SALUDFARMA

1. FACULTAD DE MEDICINA HUMANA
ESCUELA DE FARMACIA Y BIOQUIMICA
UNIVERSIDAD PRIVADA SAN PEDRO
FARMACONOGSIA
DOCENTE: Ernesto Acaro
INTEGRANTES:
Marcela Díaz Pimentel
Jaime Raúl Pecho Cabanillas
Sonia Pérez Eslachin
Cristina Angeles Zalasar
…………………………………………

2. CONTENIDO
I. INTRODUCCION................................................................................................................. 3
II. MARCO TEORICO. ............................................................................................................ 4
III. MATERIALES.................................................................................................................10
IV. PROCEDIMIENTOS ........................................................................................................11
V. RESULTADOS....................................................................................................................13
VI. DISCUSIÓN...................................................................................................................15
VII. CONCLUCION................................................................................................................16
VIII. BIBLIOGRAFIA...............................................................................................................17
IX. ANEXOS........................................................................................................................18
...............................................................................................................................................18

3. I. INTRODUCCION
De la práctica de recolección de plantas, del pueblo SAN JERONIMO
DE SURCO, hemos recolectado dos plantas oriundas del lugar como es LAS HOJAS DE
CHIRIMOYA Y YERBA SANTA en cual hemos realizados los procedimientos de
identificación de metabolitos, del mismo modo hemos realizado estudios y investigación
ancestral del uso doméstico que le daban los lugareños a estas plantas con propiedades
medicinales.
Realizado estos procesos, optamos por concluir y dar forma farmacéutica a estos
principios activos de cada planta procesada, resultando en un jarabe anti estreñimiento
regulador de la motilidad intestinal esto debido a propiedades medicinales de las hojas de
chirimoya; otro lado preparamos una crema antinflamatoria del extracto hidroalcoholico de
yerba santa, del mismo modo queremos con esto incentivar al uso de estas plantas de
utilidad para nuestros beneficios.

4. II. MARCO TEORICO.
1. ANNONA CHERIMOLA
CARACTERÍSTICAS BOTÁNICAS
Algunosde losaspectosde la especie Annona cherimola Millerrelacionadosconlasistemáticason
lossiguientes :
Reino:Vegetal
Subreino:Embriophyta
División:Spermatophyta
Subdivisión:Angiospermae
Clase:Dicotyledoneae
Orden: Ranales
Suborden:Magnoliales
Familia:Annonaceae
Subfamilia:Annonoideae
Género:Annona
Especie:Annonacherimola Miller

5. Los beneficios de lachirimoya
La chirimoya se puede considerar como una fruta agraciada desde un punto de vista dietético y
nutricional. Además, por su aroma, sabor y color blanco puro, nos da garantía de lo higiénica que
es. No necesita de ningún tratamiento culinario para ser consumida, ya que se come tal cual.
- A veces, en personas que padecen estreñimiento y consumen esta fruta por primera vez,
aparecen alteraciones intestinales. En estos casos, el individuo suele dejar inmediatamente de
tomarlaal creerque le sientamal,yloquerealmente estáhaciendolachirimoyaesayudaracorregir
suproblemaintestinal.Estareacciónintestinalse intensificasi se consumelachirimoyaenel postre
tras una comida muy copiosa.
- Posee ensucomposiciónpoderosasenzimasque autodigierenlapulpa,inclusosinlanecesidadde
jugos y enzimas corporales,por ello es una fruta de fácil digestiónlo que la hace muy aconsejable
en personas débiles, convalecientes, ancianos, en dispepsias y muy especialmente en niños y
embarazadas.
- Tiene efectosaciante yreguladordel nivel de glucosaen sangre,ya que lafibraque posee, ejerce
influencia intestinal y dilata en el tiempo la asimilación de los azúcares. Por ello si tomamos
chirimoyas, tardaremos más tiempo en sentir hambre.
- También su contenido en fibra le confiere propiedades laxantes.
- Al ser pobre en grasas y tener una fibra con un efecto intestinal muy beneficioso (arrastra el
colesterol malo y absorbe al mismo tiempo ácidos biliares y regula la flora intestinal), reduce los
niveles de colesterol.
- En pediatría tiene aplicaciones dietéticas (en forma de purés o zumos) debido a su contenido en
minerales(calcio,fósforo,hierro),vitaminas(grupoB, C, A), proteínasy azúcares. Por elloesmuy
aconsejable en niños en época de crecimiento o en caso de enfermedades crónicas.
- Por su contenido en vitamina C facilita la curación de numerosas enfermedades reumáticas,
artríticas,digestivas (enteritisygastritis), ademásde ejerceracciónantioxidante ysermuyútil para
combatirresfriados.Estavitamina,asuvez,intervieneenlaformaciónde colágeno,huesos,dientes,
glóbulosrojosyfavorece laabsorciónde hierrode los alimentos y la resistencia a las infecciones.

