que la atraviesan en un punto denominado foco y a una distancia focal muy corta. El Microscopio óptico Compuesto El microscopio se define como un instrumento óptico formado por un sistema de lentes: objetivos y oculares que amplían los objetos extremadamente pequeños para posibilitar su observación. La lente del objetivo proporciona una imagen intermedia ampliada del objeto, es decir, funciona como una lente simple, y la lente del ocular que recoge la imagen dad por el objetivo y la aumenta. El Microscopio electrónico Este microscopio en lugar de una fuente de luz, utiliza un haz de electrones que se desplazan en el vacío y en línea recta. Con el microscopio electrónico es posible observar objetos muy pequeños como los virus que no pueden ser resueltos con el microscopio óptico. En el microscopio óptico en lugar de lentes se emplean campos magnéticos que enfocan los haces de electrones. El Microscopio óptico Compuesto: componentes A continuación se describen las partes que lo conforman: Los objetivos: están localizados en la parte inferior del tubo insertados en una pieza metálica, denominada revólver o portaobjetivos, que permite cambiarlos fácilmente. Estos generan una imagen real, invertida y aumentada, esta imagen intermedia es captada 7
  • 9. y sufre una nueva ampliación por el ocular. . Los objetivos más frecuentes son los de 4X, 10X, 40X y 100X aumentos. Este último de 100x se llama de inmersión ya que para su utilización se necesita aplicar aceite de cedro sobre la preparación. Y se utiliza para observar láminas coloreadas completamente secas. El poder de aumento de cada objetivo se indica en el número grabado en la manga del lente. Generalmente el objetivo de 4X se encuentra marcado por un anillo rojo, el de 10X por un anillo de color amarillo, el de 40=x con un anillo de color azul y el de 100X con un anillo de color blanco La abertura numérica se encuentra (A.N.) se encuentra grabada en la manga del objetivo, junto a la indicación del aumento. 0,30 En el objetivo de 10X 0,65 En el objetivo de 40X 1,30 En el objetivo de 100X A medida que aumenta la A.N. disminuyen las dimensiones de la lente frontal, montada en la base del objetivo. La lente del objetivo de 100x tiene el tamaño de una cabeza de alfiler es mayor el poder de resolución. Además a medida que aumenta A.N. es mayor el poder de resolución. Cuanto mayor sea el poder de resolución del objetivo, será más clara la imagen y aumentará la capacidad de poner de manifiesto detalles adyacentes muy cercanos, separándolos y aclarándolos. El poder de resolución máximo de un buen microscopio es aproximadamente 0,25 nanómetros, el poder de resolución del ojo humano es de 0,25 milímetros. Los oculares se denominan así porque están muy cercanos al ojo. Su función es la de captar y ampliar la imagen formada en los objetivos. El poder de aumento del ocular se encuentra marcado en el ocular. Un ocular por 4 aumenta 4 veces la imagen que produce el objetivo. Un ocular por 6 la aumenta 6 veces. Un ocular por 10 la aumenta 10 veces Nunca se deben tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, se deben limpiar muy suavemente con un papel de óptica El tubo óptico: es una cámara oscura unida mediante una cremallera. Tiene el revolver con los objetivos en su parte inferior y los oculares en el extremo superior. El Brazo: es una columna perpendicular al pie. Puede ser arqueado o vertical y une al pie con el tubo. 8
  • 10. Platina Es una plataforma horizontal con un orificio central, sobre el que se coloca la preparación, que permite el paso de los rayos procedentes de la fuente de iluminación situada por debajo. Dos pinzas sirven para retener el portaobjetos sobre la platina y un carro con un sistema de cremallera guiado por dos tornillos de desplazamiento que permite mover la preparación de delante hacia atrás o de izquierda a derecha y viceversa. Está dotado de una escala graduada para medir de forma precisa las observaciones. El condensador: es un sistema de lentes convergentes situadas bajo la platina, su función es la de concentrar la luz generada por la fuente de iluminación hacia la preparación. Diafragma-iris Es una cortinilla que regula la cantidad de luz que entra en el condensador, eliminando los rayos demasiado desviados. Se acciona mediante una perilla. Esta situado debajo de la platina, inmediatamente debajo del condensador. La disminución del diafragma permite visualizar partes de protozoos u hongos se utiliza en las preparaciones frescas 9
  • 11. Tornillo Macrométrico: Se encuentra en la parte inferior del microscopio. Sirve para alejar o acercar el tubo y la platina moviéndola de arriba hacia abajo y viceversa. Permite un enfoque aproximado o grueso de la muestra Tornillo micrométrico: Generalmente se encuentra incorporado al tornillo macrométrico. Sirve para dar claridad a la imagen al lograr un ajuste fino y preciso, mediante movimiento de la platina hacia arriba y hacia abajo de forma lenta. Ambos tornillos llevan incorporado un mando de bloqueo que fija la platina a una determinada altura. La fuente de iluminación: se trata de una lámpara halógena de intensidad graduable. Está situada en el pie del microscopio. Se enciende y se apaga con un interruptor y en su superficie externa puede tener una especie de anillo para colocar filtros que facilitan la visualización. Por último definimos el pie o base: sirve como base del microscopio y tiene un peso suficiente para dar estabilidad al aparato. En él se integra la fuente luminosa. Poderes o capacidades del Poder de aumento: Permite magnificar la imagen. microscopio Corresponde al aumento (A) dado por la relación: Tamaño de la imagen / tamaño del objeto. La ampliación es igual al producto del aumento del lente ocular por el del objetivo. Cada objetivo y cada ocular tienen grabado el número de veces que aumentan la imagen. Si la imagen del objeto, se hace aumentar 40 veces mediante el objetivo y enseguida 10 mediante el ocular, su aumento total será 10X40= 400 ¿Cómo se calcula el aumento de una muestra? Se multiplica el aumento que señala el ocular por el aumento del objetivo dando como resultado el aumento total de la muestra o número de veces en que el objeto se encuentra ampliado con respecto a su tamaño original. Aumento total = aumento del ocular X aumento del objetivo 10
