Caso clínico
Bacteriano
Jennifer Sarmiento Diaz
Sebastián Lizaraso
Se tomo la muestra en el centro clínico veterinario de la
UCC.
• Canino- Raza Bulldog
• 9 meses de edad
• 18.5 kg
• Hembra
 Consulta por Control dermatológico de:
 Observación:
• Zonas alopécicas con Abscesos
 Diagnostico:
• Pioderma
• Toma de muestra con un hisopo de uno de los
abscesos, y se siembra en un caldo BHI (incubación
por 24 horas, 28-37°C.
• 24horas después
Se encuentra con una
coloración turbia en la base
del tubo.
Como se puede Observar.
• Se procede a hacer siembra por agotamiento con estrías
del caldo en AGAR SANGRE.
• Se incuba por 24horas
• 24 horas después, se identifican las colonias separadas.
• Beta Hemolíticas.
• Colonias Blanco- grisáceas,
lisas, no pigmentadas y
pequeñas .
• Se procede hacer tinción de Gram, en la colonia de
interés.
• Se observa la placa por el microscopio:
• Staphylococcus
• Gram positivos
• Se hace repique en agar mackonkey, se deja en
incubación
• Se observa si es lactosa positivo o negativo.
• No hay crecimiento.
• No fermenta lactosa.
NEGATIVO
• Montamos el kit de prueba bioquímica: Crystal BBL para
Gram (+), Guiándonos por video.
• Se procede a incubar a 28°C por 18 horas
• Se procede hacer el Antibiograma.
Vancomicina (VA 30)
Tetraciclina
(TE) 30
Clindamicina
(DA) 2
Cephradine
(CE) 30
Amikacina
(AK) 30
Gentamicina (CN) 10
• Se retira y se procede a leer según la carta de colores y se
digita en el programa de lectura en el Software del laboratorio
clínico
Resultados: 0,997%
• Staphylococcus intermedium
• Lectura del antibiograma
Vancomicina (VA 30)
Tetraciclina
(TE) 30
Clindamicina
(DA) 2
Cephradine
(CE) 30
Amikacina
(AK) 30
Gentamicina (CN) 10
Staphylococcus intermedium
Amikacina (AK) 30 Resistencia intermedia 16mm
Vancomicina (VA 30) Resistencia intermedia 12 mm
Cephradine (CE) 30 Resistente 0mm
Gentamicina (CN) 10 Resistente 10mm
Tetraciclina (TE) 30 Resistente 0mm
Clindamicina (DA) 2 Resistente 0mm
Staphylococcus intermedium
Estos microorganismos son habitantes normales de la nasofaringe y la
piel de los carnívoros y rara vez en el hombre.
Produce en perros y en menor medida gatos diferentes procesos
patológicos, como abscesos e infecciones de heridas esporádicas y
quirúrgicas, PIODERMA, dermatitis pustular, otitis(en combinación con
otros patógenos), piométra, mastitis, infecciones oculares y de vías
urinarias.
Este microrganismo oportunista, normalmente no patógeno y que
solo produce una infección cuando las defensas del huésped
están disminuidas.
Por lo tanto esta bacteria, pudo causar esta infección al disminuir
la resistencia de la piel por diversos factores como:
• la falta de limpieza de piel o la limpieza excesiva;
• las afecciones pruriginosas, que obligan a los animales a
rascarse.
• heridas cutáneas. Etc…
Bibliografía
• Manual de microbiología (S. Vadillo, S. Piriz, E.
Mateos)
• Elementos de a microbiología Veterinaria (p.j.
Quintanilla, B.K. Markey)
• Tratado de microbiología veterinaria
• Bacteriología y microbiología Veterinaria (GR.
Carter, M.M. Chengappa)

Caso clínico de bacteriano- _S. intermedius_

  • 1.
  • 2.
    Se tomo lamuestra en el centro clínico veterinario de la UCC. • Canino- Raza Bulldog • 9 meses de edad • 18.5 kg • Hembra  Consulta por Control dermatológico de:  Observación: • Zonas alopécicas con Abscesos  Diagnostico: • Pioderma
  • 4.
    • Toma demuestra con un hisopo de uno de los abscesos, y se siembra en un caldo BHI (incubación por 24 horas, 28-37°C. • 24horas después Se encuentra con una coloración turbia en la base del tubo. Como se puede Observar.
  • 5.
    • Se procedea hacer siembra por agotamiento con estrías del caldo en AGAR SANGRE.
  • 6.
    • Se incubapor 24horas • 24 horas después, se identifican las colonias separadas. • Beta Hemolíticas. • Colonias Blanco- grisáceas, lisas, no pigmentadas y pequeñas .
  • 7.
    • Se procedehacer tinción de Gram, en la colonia de interés.
  • 9.
    • Se observala placa por el microscopio:
  • 10.
  • 11.
    • Se hacerepique en agar mackonkey, se deja en incubación
  • 12.
    • Se observasi es lactosa positivo o negativo. • No hay crecimiento. • No fermenta lactosa. NEGATIVO
  • 13.
    • Montamos elkit de prueba bioquímica: Crystal BBL para Gram (+), Guiándonos por video.
  • 14.
    • Se procedea incubar a 28°C por 18 horas
  • 15.
    • Se procedehacer el Antibiograma.
  • 16.
    Vancomicina (VA 30) Tetraciclina (TE)30 Clindamicina (DA) 2 Cephradine (CE) 30 Amikacina (AK) 30 Gentamicina (CN) 10
  • 17.
    • Se retiray se procede a leer según la carta de colores y se digita en el programa de lectura en el Software del laboratorio clínico Resultados: 0,997% • Staphylococcus intermedium
  • 18.
    • Lectura delantibiograma Vancomicina (VA 30) Tetraciclina (TE) 30 Clindamicina (DA) 2 Cephradine (CE) 30 Amikacina (AK) 30 Gentamicina (CN) 10
  • 19.
    Staphylococcus intermedium Amikacina (AK)30 Resistencia intermedia 16mm Vancomicina (VA 30) Resistencia intermedia 12 mm Cephradine (CE) 30 Resistente 0mm Gentamicina (CN) 10 Resistente 10mm Tetraciclina (TE) 30 Resistente 0mm Clindamicina (DA) 2 Resistente 0mm
  • 20.
    Staphylococcus intermedium Estos microorganismosson habitantes normales de la nasofaringe y la piel de los carnívoros y rara vez en el hombre. Produce en perros y en menor medida gatos diferentes procesos patológicos, como abscesos e infecciones de heridas esporádicas y quirúrgicas, PIODERMA, dermatitis pustular, otitis(en combinación con otros patógenos), piométra, mastitis, infecciones oculares y de vías urinarias.
  • 21.
    Este microrganismo oportunista,normalmente no patógeno y que solo produce una infección cuando las defensas del huésped están disminuidas. Por lo tanto esta bacteria, pudo causar esta infección al disminuir la resistencia de la piel por diversos factores como: • la falta de limpieza de piel o la limpieza excesiva; • las afecciones pruriginosas, que obligan a los animales a rascarse. • heridas cutáneas. Etc…
  • 22.
    Bibliografía • Manual demicrobiología (S. Vadillo, S. Piriz, E. Mateos) • Elementos de a microbiología Veterinaria (p.j. Quintanilla, B.K. Markey) • Tratado de microbiología veterinaria • Bacteriología y microbiología Veterinaria (GR. Carter, M.M. Chengappa)