Hemoparásitos: importancia
EconómicaSanitaria
Epidemiológica
Ambiental
Técnica
Terapéutica
Protozoarios y rickesias
Obligatoria denuncia
Hemoparásitos
BOVINOS PORCINOS EQUINOS
Anaplasma
marginale/centralis
Anaplasma
phagocytophila
Babesia bovis
Babesia bigémina Babesia equi
Babesia divergens
Babesia bovis
Cowdria ruminate
Ehrlichia bovis/Ehrlichia
canis
Ehrichia risticii
Theileria
parva/anulata/mutans
Anaplasmosis
Tripanosomosis vivax Tripanosomis suis Tripanosomosis evansi
Razas europeas: alta/
sensibles.
Razas criollas colombianas:
alta/ resistentes.
Raza cebuínas: muy
resistentes.
Animales cruzados: mediana/
resistentes.
Zonas tropicales y húmedas:
alta población de garrapatas.
Incidencia/Babesiosis/ epidemiología
DAÑOS DIRECTOS
Salud/productividad/producción
/económicos/rentabilidad
DIAGNOSTICO GENERAL
1. Dx. Clínico: X síntomas clínicos.
2. DX Laboratorio:
Métodos directos
Demostración de la presencia de los parásitos por
métodos directos con muestras de sangre y tinción, con
para extendidos finos o gruesos
Métodos Indirectos:
Hematología, pruebas bioquímicas, detección ag. y
Serología: inmunofluorescencia (elisa),
aglutinación(catt)
Hemoparásitos bovinos/Babesiosis
• Protozoario intracelular. Requiere vector.
• Tienen una repartición mundial,
extendiéndose desde los círculos
polares al Ecuador. Tropicales y subtrop.
• Esto es debido al hecho de que sus
vectores, las garrapatas o moscas
hematófagas, tienen también una
difusión mundial y particular/ zona
tropical
Hemoparásitos/Babesiosis –
diagnóstico/epidemiología.
Historia clínica: hemoglobinuria.
Presencia de vectores: garrapatas.
Informe del rebaño: zonas bajas.
Identificación del agente etiológico en
muestras sanguíneas :
x coloración Giemsa /naranja acridina
x aglutinación .
Técnicas x fijación de complemento.
x inmunofluorescencia indirecta.
x Elisa y PCR.
x Inmunoperoxidasa.
Hemoparásitos/Babesiosis -
diagnóstico
Depende de:
 Presencia del la garrapata como vector.
Del paciente: estado fisiológico, edad
estado nutricional.
Del parásito: virulencia, primoinfección o
reinfección.
Rapidez del diagnóstico.
Hemoparásitos/ Babesiosis
Período de incubación
Después de la inoculación directa
en sangre, el período de incubación puede
ser:
4 a 5 días para B. bigemina.
10 a 12 días para B. bovis.
Los síntomas de las infecciones de B.
bigémina y B. bovis general/ aparecen 2 a 3
semanas después de la infestación con
garrapatas
Hemoparásitos/ Babesiosis
Síntomas y signos
Varían según la edad del animal y la especie
y cepa del parásito.
La mayoría de los casos de babesiosis se
observan en adultos, y los animales
menores de 9 meses general/
no presentan síntomas.
Fiebre. Abortos.
Hemólisis y anemia.
Hemoglobinuria / hemoglobinemia.
Ictericia en casos agudos.
Toma de muestras
• Cuando sea posible, la sangre se debe
extraer de los capilares de las orejas o
de la cola.
• B. bovis es mucho más fácil de
detectar en la sangre capilar que en
• la circulación general.
• B. bigémina y B. divergens se pueden
encontrar en los vasos sanguíneos
como v. yugular (heparina/edta
Tripanosomiasis - características
 Protozoario flagelado vive en la
sangre y otros fluidos: su
habitat es extracelular.
 No sobrevive x fuera del
huésped, requiere vectores o
transmisión por agujas.
 Transmisión x moscas: tábanos.
 Posible transmisión
transplacentaria.
 Adaptación a otras formas de
transmisión.
Hemoparásitos equinos
Tripanosomosis
Enfermedad de curso agudo, de amplia
distribución mundial que afecta al hombre y
a los animales domésticos como equinos.