  • 12. Poder de definición Es la capacidad del microscopio para formar imágenes nítidas y con contornos definidos Poder de penetración o profundidad Permite visualizar los diferentes planos de una preparación y está dado por el ajuste de precisión que se logra con el tornillo micrométrico. Poder de resolución es la capacidad de presentar dos puntos que se encuentran muy cercanos entre sí como separados, lo cual permite observar detalles de los objetos que con el ojo humano no se podrían ver. El ojo humano no puede ver separados dos puntos cuando su distancia es menor a una décima de milímetro. Con el Microscopio óptico, el poder separador máximo es de 0,2 décimas de micra. Mejora la visión unas 500 veces con relación a la del ojo humano En la imagen se observan espacios En la imagen se observan varias fibras de blancos entre la tinta negra que a simple hilo que a simple vista no serían vistos vista no serían vistos 11
  • 13. El poder de resolución depende de la longitud de onda ( λ ) y de la apertura numérica del objetivo (A.N.) El Poder de resolución esta dado por la formula: Poder de resolución= λ 2x A.N. A.N: relaciona el ángulo de apertura de los rayos de luz, que provienen de la muestra, con el índice de refracción. Principios generales de microscopía Principios ópticos Una lente sencilla (biconvexa) posee dos focos, uno a cada lado de la lente (F y F´). Cuando los rayos luminosos pasan a través de la lente se concentran en el foco. La distancia focal es la distancia entre el centro de la lente y el punto en donde convergen los rayos. La distancia focal de una lente depende del índice de refracción del material del cual está hecha, y del medio que envuelve la lente. Por eso, es diferente la distancia focal de una lente en el agua, que esta misma en el aire. Como también es diferente la distancia focal de una lente de vidrio en comparación con una construida en plástico. http://micro.magnet.fsu.edu/primer/java/lenses/simplethinlens/index.html Cuanto más pequeña es la distancia focal de una lente tanto mayor es su aumento. Si el objeto se coloca a distancia mayor del foco, se obtiene una imagen real invertida, mientras que si el objeto se localiza a una distancia menor del foco la imagen será virtual. A medida 12
  • 14. que se aleja el objeto del foco, la imagen se percibe más pequeña. La distancia de trabajo focal de un objetivo, es el espacio que existe entre la superficie de la lente del objetivo y la laminilla, una vez se encuentre enfocada la preparación. A mayor aumento del objetivo la distancia de trabajo disminuye. Como determinar la posición de los objetos observados Los objetos que se observan en el campo microscópico se pueden localizar en relación con las manecillas del reloj. Los objetos que aparecen en la parte inferior del fondo del campo microscópico se encuentran realmente en la parte superior. Los objetos en el lado izquierdo del campo microscópico se encuentran realmente al lado derecho. Desplazamiento del objeto Si se mueve el portaobjetos hacia la derecha, el objeto examinado se desplazará hacia la izquierda. Si se mueve el portaobjetos hacia usted, el objeto examinado se alejará. Formación de la imagen real invertida http://www.edumedia-sciences.com/a301_l3-microscope.html Las imágenes se observan invertidas por las lentes. 13
  • 15. Refracción de la luz La distancia focal de una lente depende del índice de refracción del material del cual esta hecha y del medio que envuelve la lente. Cuando los rayos de luz se mueven en un medio homogéneo como el aire, se propagan en línea recta, pero cuando caen sobre la superficie de un medio de diferente densidad, a la del medio en el cual se venía propagando, cambian de dirección y de velocidad a estos cambios se les conoce como refracción de la luz. Los rayos de luz procedentes de los objetos sumergidos en el agua se desvían al atravesar dos medios de diferente densidad (agua-aire), originando este efecto de refracción. Por ejemplo si introducimos un lápiz en un vaso con agua, el lápiz se verá cortado al pasar del agua al aire. En la práctica de microscopía encontramos diferentes medios: aire, agua aceite de inmersión y vidrio, cuyos índices de refracción son 1.0, 1.33, 1.51, .1.54 respectivamente. Al observar una muestra a través del microscopio, los rayos de luz tienen que atravesar estos medios y son refractados cambiando su dirección. 14
  • 16. Al aplicar el aceite inmersión se entre el preparado y la lente, aceite de inmersión, que tiene un índice de refracción igual al de la lente y evita la refracción de los rayos luminosos. Campo de Visión El campo de visión de un microscopio es la zona circular que se observa al mirar la preparación bajo un determinado aumento. Para medir el campo de visión de un microscopio, se debe usar una unidad llamada micra. Una micra equivale a 0,0001 mm; en otras palabras, hay 1000 micras en un milímetro. El diámetro de este campo es su medida. Para calcular el diámetro del campo de visión para un determinado aumento hay que seguir los siguientes pasos: a) Recortar un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado. b) Ponerlo sobre la abertura central del portaobjetos 15
  • 17. c) Observando por el ocular y con el objetivo de 4X, mover la muestra hasta lograr que la línea 0 mm quede en el borde izquierdo del campo visual d) Enfocar con el objetivo de menor aumento 4X hasta que se vea con claridad. Enfocar la preparación quiere decir situarla a la distancia del objetivo que permite su observación nítida. Esta distancia s e conoce como distancia de trabajo y es tanto menor cuanto mayor es el poder de aumento del objetivo. e) Medir el campo visual haciendo coincidir una de las líneas del papel milimetrado con el borde del campo de visión. f) Contar el número de milímetros que se ven (recuerde que la distancia entre dos líneas es un milímetro) y estimar aproximadamente la fracción sobrante, si la hay. El resultado será el diámetro del campo visual para ese aumento (objetivo x ocular). g) Si queremos calcular el diámetro del campo de visión para aumentos mayores, hay que tener en cuenta que cuanto mayor sea el aumento, el campo será menor, es decir, se verá menos de la muestra que estemos observando. De forma que, si el aumento es el doble, el campo será la mitad, si el aumento es el triple, el diámetro será la tercera parte, etc. (inversamente proporcionales). Por tanto, bastará con realizar un sencillo cálculo matemático para saber el nuevo diámetro. Así se puede calcular los diámetros de objetos microscópicos, células, amibas, vistos. Medida en mm (escala del Tamaño de las marcas Equivalencia en µm portaobjetos) (divisiones) 1mm 1000 µm grandes 0.1 mm 100 µm medianas 0.01mm 10 µm más pequeñas Recuerde que aunque la escala está marcando mm usted lo leerá en micras. Preparaciones Las preparaciones pueden ser de varios tipos: a) Frescas: Son montajes generalmente húmedos. La muestra se observa sin modificar, diluida o concentrada. Permite observar la movilidad de los microorganismos vivos. Se utiliza también para observar procesos como la mitosis, meiosis, la formación d esporas. Para realizar un montaje húmedo se debe verter una gota de agua o del líquido que contiene los microorganismos en el centro de una lámina portaobjetos y cubrirlo con una laminilla cubreobjetos. Para evitar la evaporación se puede sellar el espacio que hay entre el portaobjetos y el cubreobjetos con vaselina o alguna sustancia similar. Frescas ligeramente modificadas: Las muestras se pueden diluir con agua o con agua con sal, esta última evita que la presión osmótica del medio no sea demasiado baja. Se puede aplicar un colorante o reactivo para observar mejor las estructuras. b) Fijadas y teñidas: Se coloca una suspensión homogénea de microorganismos en una gota de agua sobre el portaobjetos y 16