6. - Al ser esta fruta fuente de vitamina A y C tiene efecto antioxidante, importante aliado en el
mantenimiento de juventud y belleza.
- Paradójicamente, la chirimoya es recomendable también en dietas de adelgazamiento, pues
tiene un efecto saciante y regulador del nivel de glucosa en sangre por la fibra que posee, la cual
ejerce influencia como laxante intestinal a la vez que dilata en el tiempo la asimilación de los
azúcares. No obstante, en estos casos es aconsejable tomar frutas de pequeño tamaño.
- Por su bajo aporte en sodio, riqueza en potasio y poca grasa es aconsejable para personas con
hipertensión arterial o alteraciones cardiacas o de vasos sanguíneos.
- Al ser fuente de potasio debentener cuidadolas personas con insuficiencia renal,pero por otro
lado, será beneficioso para los que tomen diuréticos que eliminen potasio.
- Loselementosmineralesde lachirimoya,lahacende granutilidadparacoadyuvarenlosprocesos
de recuperación de un sinnúmero de dolencias.Así, aporta hierro, por lo que es adecuada para
personascon anemia;calcio,el cual es de ayuda para personas con descalcificaciónuosteoporosis
y fósforo, que contribuye a reforzar la memoria de estudiantes y ancianos.
- Posee acción tónica impidiendo así decaimiento y la fatiga, evitando depresiones.
- A esta fruta se le atribuye también una acción equilibradora del sistema nervioso, por lo que
constituiríaunexcelente ansiolíticoytranquilizante,muyadecuadoparael tratamientode personas
compulsivas.
- Por último,cabe destacarque algunosproductosextraídosde lassemillasde lachirimoyahansido
aplicadosconéxitoeninvestigacionesparael tratamientode piojos,disentería,cefalalgias(dolores
de cabeza), gota y cálculos.

7. 2. YERBA SANTA
Flores de Cestrum elegans
Taxonomía
Reino: Plantae
Subreino: Tracheobionta
División: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Orden: Solanales
Familia: Solanaceae
Subfamilia: Cestroideae
Tribu: Cestreae
Género: Cestrum