Tipos:
T. vivax: rumiantes
T. evansi: equinos
T. Equinun
T. Suis y T. cruzi(hombre).
La fase de invasión es la más drástica con
cuadro parasistémico con lesiones
vasculares y hemorrágicas.
Hemoparásitos equinos
Tripanosomosis
Diagnóstico: hemoparásito extracelular.
Exámen clínico con reporte de anemia, abortos.
Hay también fase nerviosa.
Tomar muestra de sangre periférica con capilar
heparinizado.
Por extensión de sangre gota gruesa con tinción de
Giemsa en placa para observación del parásito.
Prueba de Woo de centrifugación en tubo capilar.
Inoculación en ratón.
La prueba de Woo es más sensible que el fortis.
Importancia de la tripanosomosis
• Importancia económica x incidencia en
producción y productividad de los animales y
del hato afectado.
• Abortos y baja producción leche.
• Costos de atención: profesionales y
medicamentos.
• Importancia epidemiológica x que varia x
agente, sensibilidad de especie atacada,
intensidad de la infección.
• La severidad de la infección varía por razas y
sistemas de producción.
Tripanosomosis
- síntomas
• Tiene 3 fases.
• Penetración: inflamación edema y
linfadenopatía, agalactia y mastitis.
• Invasión : con petequias, hemorragias
petequiales y parasitemias.
• Nerviosa: llega hasta el SNC y el LCF con
depósitos de atcs = meningoencefalitis
con parálisis flácida.
Control y prevención de
tripanosomosis
• Conocimiento de biología de vectores, control de
vectores con uso de trampas.
• Identificación de portadores:
Síntomas= portadores vs casos clínicos.
Dx laboratorio: pruebas de Woo.
Pruebas para la detección del antígeno.
• Tto curativo o profiláctico:
Ojo epidemiología.
Disponibilidad de medicamentos.
Morfología diferencial tripanosomosis
• T. evansiT. vivax
Anaplasmosis
Es una ricketsia contra bovinos, ovinos y caprino.
Anaplasma marginale y centrali : bovinos
parásito intracelular.
La más común en países tropicales:
a.m. : produce anemia, ictericia, caquexia y
aborto.
a.c. : produce enfermedad subclínica
moderada.
Anaplasmosis
Los cuerpos de inclusión (anaplasma)
en los eritrocitos determina tipo de anaplasma.
Transmitidos mecanica o biológica/ x garrapatas
o x moscas picadoras.
Historia clínica:
Signos: NO hemoglobinemia ni hemoglobinuria.
Dx. de laboratorio x técnica diagnostica de
inmunofluorescencia indirecta de
anticuerpos (IFI),
Anaplasmosis: Transmisión
• Por tres métodos diferentes:
El primero de forma biológica,
cuando los eritrocitos infectados son
ingeridos por las garrapatas, y la
rickettsia se replica dentro del intestino
de la garrapata y las glándulas salivales,
y posteriormente, se transmite de las
garrapatas a los rumiantes.
Anaplasmosis transmisión
Un segundo método, es la forma
mecánica, que surge cuando los
eritrocitos infectados son transferidos
de ganado portador a susceptible por
moscas picadoras o fómites con sangre
contaminada, incluyendo agujas o
instrumentos quirúrgicos, también en
procesos como identificación con
orejeras, descornado y equipos de
castración.
Anaplasmosis: transmisión
La transmisión transplacentaria
ocurre cuando los eritrocitos
infectados se mueven a través de la
placenta en el útero a sus terneros.
Período de incubación: 30 días. Sigue
con fase aguda febril de 1 semana
Tratamientos: vacunas:
Ehrlichiosis canis
Enfermedad tropical aguda a crónica de
bovinos, equinos, ovinos y
perros(hombre).
Requiere de vectores (garrapatas) .
Período de Incubación: 2 a 3 semanas.
. Síntomas:
Eritema petequias y hemorragias
conjuntivales, mucosa gingival y
epistaxis. Anemia variable.
Ehrlichiosis canis
Dx de laboratorio
• Trombocitopenia, leucopenia y valores
elevados de coagulación.
• Mórula de E. canis en monocitos en un
frotis sanguíneo en tinción Diff-Quick.
• Con técnica PCR (reacción cadena de
polimerasa). controles hematológicos,
así como pruebas de detección del
parásito, (IFA o PCR), después de
finalizar el tratamiento,
Ehrlichiosis granulocítica equina
Causada por una rickettsia llamada Anaplasma
phagocytophila (anteriormente conocida
como Ehrlichia equi).
