2. ÍNDICE
● MICROSCOPIO Y SUS PARTES
● TÉCNICAS DE EXPERIMENTACIÓN
CITOLÓGICA
● CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
● CÉLULAS Y TEJIDOS ANIMALES
● DIBUJOS ROTULADOS DE DOS
CÉLULAS O ESTRUCTURAS
5. CORTE
Se realiza con un microtomo o, en
nuestro caso con un bisturí. Se trata
de realizar un corte del tejido lo más
fino posible para obtener una
lámina que posteriormente se
pueda observar en el microscopio
tras colocar esta lámina en un
portaobjetos, conviene procurar que
no haya un exceso de agua que
dificulte la observación del tejido. Imagen 2: nombre desconocido. Recuperada de: http:
//www.barbacena.ifsudestemg.edu.
br/destaques/estudante-iniciacao-cientifica-realiza-
parte-pesquisa-ufv
6. TINCIÓN
Para observar ciertos elementos de la célula de manera
más clara es recomendable teñir las preparaciones. En
nuestro caso hemos empleado verde de metilo para la
epidermis de cebolla, lugol para los amiloplastos de la
patata y azul de metileno para la epidermis bucal. Tras
aplicar unas gotas de colorante y dejar esperar cinco
minutos se retira el exceso de colorante con agua
destilada.
7. AZUL DE METILENO, VERDE DE
METILO Y LUGOL
● El azul de metileno es una sustancia soluble en el agua y en el
alcohol. Aparte de que es un buen colorante nuclear tiene la
propiedad de teñir selectivamente el tejido nervioso e impregnar
muchos elementos en vivo.
● El verde de metilo es un tinte soluble en el agua y en el alcohol y
colorante nuclear.
● El lugol es un colorante que determina si una sustancia tiene una
estructura helicoidal o no, de manera que si esta finalmente queda
de color azul-violeta, significa que es positiva por lo que es una
sustancia helicoidal, y si por el contrario queda de color amarillo, es
negativa por lo que la sustancia no es helicoidal.
8. FIJACIÓN
Para observar determinadas preparaciones, sobre todo
algunas que se encuentran en estado líquido o
semilíquido es necesario fijar las preparaciones. Esto se
realiza mediante calor, se sujeta con unas pinzas de
madera el portaobjetos y se calienta en la llama de un
mechero bunsen. En nuestro caso requerimos de este
proceso en la preparación de la muestra de plátano y de
células epiteliales de la boca.
9. CUBRIMIENTO
Es recomendable colocar un cubreobjetos
(una pequeña lámina de cristal) sobre la
muestra.
Esta ayuda a que que las lentes del
microscopio al acercarse a la muestra no la
contaminen o dañen.
10. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Nº aumentos de Imagen 3: 15 ocular x 10
objetivo x 2 (ampliada al doble)= 300 aumentos
Imagen 3: García, F. (2014). Lápiz de cedro.
Tamaño medido = 3.5 cm
3.5cm
Tamaño real (diámetro de la muestra)=
300
Tamaño real = 0.117 mm (117 µm) aprox.
Floema
Xilema
11. Nº aumentos de Imagen 4 y 5: 15 ocular x 10 objetivo = 150 aumentos.
Imagen 4 y 5: García, F. (2014). Epidermis de cebolla.
CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Núcleo
Pared celular
12. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Imagen 6: De Lorenzo, Lucas. (2014). Patata.
Nº aumentos de Imagen 6: 15 ocular x
10 objetivo = 150 aumentos.
Tamaño real = 0.53 mm
Amiloplastos (morado): su color se debe
al efecto del tinte utilizado (Lugol) sobre
el almidón.
Tamaño medido = 8cm
8cm
Tamaño real de la muestra=
150
13. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Nº aumentos de Imagen 7: 15 ocular x 4
objetivo / 2 (reducida al doble)= 30 aumentos
Imagen 7: García, F. (2014). Pétalo de adelfa.
Tamaño medido = 6.7cm
6.7cm
Tamaño real de la muestra=
30
Tamaño real = 2.233 mm aprox.
Epidermis
Células del pétalo, con cromoplastos en su
interior que aportan a las células (y por tanto
a la flor) su color característico.
14. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Nº aumentos de Imagen 9: 15 ocular x 10 objetivo x
2 (ampliada al doble) = 300 aumentos.
Imagen 8: García, F. (2014). Enves de lirio.Imagen 9: de Lorenzo, L. (2014). Envés de lirio 2
Nº aumentos de Imagen 8: 15 ocular x 4 objetivo =
60 aumentos.
Estomas con sus partes diferenciadas (el ostiolo y las células
oclusivas) distintas del resto de las células epidérmicas.
15. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Nº aumentos de Imagen 10: 15 ocular x
10 objetivo = 150 aumentos.
Vacuola
s
Imagen 10: García, F. (2014). Tomate.
16. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
Nº aumentos de Imagen 11: 15 ocular x 10
objetivo x 2 (ampliada al doble)= 300
aumentos
Imagen 11: Delgado, L. (2014). Plátano.
Se pueden
observar las
células del
plátano
Cavidad
secretora
Piel de la naranja
Nº aumentos de Imagen 12: 15 ocular x 10
objetivo = 150 aumentos
Imagen 12: García, F. (2014). Naranja.
17. CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
AMILOPLASTOS
CÉLULAS EPITELIALES
MUERTAS (EPIDERMIS
DE PATATA)
Imagen 13: de Lorenzo, L. (2014). Patata
En la foto (150x) se puede observar la diferencia
entre los dos tipos de tejido que están presentes
en la patata: la zona epitelial, que no contiene
amiloplastos, y que tiene un color y textura
diferente, debido posiblemente a las diferencias
fisiológicas entre las células; y la zona interna,
cuyos amiloplastos presentes en sus células se
tiñen por el efecto del lugol.
18. CÉLULAS Y TEJIDOS ANIMALES
Tamaño real = 0.067mm (67µm)
Imagen 13: García, F. (2014). Saliva.
Nº aumentos de Imagen 13: 15 ocular x
10 objetivo = 150 aumentos.
Membranas de una célula teñidas por el
azul de metileno.
Núcleo
Tamaño medido = 1 cm
1cm
Tamaño real=
150
19. DIBUJO ROTULADO DE LA NARANJA
E 1 : 0.01
2cm
Imagen 14: Delgado, L. (2014). Dibujo de la naranja.
Cavidad secretora
Piel de la naranja
20. DIBUJO ROTULADO DE CÉLULAS EPITELIALES BUCALES
Imagen 13: de Lorenzo L.. (2014). Saliva. Imagen 16: de Lorenzo, L. (2014). Células bucales.
Escala 1:150