  • 18. se fija (mediante calor o agentes químicos) y después se tiñen mediante diferentes técnicas. Estas preparaciones se observan sin cubreobjetos y, habitualmente, con objetivos de inmersión. Cuestionario a resolver para el pre-informe 2.1 En la siguiente representación gráfica de un microscopio, reconozca y ubique cada una de las siguientes partes y su función Tubo Oculares Brazo Objetivos de 4x, 10x, 40x y 100x Platina Condensador Fuente de iluminación Tornillo macrométrico y micrométrico Pie 2.2 Clasifique en el cuadro las partes mecánicas y ópticas del microscopio. Partes mecánicas Partes ópticas 2.3 Qué es un montaje húmedo. 2.4 Defina los tipos de montaje que se pueden hacer en el laboratorio. 2.5 Describa los pasos para la elaboración de un montaje húmedo. 2.6 ¿Qué debe hacerse para lograr una iluminación adecuada? 2.7 ¿Cómo se enfoca el microscopio al iniciar la observación? 2.8 ¿Al mover el portaobjetos de derecha a izquierda a qué lado se mueve la imagen? 2.9 ¿Con qué objetivo se logra un campo de visión más grande? 2.10 ¿Con qué objetivo se observan mejor los detalles de una imagen? 2.11 ¿Con el objetivo de mayor aumento se necesita menor o mayor iluminación de la que se necesita con el de menor aumento? 2.12 ¿Qué función cumple el aceite de inmersión? ¿Con qué objetivo se utiliza? 17
  • 19. 2.13 ¿Cuál es el poder de aumento cuando se estén utilizando cada uno de los objetivos de 4X, 10X, 40X y el ocular de 10X? 2.14 ¿Cuáles son las propiedades del microscopio? 2.15 Defina los siguientes poderes o capacidades del microscopio a. Poder de Aumento b. Poder de definición c. Poder de Resolución d. Poder de Penetración de Foco o Campo PROCEDIMIENTO MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR AL LABORATORIO Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Paños de cocina Jabón Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes Resueltas las preguntas sobre la observación de videos y las que se solicite en cada práctica Agua estancada o de solución de tierra de infusorios Papel milimetrado Hilos de colores Tela de cuadros 2 centímetros Recorte de periódico con la letra asimétrica: Pude ser la letra e o la letra a Láminas portaobjetos, Laminillas (por grupo) papel absorbente MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO Lamina con extendido coloreada Microscopio Aceite de inmersión Papel de Arroz o de óptica Alcohol isopropílico Realización de Montaje húmedo Tome con una pipeta agua estancada o de solución de tierra de infusorios Coloque la gota de agua estancada o de solución de tierra de infusorios sobre una lámina porta-objeto Tome una laminilla cubreobjetos, en posición oblicua, (45 grados) y apoyando una arista sobre la lámina al lado de la gota, déjela caer suavemente. Manejo del microscopio Encienda el microscopio Coloque el objetivo de menor aumento 4X Baje la platina completamente girando el tornillo macrométrico. 18
  • 20. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior Coloque la lámina con la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas. Procure que la preparación quede centrada, girando el tornillo para desplazamiento del carro móvil Gire el tornillo macrométrico en sentido contrario a las agujas del reloj para subir la platina hasta el tope. Debe hacerlo mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el objetivo en la preparación. Cierre o abra el diafragma hasta una posición intermedia, accionando su perilla en sentido contrario a las agujas del reloj para que la luz no sea ni muy brillante ni demasiado tenue. Inicie la observación con el objetivo de 4X. Mirando a través de los oculares, separe lentamente el objetivo de la preparación con el tornillo macrométrico en sentido de las agujas del reloj. Hasta lograr observar la imagen Cuando se observe algo nítida la muestra, gire el tornillo micrométrico hasta obtener un enfoque fino Gire el revolver Coloque el objetivo de 10X Visualice con el objetivo de 10X y detalle las estructuras Gire el revólver y visualice con el objetivo de 40X enfoque con el tornillo micrométrico y detalle las estructuras Detalle como el campo se reduce y el alga y el protozoo se observan mejor. Observación con el objetivo de inmersión 100X Se utiliza para la observación de muestras fijadas, no para muestras frescas. Coloque el objetivo de inmersión de manera que el orificio de la platina quede entre el objetivo de 100X y el de 40X Suba totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona que se va a visualizar y donde habrá que aplicar el aceite Coloque una gota de aceite de inmersión sobre la preparación en el círculo de luz Coloque una lámina coloreada sobre la platina Ubique el objetivo el objetivo de 100x Suba la platina lentamente hasta que la lente toque la gota de aceite Observe la imagen con aumento de 100X En esta preparación se muestran eosinófilos un tipo de células sanguíneas coloreados con colorante de Wright Limpie el objetivo de inmersión con un papel especial para óptica y alcohol isopropílico Deje el objetivo de menor aumento en posición de trabajo. En la siguiente dirección encuentra un excelente ejercicio en línea sobre las partes del microscopio y su función. http://personales.ya.com/geopal/g-b_1bach/ejercicios/act10tema6.htm Preguntas adicionales para el informe final 2.16 Observe y escriba cuál es el valor de los oculares_________________ 2.17 Observe y escriba cual es el valor de cada uno de los objetivos_____,____,____,____ 19