Es un coco Gram-negativo con tropismo hacia
los granulocitos (neutrófilos y eosinófilos).
Síntomas: fiebre, anorexia, petequias, letargo,
edema de los miembros, abdomen ventral y
tórax, ataxia, ictericia y restricción del
movimiento.
Ehrlichiosis granulocítica equina
El periodo de incubación: va de 10 a 20 días.
La enfermedad en general suele ser auto limitante
en caballos que no reciben tratamiento, aunque en
ocasiones, puede ser fatal.
La severidad de los signos clínicos varía con la
edad, en caballos menores de 3 o 4 años, los
signos son menos evidentes y el edema de las
extremidades es mínimo.
Se pueden infectar caballos de cualquier edad. La
enfermedad es contagiosa y con frecuencia se
afectan varios animales dentro de todo un grupo
de caballos.
.
Ehrlichiosis granulocítica equina
La transmisión: x garrapatas del género Ixodes.
Diagnóstico:
Historia del animal (si tuvo garrapatas).
Los signos clínicos que presenta.
Las anormalidades hematológicas y
La demostración de los cuerpos de inclusión
característicos en al menos 3 células blancas
de una tinción sanguínea.
Los cambios sanguíneos incluyen
trombocitopenia, anemia y leucopenia y
cuerpos de inclusión.
Hemoparásitos: Impacto económico
 Pérdidas directas: morbilidad
y mortalidad de animales y reducción en la
producción de carne y leche.
 Pérdidas indirectas x tratamientos y el
establecimiento de medidas de control.
 Restricciones para la comercialización de
productos.= comercio internacional( los
residuos de medicamentos= inocuidad de
alimentos).
Conclusiones
El diagnóstico parasitológico de hemoparásitos
en bovinos implica unos retos y procesos que
incluyen :
 Adecuada recolección de muestras en el campo,
 Su posterior envío al laboratorio (donde se
realizan diversos procesos) y
 La correcta interpretación diagnóstica para así
lograr = diagnóstico etiológico.
 Una apropiada intervención en el campo, manejo,
incluyendo pastoreo y transporte.
Conclusiones
El laboratorio es una herramienta
imprescindible para entender la
problemática y epidemiología de los
hemoparásitos de los bovinos en sistemas
de producción en el trópico.
Un diagnóstico acertado, depende en gran
medida de la calidad de la recolección de
la muestra así como de una apropiada
descripción de la enfermedad presente en
el campo.
Ojo! Siga los protocolos para una
adecuada recolección y envío de
muestras al laboratorio.
Conclusiones
El La babesiosis se puede erradicar
mediante la eliminación de las
garrapatas de los huéspedes.
En EE. UU esto se logró mediante el
tratamiento del ganado bovino cada 2 o
3 semanas con acaricidas.
Bibliografía
M. Cordero del Campillo y otros. Parasitologia
veterinaria. Mc Grawuhil Interamericana 2.001
G.M. Urquhart y otros.
Parasitología veterinaria. Editorial Acribia S.A.2.001
Benavides O.E. Consideraciones sobre Babesiosis y
anaplasmosis; Revista Acovez. 1986
http://www.oie.int/doc/ged/D3006.PDF
http://www.slideshare.net/EVBenavides/hemoparsitos-y-
reproduccin-bovina
http://revistas.lasalle.edu.co/index.php/ca/article/view/1316/1
202
http://www.monografias.com/trabajos43/erlichiosis/erlichiosis2.shtml
Bibliografía
http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/babesiosis_bovina.p
df
http://www.oie.int/es/normas-internacionales/codigo-
terrestre/acceso-en-linea/
Queensland Department of Primary Industries and Fisheries
(DPIF). Making Blood Smears for Tick Fever Diagnosis
http://www.dpi.qld.gov.au/cps/rde/dpi/hs.xsl/4790_6241_ENA_HT
ML.htm
Queensland DPIF. How to Make Organ Smears for Tick Fever
Diagnosis
http://www.daff.qld.gov.au/4790_6224.htm The Merck
Veterinary Manual
http://www.merckvetmanual.com/mvm/index.jsp United States
Animal Health Association. Foreign Animal Diseases
http://www.aphis.usda.gov/emergency_response/downloa
ds/nahems/fad.pdf World Organization for Animal Health (OIE)
http://www.oie.int
Hemoparasitos en veterinaria
Hemoparasitos en veterinaria
Hemoparasitos en veterinaria

Hemoparasitos en veterinaria

  • 1.