8. La hierba santa, cuyo nombre científico es Cestrum hediondinum D., es una planta silvestre que
enArequipalaencontramosenlosdistritosde Sabandía,Characato,Chiguata,Mollebayayalolargo
de las riveras del río Chili; es un arbusto muy ramificado, de olor desagradable, de hojas elípticas
lanceoladas, florestubulosas de color verdusco-amarillento. El fruto es una baya ovoide,violácea-
negrusca, dispuesta en racimos, que presenta un colorante que es la mezcla de cinco compuestos
antociánicos al estado de glicósidos.1
Debido a su estructura, los compuestos antociánicos pueden ser usados como ligandos en la
coordinaciónde ionesmetálicos,porloque ladiversidadde coloresenlasfloresesexplicadaporla
formaciónde quelatosentre elmetalylasal flaviliode colorrojode laantocianina.Losmetalesmás
comunesencomplejoscon antocianinasreportadosson:Sn,Cu, Fe,Al, Mg, y K 2. Asimismo,se ha
demostradoque enel vino,tantolosantocianoscomolostaninospuedenunirse pormediode una
reacciónen la que interviene el acetaldehído.Estoda lugar a productos enlazadosporpuentesde
etilo (T-etil-T), aductos de tanino-antocianos (T-etil-A) y antocianos entre sí (A-etil-A).3
Tomando en consideración lo anterior se planteó el objetivo de polimerizar los compuestos
antociánicos presentes en el colorante de la hierba santa (Cestrum hediondinum, D.) y probar su
aplicación en la adsorción de iones aluminio.
PARTE EXPERIMENTAL
La materia prima fue los frutos maduros de la especie vegetal Cestrum hediondinum, D. "hierba
santa".Lamuestrafue recolectadaentre lassiete ydiezhorasenel distritode Characato –Arequipa,
en latitud(º) -16,40; longitud(º) -71,52 y elevación(msnm) 2413, siendolatemperaturapromedio
de 20 ºC.
Extracción de antocianinas por maceración simple en refrigeración a 4 ºC
Se pesó100 gramos de hollejoestabilizadosecoypulverizadoyse extrajocon1000 mL de solvente
etanol:agua 70:30, por 48 horas. Terminado el tiempo de maceración, se decantó y se realizó la
filtración al vacío utilizando para los lavados porciones etanol-agua. El filtrado fue concentrado a
una temperatura no mayor a 30 ºC para evitar la degradación.4
Separación por cromatografía en columna de los compuesto antociánicos
20 mL de lasoluciónconcentradadel filtradose mezclaron20gde sílicagel 60 (0,063-0,200 mm). La
mezclafue secadaa temperaturaambiente,pulverizadaenunmorterode porcelanaycolocadaen
unacolumnacromatográfica;previamente esempacadaconsílicagel ysaturadaconel propan-2-ol.
Se eluyó con propan-2-ol, etanol absoluto, etanol al 98% y agua destilada y se colectó diferentes
fracciones.
Caracterización por espectroscopía UV-VIS de antocianinas; barrido espectral de 200-800 nm

9. Se pesó 0,01 g de muestra proveniente de las fracciones colectadas y se disolvió en 10 mL de
metanol espectroscópico Uvasol®(Merck),adicionando3gotasde soluciónacuosade HCl al 50%, y
se realizó el barrido espectral de 200 a 800 nm, previa calibración con el blanco.
Espectroscopía UV-Vis con el empleo de reactivos diagnósticos
Se empleó metóxido de sodio, tricloruro de aluminio, tricloruro de aluminio/ácido clorhídrico y
acetato de sodio, tal como lo indica la literatura.5
Caracterización por espectroscopía de infrarrojo (IR) de las antocianinas
Los espectrosfueronregistradosenespectrofotómetroscontransformadade FourierPerkin- Elmer
a partir de muestras sólidas (Universidad Nacional Mayor de San Marcos).
Síntesis de polímeros
Se mezcló20 g de antocianina,3,5g de una soluciónacuosade formaldehídoal 37% de purezay 50
mL de metanol;lamezclase calientaareflujoenunbañomaríacon movimientohastalaformación
de una soluciónhomogénea;luegose añade 1 g de ácidooxálicoy se calientapor1 hora; se añade
metanol (50 mL) y se prosigue conel calentamiento1hora más. Luegose filtraylavael precipitado
con etanol.
Caracterización del polímero
Se determinólosgruposfuncionalesporespectroscopíaIRylasolubilidadporlavariacióndelíndice
de refracción del solvente.
Se colocó 0,01 g del polímero en un tubo de ensayo provisto de tapa al que se añade 2,0 mL de
disolvente. Se agita continuamente y se mide el índice de refracción del líquido; se utilizó un
refractómetro Abbé.6
Caracterización estructural del polímero: Microscopía electrónica de barrido
La muestra fue metalizada con oro. La observación punto por punto fue realizada con un
microscopio electrónico de barrido, el SEMXL20 de PHILIPS, equipado con detector de electrones
retrodispersadosymicroanalizadorde difracciónde rayos X por energía dispersivaEDAXDX-4i del
Centro de Microscopía electrónica de la UNSA.
Pruebas de adsorción de iones metálicos aluminio (III) por interacción sólido- líquido
Se colocó en contacto 10 mL de una disolución metanólica de AlCl3 0,2 M preparada a partir de
triclorurode aluminioanhidro,con0,1gde polímeroatemperaturaambiente durante24horascon
agitaciónconstante;luegoel polímeroesfiltrado,lavadoconmetanol ysecado,parasuanálisispor
espectroscopía IR y SEM.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN

10. Separación por cromatografía en columna de los compuestos antociánicos
Se obtuvo seis fracciones codificadas como A, B, C, D, E, F. La fracción D eluída con etanol de 98º
muestrala mayor concentraciónde compuestosantociánicos.SiendolafracciónA y D inestablesy
la F insoluble en metanol.
A continuaciónse veránlosresultadoscorrespondientesalafracciónCyal precipitadode lafracción
A.
III. MATERIALES
A. MATER IALES DE LABORATORIO Y OTROS
• Mechero
• Matraz Erlenmeyer
• Tubos de ensayo
• Gradilla
• Corchos para tubos de ensayo
• Probeta
• Vasos de precipitación
• Pipetas
• Soporte
• Embudo
• Papel filtro
• Otros
B. EQUIPOS
• Balanza
• Molino
• Estufa de secado
• Cocina
C. REACTIVOS
1) Reactivo de lugol
2) Reactivo de Mayer
3) Reactivo de Borntrager

11. 4) Reactivo de Lieberman
5) Reactivo de Shinoda
6) Reactivo de Cloruro férrico
7) Agua destilada
8) Diclorometano
9) Alcohol metanolico
10) Acido clorhídrico
11) Kll
12) Lññ
13) Lññ
IV. PROCEDIMIENTOS
TAMIZAJE FITOQUÍMICO
FUNDAMENTO: Se basa en pruebas preliminares sencillas y rápidas que permiten
detectar cualitativamente la presencia de determinados grupos de compuestos. Se
ayudan de la micro química para evidenciar estos grupos de constituyentes
mediante formación de precipitados, coloraciones, etc. Estas reacciones se
caracterizan son selectivas para las clases o grupos de compuestos que se
investigan, son simples y rápidas, detectan la mínima cantidad posible y utilizan
un mínimo de equipo de laboratorio
A. LIMPIEZA Y DESECACIÓN DEL MATERIAL VEGETAL
 Se limpian todas las partes las hojas y se eliminan los cuerpos extraños.
 Se cortan en pedazos pequeños de 1 - 3 cm.
 Se somete a un proceso de secado en una estufa por 30 minutos a 95Cº
 Se tritura las plantas secas hasta obtener una granulometría de 2 mm.
B. OBTENCIÓN DE LOS EXTRACTOS
Estando ya seca la muestra es sometida a cuatro extracciones en reflujo por 15
minutos. Cada extracto al 10%: alcohólico, diclorometano, acuoso y acuoso acido. Una