  • 21. 2.18 Calcule el aumento logrado para cada objeto observado en su práctica de laboratorio (Al multiplicar el valor del ocular por el valor del objetivo se obtiene el aumento del tamaño del objeto que observamos). 3. Uso del microscopio. Organización del proceso paso a paso Tome una gota de la Colóquela sobre una Retire el exceso muestra de agua lámina portaobjetos, y de agua por los estancada cúbrala con una bordes, usando laminilla. papel absorbente. Observe el Dibuje sus montaje observaciones realizado al anotando el aumento microscopio en utilizado 4x, 10x y 40x. 3.1. De la muestra de agua estancada tome una gota y colóquela en una lámina portaobjetos, cubra con una laminilla. 3.2 Retire el exceso de agua por los bordes usando papel absorbente. 3.3 Observe el montaje realizado al microscopio con aumentos de 4x, 10x y 40x. En el informe debe incluirse el siguiente cuadro que debe registrar las observaciones realizadas. OBJETO AUMENTO DIBUJO ANÁLISIS Y OBSERVADO UTILIZADO CONCLUSIONES Agua 4X estancada 10X 40X 3.4 ¿Qué organismos pueden observarse en la gota de agua estancada? 3.5 ¿Son todos de igual tamaño y forma? 3.6 ¿Se observan organismos móviles o estáticos? 4. Comprobación de los poderes o capacidades del microscopio óptico 4.1 Realice un montaje húmedo con la letra asimétrica y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos anteriores. 4.2 Calcule el aumento del tamaño del objeto observado para cada objetivo del microscopio con el cual le correspondió trabajar. 4.3 ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento al observar la letra? 5. Realice un montaje húmedo con un centímetro cuadrado de papel milimetrado y obsérvelo al microscopio 5.1 Calcule el diámetro del campo de visión para un aumento de 4x en un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado. 20
  • 22. Para calcular el diámetro del campo de visión para un determinado aumento hay que seguir los siguientes pasos: a) Recortar un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado. b) Ponerlo sobre la abertura central del portaobjetos: c) Observando por el ocular y con el objetivo de 4X, mover la muestra hasta lograr que la línea 0 mm quede en el borde izquierdo del campo visual como se observa en la gráfica d) Enfocar con el objetivo de menor aumento 4X hasta que se vea con claridad. Enfocar la preparación quiere decir situarla a la distancia del objetivo que permite su observación nítida. Esta distancia s e conoce como distancia de trabajo y es tanto menor cuanto mayor es el poder de aumento del objetivo e) Medir el campo visual haciendo coincidir una de las líneas del papel milimetrado con el borde del campo de visión. f) Contar el número de milímetros que se ven (recuerde que la distancia entre dos líneas es un milímetro) y estimar aproximadamente la fracción sobrante, si la hay. El resultado será el diámetro del campo visual para ese aumento (objetivo x ocular). g) Si queremos calcular el diámetro del campo de visión para aumentos mayores, hay que tener en cuenta que cuanto mayor sea el aumento, el campo será menor, es decir, se verá menos de la muestra que estemos observando. De forma que, si el aumento es el doble, el campo será la mitad, si el aumento es el triple, el diámetro será la tercera parte, etc. (inversamente proporcionales). Por tanto, bastará con realizar un sencillo cálculo matemático para saber el nuevo diámetro. Así se puede calcular los diámetros de objetos microscópicos, células, amibas, vistos. 5.2 Calcule el diámetro del campo de visión para aumentos de 10X, 40X del mismo cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado. 5.3 Compare la anchura del campo visual con cada uno de los tres objetivos 5.4 ¿Con cuál objetivo el campo de visión es mayor con el de mayor o menor aumento? 6. Realice un montaje húmedo con tres hebras de hilo superpuestas y obsérvelas al microscopio 6.1 Para las muestras de la letra, la hebra de hilo observadas determine: 21
  • 23. a. ¿Cómo se manifiesta el poder de resolución? b. ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento? c. ¿Cómo se manifiesta el poder de definición? d. ¿Cómo se manifiesta el poder de penetración o profundidad? 6.2 ¿Cuál es la utilidad del microscopio? 6.3 ¿En qué montaje se observó mejor el poder de penetración? 7. Comprobación de los principios ópticos del microscopio Después de observar la letra asimétrica, Conteste las siguientes preguntas: 7.1 ¿Al observar la letra asimétrica: ¿Se ve invertida, o en la misma posición en que estaría si se viera a simple vista? ¿Parece como si se viera por un espejo? 7.2 ¿Al mover la preparación hacia la derecha. ¿Hacia dónde se mueve la imagen? 7.3 ¿Al alejara el portaobjeto o la muestra de usted hacia donde se nueve la imagen? 7.4 ¿Si la distancia focal es mayor el tamaño del objeto es mayor o menor? 8. Tome la lámina con el extendido coloreado y obsérvela en el microscopio enfocando primero con el objetivo de 10x, luego ponga una gota de aceite de inmersión sobre el extendido y ubique el objetivo de 100x. Describa los detalles observados con cada objetivo. Al finalizar el trabajo deje el microscopio en su correcta posición, limpie los objetivos, colóquele la funda y guarde en su puesto. Al terminar de desarrollar las prácticas usted debe ingresar al foro colaborativo del curso y participar con sus 4 compañeros de grupo colaborativo en la elaboración del informe de laboratorio respondiendo a las anteriores preguntas compare las respuestas de los 5 integrantes y consolídelas en un solo documento que enviarán al foro para la retroalimentación y calificación por parte de su tutor. Laboratorio 3: La Célula vídeo Célula parte 1 Vídeo Célula parte 2 OBJETIVOS:  Describir las diferentes formas y tamaños de las células  Identificar las diferentes estructuras y organelos que posee una célula, con base en la capacidad de ampliación del microscopio óptico.  Describir las diferentes formas y tamaños de una célula  Señalar las diferencias fundamentales entre una célula animal y una vegetal  Reconocer que una célula puede constituir un organismo. Marco Teórico: Módulo de Biología, Unidad 1, lecciones 7 a 10 MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR: 22
  • 24. Bulbo de cebolla Allium cepa Papa Tomate Hojas de Elodea Laminas portaobjetos y Laminillas Cuchilla o bisturí Pinza Tijeras pequeñas hisopos MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO: 1 caja de petri Aguja o asa recta Algodón Alcohol Lancetas Lugol Solución salina Acetocarmin Azul de metileno Safranina Colorante de Wright Microscopio Cuestionario a resolver para el pre-informe Establezca claramente y de forma gráfica las diferencias entre célula procariota y eucariota, entre una célula animal y vegetal. (la representación gráfica puede realizarla de manera creativa) Defina el concepto de tejido, y explique la función del tejido Epidérmico, Parenquimático, Epitelial, Sanguíneo Para cada una de las observaciones realice un esquema o diagrama de flujo en orden riguroso PROCEDIMIENTO Observación de tejido epidermal de cebolla Elabore un montaje de tejido epidermal de bulbo de cebolla y obsérvelo al microscopio. Responda como mínimo las preguntas consignadas en la orientación para descripción análisis y conclusiones. 1. Tome la cebolla y corte con el bisturí un pedazo de bulbo, levante suavemente con una pinza una capa delgada y transparente de la parte interna, este es el tejido epidermal. 2. Levante suavemente con la pinza una capa delgada y transparente de la parte interna, éste es el tejido epidermal. Divida el tejido que obtuvo en dos partes de 3-4 mm. 3. Coloque una gota de agua sobre la lámina portaobjetos y con ayuda de una aguja de disección extienda sobre ella una parte de la epidermis, teniendo cuidado que la cara externa quede hacia arriba y sin dobleces. Cubra el preparado con una laminilla. 23