  • 2.
    Hemoparásitos BOVINOS PORCINOS EQUINOS Anaplasma marginale/centralis Anaplasma phagocytophila Babesiabovis Babesia bigémina Babesia equi Babesia divergens Babesia bovis Cowdria ruminate Ehrlichia bovis/Ehrlichia canis Ehrichia risticii Theileria parva/anulata/mutans Anaplasmosis Tripanosomosis vivax Tripanosomis suis Tripanosomosis evansi
  • 3.
    Razas europeas: alta/ sensibles. Razascriollas colombianas: alta/ resistentes. Raza cebuínas: muy resistentes. Animales cruzados: mediana/ resistentes. Zonas tropicales y húmedas: alta población de garrapatas. Incidencia/Babesiosis/ epidemiología
  • 4.
  • 5.
    DIAGNOSTICO GENERAL 1. Dx.Clínico: X síntomas clínicos. 2. DX Laboratorio: Métodos directos Demostración de la presencia de los parásitos por métodos directos con muestras de sangre y tinción, con para extendidos finos o gruesos Métodos Indirectos: Hematología, pruebas bioquímicas, detección ag. y Serología: inmunofluorescencia (elisa), aglutinación(catt)
  • 6.
    Hemoparásitos bovinos/Babesiosis • Protozoariointracelular. Requiere vector. • Tienen una repartición mundial, extendiéndose desde los círculos polares al Ecuador. Tropicales y subtrop. • Esto es debido al hecho de que sus vectores, las garrapatas o moscas hematófagas, tienen también una difusión mundial y particular/ zona tropical
  • 8.
    Hemoparásitos/Babesiosis – diagnóstico/epidemiología. Historia clínica:hemoglobinuria. Presencia de vectores: garrapatas. Informe del rebaño: zonas bajas. Identificación del agente etiológico en muestras sanguíneas : x coloración Giemsa /naranja acridina x aglutinación . Técnicas x fijación de complemento. x inmunofluorescencia indirecta. x Elisa y PCR. x Inmunoperoxidasa.
  • 9.
    Hemoparásitos/Babesiosis - diagnóstico Depende de: Presencia del la garrapata como vector. Del paciente: estado fisiológico, edad estado nutricional. Del parásito: virulencia, primoinfección o reinfección. Rapidez del diagnóstico.
  • 10.
    Hemoparásitos/ Babesiosis Período deincubación Después de la inoculación directa en sangre, el período de incubación puede ser: 4 a 5 días para B. bigemina. 10 a 12 días para B. bovis. Los síntomas de las infecciones de B. bigémina y B. bovis general/ aparecen 2 a 3 semanas después de la infestación con garrapatas
  • 11.
    Hemoparásitos/ Babesiosis Síntomas ysignos Varían según la edad del animal y la especie y cepa del parásito. La mayoría de los casos de babesiosis se observan en adultos, y los animales menores de 9 meses general/ no presentan síntomas. Fiebre. Abortos. Hemólisis y anemia. Hemoglobinuria / hemoglobinemia. Ictericia en casos agudos.
  • 12.
    Toma de muestras •Cuando sea posible, la sangre se debe extraer de los capilares de las orejas o de la cola. • B. bovis es mucho más fácil de detectar en la sangre capilar que en • la circulación general. • B. bigémina y B. divergens se pueden encontrar en los vasos sanguíneos como v. yugular (heparina/edta
  • 13.
    Tripanosomiasis - características Protozoario flagelado vive en la sangre y otros fluidos: su habitat es extracelular.  No sobrevive x fuera del huésped, requiere vectores o transmisión por agujas.  Transmisión x moscas: tábanos.  Posible transmisión transplacentaria.  Adaptación a otras formas de transmisión.
  • 14.
    Hemoparásitos equinos Tripanosomosis Enfermedad decurso agudo, de amplia distribución mundial que afecta al hombre y a los animales domésticos como equinos. Tipos: T. vivax: rumiantes T. evansi: equinos T. Equinun T. Suis y T. cruzi(hombre). La fase de invasión es la más drástica con cuadro parasistémico con lesiones vasculares y hemorrágicas.
