Este documento describe la quitridiomicosis cutánea, una enfermedad causada por el hongo Batrachochytrium dendrobatidis que afecta a los anfibios. El hongo se desarrolla en la piel de los anfibios, formando zoosporangios de 10-40 micras que liberan zoosporas de 0.7-6 micras. Se ha registrado la infección en 50 especies de anfibios en México. El ciclo vital del hongo incluye una fase móvil acuática y una fase estacionaria en la piel
ciclo de vida de la fasciola hepática. el trabajo habla de los principales reservorios que tiene la fasciola hepática y como es que este migra al cuerpo humano siendo el humano un reservorio accidental
ciclo de vida de la fasciola hepática. el trabajo habla de los principales reservorios que tiene la fasciola hepática y como es que este migra al cuerpo humano siendo el humano un reservorio accidental
Las quemaduras son un tema recurrente en la salud y siempre es bueno conocer un poco sobre su tratamiento y asi saber que se puede hacer en una emergencia.
Micro 6- Bacteriología como agentes causantessantiagoavila28
La disciplina de la bacteriología se ocupa de todos los aspectos de la genética, la estructura, la fisiología, el comportamiento, la patogenicidad, la ecología y la evolución de las especies bacterianas. Las investigaciones bacteriológicas son esenciales en el diagnóstico clínico y el control de calidad industrial.
3. DESCRIPCIÓN DE LA ESPECIE:
• Esférico, eucariota, un hongo quítrido.
• Capas queratinizadas superficiales de la
epidermis.
• Zoosporangios de pared lisa que miden
10-40 micras de diámetro.
• Las zoosporas miden 0.7-6 micras de
diámetro, son alargados u ovoides.
• La temperatura óptima de desarrollo
del B. dendrobatidis se encuentra entre
los 17 y los 25 grados.
4. DISTRIBUCIÓN.
• En México se identificó una oleada
epidémica en la década de 1970.
• A la fecha, se ha registrado la infección en
50 especies de anfibios que se distribuyen,
principalmente en las regiones montañosas
del centro y sur del país (Mendoza-Almeralla
et al., 2015).
5. CICLO DE VIDA:
• El ciclo de vida tiene dos fases principales:
• la zoospora móvil, de vida corta (vehículada por
el agua)
• y el tallo estacionario monocéntrico que se
desarrolla convirtiéndose en un zoosporangio
para la amplificación asexual.
• Vive en la epidermis estratificada de la piel.
• Crece inicialmente en células vivas, pero los
tallos completan su paso a zoosporangios en
células queratinizadas superficiales muertas
que carecen de orgánulos.
• La distribución de esporangios en adultos y
renacuajos necesitan una dermis estratificada
y queratinizada cuando aparecen en forma de
parásitos (Berger et al., 1998; Marantelli et
al., 2004).
6. PATOGENIA
2 Hipótesis
1° Bd libera enzimas
proteolíticas que son
absorbidos por la piel
permeable de la rana.
2° sugiere que unos daños en la
función cutánea dan lugar a
perturbaciones del equilibrio
hídrico y electrolítico
(osmorregulación) o bien solo del
equilibrio electrolítico, que
comportan la muerte del animal.
7. INFECCIÓN:
• La infección puede transmitirse entre animales por contacto
entre ellos o con zoosporas móviles vehiculadas con el agua.
8. PATOLOGÍA:
•
• Síntomas visibles son:
• la hiperqueratinización,
• decoloración,
• ulceración y
• erosión del estrato córneo de la piel, inapetencia,
• posturas anormales
• ausencia de comportamiento de escape
• desequilibrio osmótico originado por las perforaciones en la piel
• desbalance de electrolitos severo que redunda en un fallo cardiaco
• un bloqueo del intercambio de gases causado por la hiperplasia de la piel.
9. IMPACTO ECONÓMICO Y SOCIAL
• Describe los impactos a la economía y
al tejido social. Considera el
incremento de costos de actividades
productivas, daños a la infraestructura,
pérdidas económicas por daños o
compensación de daños, pérdida de
usos y costumbres, desintegración
social, etc.
10.
11. REFERENCIAS:
• CONABIO. 2017. Análisis de riesgo rápido de Batrachochytrium dendrobatidis.
Sistema de información sobre especies invasoras en México. Comisión Nacional
para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad. México DF.
• BERGER L., HYATT A., OLSEN V., HENGSTBERGER S., BOYLE D., MARANTELLI G.,
HUMPHREYS K. & LONGCORE J. (2002). Production of polyclonal antibodies to
Batrachochytrium dendrobatidis and their use in an immunoperoxidase test for
chytridiomycosis in amphibians. Dis. Aquat. Org., 48, 213–220.
• BERGER L., SPEARE R. & SKERRATT L. (2005b). Distribution of Batrachochytrium
dendrobatidis and pathology in the skin of green tree frogs (Litoria caerulea) with
severe chytridiomycosis. Dis. Aquat. Org., 68, 65–70.