  • 25. 4. Coloque sobre en otra lámina una gota de lugol y la otra parte del tejido epidermal. Deje actuar el colorante lugol durante 5 minutos. Acerque una laminilla, en posición oblicua, y apoyando una arista sobre la lámina al lado de la gota, déjela caer suavemente sobre la gota. 7. Enseguida proceda a la observación de las preparaciones con pequeño aumento de 10x. 8. A continuación revise las preparaciones con el objetivo de 40x.Tenga en cuenta que las propiedades ópticas de los organelos son similares, por lo tanto se hace difícil distinguir unos de otros. Sin embargo las propiedades químicas de los organelos son diferentes, por esto, reaccionan de distinta forma ante determinados colorantes. Al utilizar Lugol se pueden distinguir mejor algunas estructuras celulares. 9. Anote y dibuje sus observaciones. Tenga en cuenta las diferencias observadas en la lámina con agua y la lámina con lugol. Orientación para la descripción, análisis y conclusiones de las observaciones 1. Dibuje en su formato 2 o 3 de las células que forman el tejido epidermal de la cebolla. Reconozca sus partes y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas a. ¿Qué forma tiene las células de este tejido? b. ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) en 40X? c. ¿Qué conclusiones puede sacar de la utilización de diferentes aumentos? d. ¿Al hacer el montaje con tinción (lugol), que sucede, qué organelos se colorean? e. ¿Qué ventajas tiene el utilizar colorante? ¿Qué desventaja? f. ¿Qué función cumple el tejido epidermal? Observación de tejido parenquimatoso en un corte transversal de papa Elabore un montaje para observación del tejido parenquimatoso en un corte transversal de papa: 1. Tome el bisturí y haga un corte transversal de la papa, este corte debe ser tan fino que la apariencia de la porción que obtenga sea transparente. 2. En una caja de petri con agua, enjuague el corte para sacar el exceso de almidón, contenido en las células de los tejidos de la papa. 3. Elabore dos montajes húmedos uno con una gota de agua y otro con una gota de lugol. 4. Observe con el objetivo de 10x. Anote y dibuje sus observaciones 5. Observe el montaje con el objetivo de 40x. Observación, descripción, análisis y conclusiones 2. Dibuje en su formato 2 o 3 de las células que forman el parénquima de la papa. Reconozca sus partes y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas a. ¿Qué forma tiene las células de este tejido? b. ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) en 40X? c. ¿Al hacer el montaje con tinción (lugol), que sucede, qué organelos se colorean? ¿De qué color? ¿Por qué? d. ¿Qué función cumple este tejido? Observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico en hoja de Elodea 24
  • 26. Para observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico utilice una hoja de Elodea: 1. Tome con la pinza una ramita de Elodea y corte con las tijeras una hojita. 2. Extiéndala sin invertirla sobre una lámina portaobjetos, adicione una gota de agua y cúbrala con una laminilla. 3. Observe detenidamente a través del microscopio con aumento 10x, 40x. Ponga atención al movimiento del citoplasma. Anote y dibuje sus observaciones Observación, descripción, análisis y conclusiones Dibuje en su formato 2 o 3 de las células que forman el tejido. Reconozca sus partes y señálelas mediante flechas con nombres. Indique mediante Flechas el movimiento del citoplasma. Conteste las siguientes preguntas a. ¿Qué forma tiene las células de este tejido? b. ¿Qué estructuras se observan con el objetivo 40X? c. ¿Qué función cumplen los cloroplastos? d. ¿Qué es Ciclosis? ¿Por qué se realiza? e. ¿Qué es presión de turgencia? f. ¿Qué es ósmosis? Observación de cromoplastos en pulpa de tomate Para continuar realice un montaje con pulpa de tomate e identifique los cromoplastos: 1. Con una hoja de afeitar o bisturí, haga una incisión y separe la cáscara. 2. Extraiga una pequeña porción de pulpa con el extremo de una aguja y espárzalo sobre un porta objetos seco. No adicione agua. 3. Coloque encima un cubreobjetos y comprima suavemente con los dedos hasta obtener un completo aplastamiento del fragmento de pulpa de tomate. 4. Identifique las células con el objetivo de 10X 5. Seleccione el mejor grupo de células y luego pase al objetivo de 40x. Anote y dibuje sus observaciones Observación de células escamosas epiteliales 1. Coloque una pequeña gota de solución salina en el centro del portaobjetos. 2. Con un palillo raspe suavemente el interior de su mejilla, de abajo hacia arriba. 3. Coloque el producto de este raspado en la gota de solución salina. 4. Coloree con una gota de acetocarmin, azul de metileno o safranina. 6. Coloque el cubre objetos y observe al microscopio con objetivo de 10x y 40x e identifique las células de forma irregular. ¿Qué forma tiene estas células? ¿Qué organelos se observan con el aumento de 10X y 40X?. Al aplicar colorante qué organelos se observan mejor? ¿Cuál es la función del tejido epitelial? Anote y dibuje sus observaciones Observación de células sanguíneas A continuación realice un extendido para observación de células sanguíneas: 1. Desinfecte con un algodón humedecido en alcohol la punta del dedo anular o índice, deje secar el alcohol y con la lanceta, haga una punción en la yema del dedo. 25