  • 15.
    Hemoparásitos equinos Tripanosomosis Diagnóstico: hemoparásitoextracelular. Exámen clínico con reporte de anemia, abortos. Hay también fase nerviosa. Tomar muestra de sangre periférica con capilar heparinizado. Por extensión de sangre gota gruesa con tinción de Giemsa en placa para observación del parásito. Prueba de Woo de centrifugación en tubo capilar. Inoculación en ratón. La prueba de Woo es más sensible que el fortis.
  • 16.
    Importancia de latripanosomosis • Importancia económica x incidencia en producción y productividad de los animales y del hato afectado. • Abortos y baja producción leche. • Costos de atención: profesionales y medicamentos. • Importancia epidemiológica x que varia x agente, sensibilidad de especie atacada, intensidad de la infección. • La severidad de la infección varía por razas y sistemas de producción.
  • 17.
    Tripanosomosis - síntomas • Tiene3 fases. • Penetración: inflamación edema y linfadenopatía, agalactia y mastitis. • Invasión : con petequias, hemorragias petequiales y parasitemias. • Nerviosa: llega hasta el SNC y el LCF con depósitos de atcs = meningoencefalitis con parálisis flácida.
  • 18.
    Control y prevenciónde tripanosomosis • Conocimiento de biología de vectores, control de vectores con uso de trampas. • Identificación de portadores: Síntomas= portadores vs casos clínicos. Dx laboratorio: pruebas de Woo. Pruebas para la detección del antígeno. • Tto curativo o profiláctico: Ojo epidemiología. Disponibilidad de medicamentos.
  • 19.
  • 20.
    Anaplasmosis Es una ricketsiacontra bovinos, ovinos y caprino. Anaplasma marginale y centrali : bovinos parásito intracelular. La más común en países tropicales: a.m. : produce anemia, ictericia, caquexia y aborto. a.c. : produce enfermedad subclínica moderada.
  • 22.
    Anaplasmosis Los cuerpos deinclusión (anaplasma) en los eritrocitos determina tipo de anaplasma. Transmitidos mecanica o biológica/ x garrapatas o x moscas picadoras. Historia clínica: Signos: NO hemoglobinemia ni hemoglobinuria. Dx. de laboratorio x técnica diagnostica de inmunofluorescencia indirecta de anticuerpos (IFI),
  • 23.
    Anaplasmosis: Transmisión • Portres métodos diferentes: El primero de forma biológica, cuando los eritrocitos infectados son ingeridos por las garrapatas, y la rickettsia se replica dentro del intestino de la garrapata y las glándulas salivales, y posteriormente, se transmite de las garrapatas a los rumiantes.
  • 24.
    Anaplasmosis transmisión Un segundométodo, es la forma mecánica, que surge cuando los eritrocitos infectados son transferidos de ganado portador a susceptible por moscas picadoras o fómites con sangre contaminada, incluyendo agujas o instrumentos quirúrgicos, también en procesos como identificación con orejeras, descornado y equipos de castración.
  • 25.
    Anaplasmosis: transmisión La transmisióntransplacentaria ocurre cuando los eritrocitos infectados se mueven a través de la placenta en el útero a sus terneros. Período de incubación: 30 días. Sigue con fase aguda febril de 1 semana Tratamientos: vacunas:
  • 28.
    Ehrlichiosis canis Enfermedad tropicalaguda a crónica de bovinos, equinos, ovinos y perros(hombre). Requiere de vectores (garrapatas) . Período de Incubación: 2 a 3 semanas. . Síntomas: Eritema petequias y hemorragias conjuntivales, mucosa gingival y epistaxis. Anemia variable.
  • 29.
    Ehrlichiosis canis Dx delaboratorio • Trombocitopenia, leucopenia y valores elevados de coagulación. • Mórula de E. canis en monocitos en un frotis sanguíneo en tinción Diff-Quick. • Con técnica PCR (reacción cadena de polimerasa). controles hematológicos, así como pruebas de detección del parásito, (IFA o PCR), después de finalizar el tratamiento,
  • 30.