12. vez obtenidos los extractos se les coloca en un matraz para su identificación de
metabólitos secundarios respectivamente.
C. ANÁLISIS FITOQUÍMICOS CUALITATIVOS
1. Ensayo de Mayer
A la solución ácida se le adiciona una pizca de cloruro de sodio en polvo, se agita
y se filtra. Al filtrado adicionar 2 ó 3 gotas de la solución reactiva de Mayer. Tras
observación se reporta de la siguiente manera:
 Opalescencia (+)
 Turbidez definida (++)
 Precipitado abundante (+++)
2. Ensayo del cloruro férrico
Permite reconocer la presencia de compuestos fenólicos y/o taninos en un
extracto vegetal. Si el extracto de la planta se realiza con alcohol, el ensayo
determina tanto fenoles como taninos. A una alícuota del extracto alcohólico se le
adicionan 3 gotas de una solución de tricloruro férrico al 5 % en solución salina
fisiológica (cloruro de sodio al 0.9 % en agua). Si el extracto es acuoso, el ensayo
determina fundamentalmente taninos. A una alícuota del extracto se añade acetato de
sodio para neutralizar y tres gotas de una solución de tricloruro férrico al 5 % en
solución salina fisiológica, un ensayo de alcohol amílico, se mezclan las fases y se
deja reposar hasta que se separen carmelita o rojo; intenso en todos los casos.
3. Ensayo de Shinoda:
Permite reconocer la presencia de flavonoides. Si la alícuota del ex tracto se encuentra
en alcohol, se diluye con 1 mL de ácido clorhídrico concentrado y un pedacito de

13. cinta de magnesio metálico. Después de la reacción se espera 5 minutos, se
añade 1 mL El ensayo se considera positivo cuando el alcohol amílico se colorea de
amarillo, naranja, Si la alícuota del extracto se encuentra en agua, se procede
de igual forma, a partir de la adición del ácido clorhídrico concentrado.
4. Ensayo de Borntrager.
Es útil para detectar la presencia de quinonas. Si la alícuota no está en cloroformo
debe evaporarse el solvente en baño de agua y el residuo redisolverse en 1 mL
de cloroformo. Se adiciona 1 mL de hidróxido de sodio, hidróxido de potasio o
amonio al 5 %. Se agita mezclando las fases y se deja en reposo hasta su ulterior
separación. El ensayo es positivo cuando la fase acuosa alcalina (superior) se
colorea de rosado, en este caso se reporta (++) o rojo, para lo cual se reporta (+++).
V. RESULTADOS
Se presentan los procedimientos para el análisis cualitativo de las diferentes familias
de metabolitos en los procedimientos del 1 al 4. El estudio permitió establecer la
presencia de las siguientes familias de metabolitos secundarios en la planta
Erythoroxylum: en el extracto acuoso: alcaloides, taninos, flavonoides y quinonas; en el
extracto diclorometano: alcaloides; en el extracto metanolico: taninos, flavonoides y
alcaloides; en el extracto acuoso acido: alcaloides. Con los resultados obtenidos se
observó que los métodos y técnicas utilizadas en la identificación de familias de
metabolitos secundarios de la planta Erythoroxylum coca son realizables con las
condiciones, materiales y equipo disponible en nuestro medio; que la técnica de reflujo es
la mejor para obtener los extractos y que realizar la extracción de los metabolitos
secundarios de la Erythoroxylum coca. En este estudio se evidencia que no hay
presencia de metabolitos secundarios de las familias de: en el extracto acuoso: almidón y
saponinas; en el extracto diclorometano: triterpenos y/o esteroides.

14. TABLA DE SOLUBILIDAD 1°
Cestrum elegans
VALORACION
EN (+) OBSERVACION OTRAS
AGUA DESTILADA + PRESIPITADO
ETANOL ++ LP
CLOROFORMO +++
METANOL +++ LP
TABLA DE COMPONENTES O METABOLITOS
POR REACTIVO 2°
REACTIVO COLORACION VALORACION EN
(+)
OBSERV. IDENTIFIC.
DE MET.
1 FELHING B SIN CAMBIO --- SIN CAMBIO NEGATIVO
2 FELHING A SIN CAMBIO ----- SIN CAMBIO NEGATIVO
3 MOLISH SIN CAMBIO -------- SIN CAMBIO NEGATIVO
8 BRAGENDORFF VERDE ++ CAFE LEVE DE
ALCALOIDES
9 HIDROXIDO DE Na SIN CAMBIO ------ SIN CAMBIO NEGATIVO
10 BURCHAD VERDE + AMARILLO VER. LEVE
ESTEROIDES
12 SHINODA ROJO +++ LADRILLO FLAVONOIDES
13 NINHIDRINA SIN CAMBIO ----- SIN CAMBIO NEGATIVO
14 MAYER SIN CAMBIO -------- SIN CAMBIO NEGATIVO