  • 27. 2. Coloque una pequeña gota en una lámina portaobjetos limpia y seca. 3. Coloque otra lámina en ángulo agudo sobre la primera, acérquela a la sangre y deslice suavemente en forma continua hasta formar una capa o frotis delgado. 4. Deje secar la preparación al medio ambiente. 5. Una vez seca la lamina aplique sobre el frotis el colorante de Wright y déjelo actuar durante cuatro minutos. Con este procedimiento el colorante fijará la preparación. 6. Lave el exceso de colorante con agua de la llave y deje secar la lámina verticalmente. 7. Observe al microscopio con el objetivo de pequeño y mediano aumento e identifique los glóbulos rojos, leucocitos y plaquetas. 8. Posteriormente observe la preparación con el objetivo de 100X y detalle la forma de los eritrocitos, plaquetas y neutrofilos. ¿En cuáles de estas células no se encuentra núcleo? ¿Cuáles aparecen más frecuentemente? Identifique las células sanguíneas teniendo en cuenta la forma, ausencia o presencia de gránulos en el citoplasma, coloración que toman los gránulos y forma del núcleo. ¿Qué función cumplen cada una de estas células? Anote y dibuje sus observaciones Formato de observaciones OBJETO AUMENTO DIBUJO ANÁLISIS Y OBSERVADO UTILIZADO CONCLUSIONES Conclusiones: Deben estar relacionadas con la diferencia entre las células epidérmicas vegetales y parenquimatosas vegetales; diferencias entre las células animales y vegetales, (forma tamaño, distribución, entre otros) Laboratorio 4: Mitosis y Meiosis Video: mitosis y meiosis parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis1.htm Video: mitosis y meiosis parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis2.htm OBJETIVOS:  Manejar correctamente los materiales y reactivos específicos de la práctica.  Identificar cada uno de los periodos que comprende el ciclo celular  Relacionar cada cambio presente en las células meristemáticas, con las diferentes fases de la mitosis.  Reconocer los procesos de la meiosis con base en el material suministrado. Marco Teórico Unidad 1 Capítulo 2 Lecciones 12 a 14 MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR bulbo de cebolla Allium cepa 26
  • 28. Bisturí Pinzas vaso desechable Palillos grandes Tijeras Papel de filtro Portaobjetos Cubreobjetos Lanceta Esmalte transparente MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORATORIO Pipeta Pasteur, Vaso de precipitado Cubeta de disección Aceto orceina Eosina Metanol Bisturí Preinforme Defina y explique de manera grafica la mitosis y meiosis, detallando sus etapas y las células en las que se presenta este proceso. PROCEDIMIENTO: Para el desarrollo de esta práctica utilice bulbos de cebolla, Allium cepa y realice preparaciones con la raíz de material fijado y teñido, una vez obtenidos los extendidos de células obsérvelos al microscopio óptico. 1. Con ayuda de una pinza retire la capa externa marronacea o rosácea y lave con abundante agua, esto se realiza para eliminar restos de sustancias con las que frecuentemente han sido tratadas para inhibir o retardar la germinación de las raicillas. 2. Llene un vaso de precipitados con agua y coloque un bulbo de cebolla sujeto con dos o tres palillos de manera que la parte inferior quede inmersa en el agua. 3. Póngalo a germinar a 25°C o a temperatura ambiente durante 3 días, al cabo de estos aparecerán numerosas raicillas en crecimiento de unos 3 o 4 cm. de longitud. 4. Revise diariamente y procure que la corona no se deseque para lo cual es necesario rellenar con agua cada 24 horas. 5. Cuando las raíces tengan entre 0.5 y 1 cm de longitud, realice cortes de raíz de aproximadamente 2 – 3 mm a partir del ápice. 6. colóquelas en una lámina portaobjetos. Adiciona una gota del colorante aceto orceina o eosina. 7. Coloque el cubreobjetos con mucho cuidado sobre la raíz. Con ayuda de la punta de una lanceta, de unos golpecitos sobre el cubre objetos sin romperlo, de modo que la raíz quede extendida. 8. Use papel de filtro para retirar el exceso de colorante realice una suave presión, evitando que él cubre objetos resbale. Si la preparación está bien asentada no hay peligro de rotura por mucha presión que se realice. 9. Selle todos los bordes del cubre objetos con esmalte transparente, para evitar que se seque y de esta manera conservar la preparación durante varios días. 10. Coloque la preparación al microscopio e inicie la observación con el objetivo de 10x e identifique las células. 27
  • 29. 11. Cambie al objetivo de 40X para detallar las células. Observe los núcleos y cromosomas en color rosáceo – morado. 12. Ubique el objetivo de 100 x y anote sus observaciones anotando las diferencias en cada uno de los aumentos mencionados. 13. Trate de observar detenidamente las preparaciones y distinga células en interfase y células en división y dentro de estas, las diferentes etapas de la mitosis Realice dibujos de lo observado. Para la observación de las diferentes fases de la meiosis trabaje con micropreparados con células en proceso de meiosis Trate de observar detenidamente las preparaciones y distinga células en interfase y células en división y dentro de estas, las diferentes etapas de la mitosis Realice dibujos de las fases que distinga, tenga en cuenta la posición de los cromosomas para identificar las fases. INFORME. OBJETO AUMENTO DIBUJO ANÁLISIS Y OBSERVADO UTILIZADO CONCLUSIONES 1. Dibuje en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué tipo de tejidos pertenecen e identifique lo siguiente. ¿Qué etapas de la meiosis y mitosis observo? ¿Qué proceso se está desarrollando en las etapas observadas? ¿Qué tipo de células se están observando? ¿Cuántos cromosomas poseen las células en mitosis? ¿Cuántos cromosomas poseen las células en meiosis? Laboratorio 5: Diversidad de Microorganismos Video: biodiversidad microbiana parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad1.htm Video: biodiversidad microbiana parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad_2.htm Descripción A través de esta práctica el estudiante podrá realizar una descripción macroscópica de las colonias bacterianas y de hongos, de microorganismos como protozoos y microalgas, además de adquirir destrezas en técnicas de tinción. OBJETIVOS: 28
  • 30. Reconocer en placas de cultivo diferentes tipos de microorganismos, en especial Colonias de bacterias y hongos.  Conocer y aplicar la técnica de tinción de Gram  Identificar bacterias Gram positivas y Gram negativas  Observar microscópicamente bacterias con endosporas (Bacillus)  Observar microscópicamente hongos.  Observar microscópicamente levaduras.  Observar microorganismos de fermentación ácido láctica y fermentación alcohólica a partir del kumis o yogurt.  Observar protozoarios y algas en muestras de agua Marco Teórico: Unidad Capitulo 4 Lecciones 22 a 26 MATERIAL SUMINISTRADO MATERIAL QUE SE DEBE Cultivos de diversos hongos TRAER bacterias en cajas de petri Levadura de panadería Solución salina Yogur casero o probiótico Agua destilada Agua estancada Mechero Laminas portaobjetos Laminillas Escobillones Agua azucarada Gotero Tajada de pan Papel de filtro Asa recta y de argolla Tubo de ensayo Cinta adhesiva Varilla de vidrio Microscopio Coloración de Gram ( cristal violeta, lugol, alcohol acetona y safranina) Verde de Malaquita Safranina 0.5% Lactofenol Azul de Metileno Rojo neutro Alcohol o Metanol Preinforme 1. Defina los principales linajes los organismos. Enriquezca gráficamente su explicación. 2. Complete el siguiente cuadro conceptual. Principales Características Impacto Organismo Tipo de Célula Morfológicas y Hábitat Ecológico Fisiológicas Bacteria Protozoario 29