    Ehrlichiosis granulocítica equina Causadapor una rickettsia llamada Anaplasma phagocytophila (anteriormente conocida como Ehrlichia equi). Es un coco Gram-negativo con tropismo hacia los granulocitos (neutrófilos y eosinófilos). Síntomas: fiebre, anorexia, petequias, letargo, edema de los miembros, abdomen ventral y tórax, ataxia, ictericia y restricción del movimiento.
  • 31.
    Ehrlichiosis granulocítica equina Elperiodo de incubación: va de 10 a 20 días. La enfermedad en general suele ser auto limitante en caballos que no reciben tratamiento, aunque en ocasiones, puede ser fatal. La severidad de los signos clínicos varía con la edad, en caballos menores de 3 o 4 años, los signos son menos evidentes y el edema de las extremidades es mínimo. Se pueden infectar caballos de cualquier edad. La enfermedad es contagiosa y con frecuencia se afectan varios animales dentro de todo un grupo de caballos. .
  • 32.
    Ehrlichiosis granulocítica equina Latransmisión: x garrapatas del género Ixodes. Diagnóstico: Historia del animal (si tuvo garrapatas). Los signos clínicos que presenta. Las anormalidades hematológicas y La demostración de los cuerpos de inclusión característicos en al menos 3 células blancas de una tinción sanguínea. Los cambios sanguíneos incluyen trombocitopenia, anemia y leucopenia y cuerpos de inclusión.
  • 33.
    Hemoparásitos: Impacto económico Pérdidas directas: morbilidad y mortalidad de animales y reducción en la producción de carne y leche.  Pérdidas indirectas x tratamientos y el establecimiento de medidas de control.  Restricciones para la comercialización de productos.= comercio internacional( los residuos de medicamentos= inocuidad de alimentos).
  • 34.
    Conclusiones El diagnóstico parasitológicode hemoparásitos en bovinos implica unos retos y procesos que incluyen :  Adecuada recolección de muestras en el campo,  Su posterior envío al laboratorio (donde se realizan diversos procesos) y  La correcta interpretación diagnóstica para así lograr = diagnóstico etiológico.  Una apropiada intervención en el campo, manejo, incluyendo pastoreo y transporte.
  • 35.
    Conclusiones El laboratorio esuna herramienta imprescindible para entender la problemática y epidemiología de los hemoparásitos de los bovinos en sistemas de producción en el trópico. Un diagnóstico acertado, depende en gran medida de la calidad de la recolección de la muestra así como de una apropiada descripción de la enfermedad presente en el campo. Ojo! Siga los protocolos para una adecuada recolección y envío de muestras al laboratorio.
  • 36.
    Conclusiones El La babesiosisse puede erradicar mediante la eliminación de las garrapatas de los huéspedes. En EE. UU esto se logró mediante el tratamiento del ganado bovino cada 2 o 3 semanas con acaricidas.
  • 37.
    Bibliografía M. Cordero delCampillo y otros. Parasitologia veterinaria. Mc Grawuhil Interamericana 2.001 G.M. Urquhart y otros. Parasitología veterinaria. Editorial Acribia S.A.2.001 Benavides O.E. Consideraciones sobre Babesiosis y anaplasmosis; Revista Acovez. 1986 http://www.oie.int/doc/ged/D3006.PDF http://www.slideshare.net/EVBenavides/hemoparsitos-y- reproduccin-bovina http://revistas.lasalle.edu.co/index.php/ca/article/view/1316/1 202 http://www.monografias.com/trabajos43/erlichiosis/erlichiosis2.shtml
  • 38.
    Bibliografía http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/babesiosis_bovina.p df http://www.oie.int/es/normas-internacionales/codigo- terrestre/acceso-en-linea/ Queensland Department ofPrimary Industries and Fisheries (DPIF). Making Blood Smears for Tick Fever Diagnosis http://www.dpi.qld.gov.au/cps/rde/dpi/hs.xsl/4790_6241_ENA_HT ML.htm Queensland DPIF. How to Make Organ Smears for Tick Fever Diagnosis http://www.daff.qld.gov.au/4790_6224.htm The Merck Veterinary Manual http://www.merckvetmanual.com/mvm/index.jsp United States Animal Health Association. Foreign Animal Diseases http://www.aphis.usda.gov/emergency_response/downloa ds/nahems/fad.pdf World Organization for Animal Health (OIE) http://www.oie.int