15. VI. DISCUSIÓN
Las hojas de coca contienen alcaloides, tanino y aceites esenciales. Los alcaloides se
distinguen en dos grupos: los derivados de la tropinona (cocaína, truxilina,
tropacocaína, cinamilcocaína) y los derivados del pirrol (higrina, cuskigrina), solubles
en agua y éter, y no anestésicos. Las propiedades anestésicas y estupefacientes de
las hojas se deben principalmente a la cocaína. La cocaína (benzoil-metilecgonina)
tiene numerosas aplicaciones en farmacología y medicina,especialmente comoanestésico.
La presencia de oxígeno en la estructura determina que la sustancia sea un sólido blanco,
de sabor amargo y cristalizable. La ausencia de oxígeno en la estructura del alcaloide hace
que éste sea aceitoso, volátil u odorante. La mayoría de los alcaloides son insolubles
o muy poco solubles en agua, pero se disuelven bién en alcohol, éter, cloroformo u otros
solventes orgánicos. Se combinan con ácidos para dar sales, comportándose entonces
como bases. En la diferencia de solubilidades de la base alcaloidea y de sus sales en agua
y en solventes orgánicos se basa el método de extracción, los alcaloides son
abundantes en ciertas Dicotiledóneas y en un reducido número de plantas:
Papaveráceas, Papilionáceas, Rubiáceas, Solanáceas. Los alcaloides a menudo son
solidos, cristalizables a veces coloreados, la mayoria de las veces dotados de poder
rotatorio. Los alcaloides se forman principalmente de diversos aminoacidos: el
triptófano, precursor del anillo del indol; la ornitina, precursor del núcleo pirrolidina (tabaco).
Su estructura química de los alcaloides es extremadamente variada.

16. VII. CONCLUCION
Los alcaloides están localizados en tejidos periféricos: corteza, raíces, hojas, frutos y
semillas, cumpliendo diferentes funciones ya sean de defensa contra parásitos o insectos o
alcaloides es bastante
variable estadependede lapresencia de oxígeno (sólidos cristalizables) o ausencia de la misma
(líquidos),su solubilidadestá en base a su forma libre (insoluble en agua, soluble enalcohol) o sal
(soluble enagua,solub
La identificación de los alcaloides se determina mediante reacciones de precipitación,coloración
a mediante métodosvolumétricos,
Liebermandionegativoesdecirnohaypresenciade alcaloides.Enel extractoacuosoal reaccionar
con lugol, espuma dieron negativos.

17. VIII. BIBLIOGRAFIA
 Mendoza,Estrella.El farmacéutico,éticaprofesionalymanejode medicamentos. En:
MedicamentosySaludPopular(Lima) 5(21):40-42. 1992.
 Shcawrtz,H. “The phaarmaceutical companiesandtheircritics”.In:International Health
and DevelopmentMar/Apr1989, pp.24-7.
 Abrahams,P.“Fdiscoveringhealthyprofits”.Finalcial Times,10Dec 1991, SectionIIIpIII
 Hart H.,Craine L. y Hart. D. Química Orgánica.McGraw Hill. Novenaedición.España.1997.
 McMurry, J. QuímicaOrgánica.Quintaedición,Thomsoneditores,México,2001
 Marcano, D. y M. Hasegawa“Fitoquímicaorgánica”UniversidadCentral de Venezuela,
Caracas 1991.

18. IX. ANEXOS