  • 31. Hongos Algas PROCEDIMIENTO: Entre los principales grupos de microorganismos se encuentran: bacterias, hongos, algas y protozoarios. Observación macroscópica de colonias 1. Realice una descripción macroscópica de las colonias bacterianas y de hongos entregadas en las cajas de Petri. Haga un cuadro donde describa la forma (puntiforme, circular, rizoide, irregular y filamentosa), el borde (entero, ondulado o filamentoso), la elevación (plana, elevada, convexa, crateriforme y acuminada) y la superficie (lisa o rugosa, mate o brillante, seca o cremosa, invasiva o superficial). Dibuje en su formato 2 o 3 de las colonias observadas, señalando en el dibujo a que tipo de organismo pertenece e identifique lo siguiente. ¿Qué forma tienen las colonias célulares observadas? ¿Cuál es su color? ¿Qué forma tienen las colonias observadas (puntiforme, circular, rizoide, irregular y filamentosa), ¿Cómo es el borde de la colonia (entero, ondulado o filamentoso) ¿Cómo es la elevación (plana, elevada, convexa, crateriforme y acuminada) ¿Cómo es la superficie (lisa o rugosa, mate o brillante, seca o cremosa, invasiva o superficial) Colonia Forma Borde Elevación Superficie COLORACION DE GRAM A partir de una de las colonias de los cultivos dados realice un frotis de la siguiente manera: 1. Tome una lamina portaobjetos limpia y en ella coloque una gota de solución salina. 2. Con un asa previamente esterilizada a la llama del mechero, obtenga una pequeña muestra de las colonias observadas. Mézclela en la gota de solución salina que coloco en el portaobjetos. 3. Déjela secar al aire libre y fíjela pasándola por la llama del mechero. Posteriormente proceda a colorear con la tinción de gram de la siguiente manera: 4. Cubra la preparación con cristal violeta y déjela actuar por 1 minuto. Lave con agua corriente. 5. Cubra la preparación con lugol y déjelo actuar por 1 minuto. Lave con agua corriente. 30
  • 32. 6. Agregue alcohol acetona y déjelo actuar por 5 segundos. Lave con agua corriente. 7. Adicione safranina y déjela actuar por 30 segundos. Lave con agua corriente y ponga a secar la lámina. 8. Ubique la lámina en el microscopio, localice las bacterias con el objetivo de menor aumento y observe en detalle a mayor aumento. 9. Identifique las células observadas. Anote sus observaciones. BACTERIAS DE LA CAVIDAD BUCAL 1. Prepare una lámina portaobjetos limpia y sin grasa. 2. Tome un escotillón desechable, páselo por el borde de la encía en la parte que hace contacto con los dientes. 3. La muestra extraída con el escotillón colóquela sobre una lámina portaobjetos. 4. Deje secar por sí sola la lámina durante unos minutos con el fin de definir el frotis. 5. Pase lentamente el portaobjetos a través de la llama del mechero, con esto se fija el frotis. 6. Deje enfriar y coloree con la tinción de Gram como se indicó anteriormente. 7. Deje secar la lámina y ubique las células con el objetivo de menor aumento y luego observe con el objetivo de inmersión. 8. Tenga en cuenta que las bacterias Gram positivas toman coloración violeta y las Gram negativas coloración roja. Anote sus observaciones. BACTERIAS DEL YOGUR 1. Tome una lámina portaobjetos y en ella coloque una gota de agua destilada. 2. Con un asa de argolla, obtenga una gota de yogur y mézclela con la gota de agua colocada en el portaobjetos. 3. Deje secar completamente la lámina. Pásela 3 veces por la llama del mechero. Tenga cuidado de no sobre calentar la muestra. 4. Cubra la preparación con alcohol o metanol por unos segundos para eliminar la parte grasa. 5. Escurra el alcohol y deje secar al aire. Luego cubra el extendido con azul de metileno durante 2 minutos. Lave el exceso de colorante y deje secar. 6. Enfoque el microscopio con el objetivo de mayor aumento e identifique los estreptococos y los lactobacilos. Anote sus observaciones. Dibuje en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué tipo de organismo pertenece e identifique lo siguiente. a. ¿Qué tipo de microorganismos se observan? b. ¿Cómo se denominan las bacterias según su forma? c. ¿Cómo se clasifican las bacterias según la manera de agruparse? d. ¿Qué color toman las bacterias de acuerdo a la coloración de gram? OBSERVACION DE MOHOS 1. Prepare una solución de agua azucarada y agregue 20 gotas de esta a una tajada de pan, déjela por espacio de media hora al aire libre. 2. Almacénela en una bolsa plástica y ciérrela. Guárdela en un lugar oscuro a 30°C y obsérvela diariamente. 31
  • 33. 3. Cuando el pan esté enmohecido, coloque en un portaobjetos una pequeña gota de solución de lactófenol. 4. Luego con un trozo de cinta adhesiva transparente de aproximadamente 2 cm toque la superficie del pan enmohecido. 5. Pegue la cinta adhesiva sobre la gota del portaobjetos. Elimine el colorante sobrante con un papel de filtro. 6. Observe al microscopio con objetivo de 40X e identifique el micelio y las hifas. El procedimiento anterior también puede hacerlo con frutas u hortalizas dañadas que presenten en su superficie mohos. Anote sus observaciones. OBSERVACION DE LEVADURAS 1. Tome un poco de levadura de panadería y colóquela en un tubo de ensayo que contenga agua con azúcar. 2. Incube a 37°C durante 15 minutos esto producirá el desarrollo de las levaduras. 3. Con una varilla de vidrio tome una gota del cultivo anterior y extiéndala en el portaobjetos. Deje secar al aire 4. Adicione dos gotas de azul de metileno y deje actuar durante tres minutos 5. Coloque una laminilla y elimine el exceso de colorante con papel de filtro. 6. Observe al microscopio e identifique las levaduras por su forma ovalada. Observe que algunas presentan gemaciones. Anote sus observaciones. BACTERIAS DEL SUELO 1. Entierre horizontalmente un portaobjetos en la tierra de una maceta o de un jardín, déjela allí durante 5 días. 2. Transcurrido este tiempo saque la lamina y fíjela pasándola tres veces por la llama del mechero. 3. Limpie los bordes del portaobjetos y la parte que no va a teñir. 4. Luego coloree la lamina con safranina al 0.5% durante 1 minuto. Lave el exceso de colorante y deje secar. 5. Observe al microscopio con el objetivo de mayor aumento y anote sus observaciones. ALGAS Y PROTOZOOS 1. Tome una muestra de agua estancada con un cuentagotas y deposítela en el centro de un portaobjetos. Coloque un cubreobjetos. 2. Observe la preparación al microscopio. Mueva lentamente la preparación, e identifique las algas y los protozoos. 3. Añada unas gotas de rojo neutro por el borde del cubre para que penetre en la preparación y puedas ver los microorganismos, que por su transparencia son difíciles de observar. 4. Anote sus observaciones. CONTENIDO DEL INFORME:  portada 32
  • 34. objetivos  diligenciamiento de los formatos para cada uno de los diagramas: FORMATO #1 bacterias tinción Enfoque Enfoque forma Gran Gram Observaciones 40X 100X (-) (-) FORMATO #2 hongos tinción Enfoque Enfoque Estructuras nombre Observaciones 40X 100X FORMATO #3 levaduras tinción Enfoque Enfoque Reproducción Observaciones 40X 100X (Utilice lápices de colores)  Análisis de resultados  conclusiones  bibliografía OBSERVACION DE ESPORAS A partir del cultivo en caja de petri marcado como Bacillus, prepare un extendido del microorganismo. 1. Fije por calor y cubra todo el portaobjetos con una solución de verde de Malaquita. 2. Caliente hasta emisión de vapores y siga dicho calentamiento durante 3 minutos. 3. Lave con agua y cubra con solución de safranina. Deje actuar 30 segundos. Lave con agua y deje secar la lámina. 4. Enfoque con el objetivo de inmersión y observe los bacilos y en su interior las esporas ubicadas en un extremo. Anote sus observaciones Laboratorio 6: Tejidos Vegetales Laboratorio 6: Tejidos Vegetales 33
  • 35. º Vídeo: tejidos vegetales Descripción Esta práctica permite a los estudiantes comprobar la diversidad y especuialización de los tejidos vegetales , además de adquirir la habilidad para realizar cortes a mano alzada OBJETIVOS:  Comprobar la diversidad y especialización de las células vegetales y sus agrupaciones en tejidos.  Adquirir habilidad en la elaboración de cortes a mano alzada y en coloración  Agudizar el sentido de la observación de las estructuras vegetales, aspecto importante para comprender la morfología vegetal. MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR Hoja de lirio Hoja de olivo Hoja de Elodea Rama de hiedra Bulbo de cebolla Tomate Papa Pera Raíces de cebolla Lápiz de madera de cedro Bisturí o cuchilla Pinza Láminas portaobjetos y Laminillas MATERIAL SUMINISTRADO Fluoroglucina Acido clorhídrico Verde brillante Microscopio 34
  • 36. PROCEDIMIENTO: En esta práctica observe a través del microscopio la morfología de los distintos tejidos vegetales. TEJIDO PROTECTOR 1. Tome una hoja de lirio y con un bisturí haga una pequeña incisión en el limbo 2. Con ayuda de una pinza levante la capa externa para obtener una lámina fina. 3. Coloque la lámina fina obtenida en el portaobjetos y agregue una gota agua. 4. Enfoque al microscopio con objetivo de 10x y 40x. Identifique los ostiolos y los cloroplastos. Anote sus observaciones. Observe otro ejemplo de tejido epidérmico realizando un montaje con cebolla como se explico en la práctica de la célula. Observe al microscopio con el objetivo de menor aumento e identifique la forma de las células epiteliales. Con el objetivo 40X identifique los nucleolos. Otro ejemplo de tejido protector puede observarlo en la hoja de olivo. Raspe el envés de una hoja de olivo. Coloque el raspado en una lámina y adicione una gota de agua. Observe los pelos escamiformes con forma de sombrilla. Anote sus observaciones TEJIDO PARENQUIMÁTICO DE ALMACENAMIENTO. Realice un montaje con pulpa de tomate como se explicó en la práctica de la célula. Observe al microscopio y anote sus observaciones. Realice un montaje con el raspado de papa como se indico en la práctica de la célula. Observe al microscopio y anote sus observaciones. Realice un montaje con la hoja de Elodea como se indico en prácticas anteriores. Observe al microscopio y anote sus observaciones. TEJIDOS MECÁNICOS O DE SOSTÉN. Raspe con un cuchillo o bisturí una parte pequeña de mesocarpio de pera y colóquela en un portaobjetos. Cubra la muestra con fluoroglucina durante 2 minutos. Elimine el exceso y cubra con ácido clorhídrico. 35
  • 37. Coloque una lámina portaobjetos y observe el microscopio con objetivo de 40x. Anote sus observaciones. TEJIDOS CONDUCTORES Realice un corte longitudinal y fino de un lápiz de madera de cedro. Coloque las virutas en un portaobjetos, adicione agua. Coloque una laminilla y observe al microscopio. Realice finos cortes perpendiculares del pecíolo de la hiedra, a la dirección del tallo; mínimo cuatro cortes. Deposítelos en una lámina y adicione verde brillante durante 5 minutos. Lave con agua corriente. Cubra la lámina con fluoroglucina durante 2 minutos. Transcurridos los 2 minutos elimine el exceso de colorante. Cubra con ácido clorhídrico, coloque un cubreobjetos y observe al microscopio. Anote sus observaciones. TEJIDO MERISTEMATICO Realice un montaje con la raíz de la cebolla como se indico en la práctica de mitosis. Observe las células que se encuentran en mitosis. 36
  • 38. Anexo Orientaciones para la descarga de los videos Apreciados estudiantes para que no tengan dificultades para ver los videos en línea, los he subido a un sitio Web desde el cual los pueden descargar y guardar en su computador y así los pueden observar sin necesidad de internet. Solo deben tener flash que ya todos los computadores lo traen. 1. Para descargar el video de normas de seguridad en el laboratorio deben entran a esta dirección http://www.4shared.com/file/N9heZ5gz/NORMASB.html 2. dar clic en descargar ahora (ver pantallazos) 3. Dar clic para descargar este archivo ahora 37
  • 39. 4. Guardar el archivo del video en su computador 2. A continuación las direcciones para descargar los demás videos: Microscopio parte 1 http://www.4shared.com/file/QLGjS_x3/MICROSCOPIO1.html Microscopio parte 2 http://www.4shared.com/file/a5V8jaL-/MICROSCOPIO2.html La célula parte 1 y 2 http://www.4shared.com/file/cjFouFzX/CELULA3F.html 38
  • 40. Los microorganismos parte 1 y 2 http://www.4shared.com/file/srcfinxo/MICROORGANISMOS.html Mitosis 1 parte http://www.4shared.com/file/5SjzDkSJ/MITOSIS_1.html Mitosis 2 parte http://www.4shared.com/account/file/__h3_PdC/MITOSIS_2.html Tejidos vegetales http://www.4shared.com/file/e_Gw7Jl7/TEJIDOSV.html Quienes quieran descargar el simulador de microscopía y practicar en él pueden hacerlo en esta dirección: http://www.4shared.com/file/D4dxxdnY/Simulador_microscopa.html Este archivo está comprimido con Winrar deben descargarlo, guardarlo en su PC y luego descomprimirlo. Si quieren descargar el curso completo con videos y animaciones pueden hacerlo desde esta dirección http://www.4shared.com/file/H7lcGfwu/sitiocursohipermedia.html No deben borrar ningún archivo abren la carpeta sitiocursohipermedia y dan clic en el archivo index 39