Este documento presenta los resultados de dos experimentos que estudian la actividad enzimática de la β-fructofuranosidasa. El primer experimento determina cómo varía la velocidad de la reacción catalizada por la enzima con diferentes concentraciones de sustrato sacarosa, calculando los parámetros de Michaelis-Menten Km y Vmax. El segundo experimento mide el efecto del inhibidor no competitivo yodo acetato en la velocidad de la reacción a distintas concentraciones de sacarosa, observando una disminución proporcional de K
Cuando las moléculas de una especie química, interactúan con la energía radiante de la región visible y ultravioleta, se puede llevar a cabo una absorción, que proporciona al electrón la energía necesaria para saltar al siguiente nivel energético del átomo. Se ha comprobado que el espectro de absorción es una función de la estructura completa de una sustancia; por ello es una propiedad altamente específica de la estructura molecular de la especie absorbente. Existen factores que influyen en los espectros obtenidos, por ejemplo: el solvente, pH, temperatura, etc., que se deben de tomar en cuenta en una determinación cuidadosa.
Esta monografía muestra información sobre el análisis de cuantitativo de la cinética de enzimas de sustrato único, para entender esta información primero se explica datos importantes sobre cinética enzimática. Esta monografía presenta algunos objetivos los cuales son: a) Explicar la cinética enzimática; b) Analizar la ecuación de velocidad y las características de las reacciones según el orden y la interacción enzima sustrato; c) Reconocer, explicar, relacionar, deducir y aplicar el análisis cuantitativo de la cinética de enzimas de sustrato único; d) Reconocer, explicar, deducir y aplicar la ecuación de Michaelis-Menten; e) Elaborar representaciones de Lineweaver Burk y otras representaciones; f) Mostrar la importancia clínica de enzimas en diagnóstico de patologías y control. Para buen entendimiento, primero se explica la importancia de las enzimas en los procesos metabólicos como responsables cinéticos de la conservación del equilibrio corporal; y con estos conceptos previos se inicia la monografía. Finalmente se cumplieron los objetivos mediante una exposición.
Hola querido lector, te traigo con este aporte las actividades de Laboratorio realizadas el ciclo 2016 II en la FAMURP, solucionarios a partir de la practica 3
Cuando las moléculas de una especie química, interactúan con la energía radiante de la región visible y ultravioleta, se puede llevar a cabo una absorción, que proporciona al electrón la energía necesaria para saltar al siguiente nivel energético del átomo. Se ha comprobado que el espectro de absorción es una función de la estructura completa de una sustancia; por ello es una propiedad altamente específica de la estructura molecular de la especie absorbente. Existen factores que influyen en los espectros obtenidos, por ejemplo: el solvente, pH, temperatura, etc., que se deben de tomar en cuenta en una determinación cuidadosa.
Esta monografía muestra información sobre el análisis de cuantitativo de la cinética de enzimas de sustrato único, para entender esta información primero se explica datos importantes sobre cinética enzimática. Esta monografía presenta algunos objetivos los cuales son: a) Explicar la cinética enzimática; b) Analizar la ecuación de velocidad y las características de las reacciones según el orden y la interacción enzima sustrato; c) Reconocer, explicar, relacionar, deducir y aplicar el análisis cuantitativo de la cinética de enzimas de sustrato único; d) Reconocer, explicar, deducir y aplicar la ecuación de Michaelis-Menten; e) Elaborar representaciones de Lineweaver Burk y otras representaciones; f) Mostrar la importancia clínica de enzimas en diagnóstico de patologías y control. Para buen entendimiento, primero se explica la importancia de las enzimas en los procesos metabólicos como responsables cinéticos de la conservación del equilibrio corporal; y con estos conceptos previos se inicia la monografía. Finalmente se cumplieron los objetivos mediante una exposición.
Hola querido lector, te traigo con este aporte las actividades de Laboratorio realizadas el ciclo 2016 II en la FAMURP, solucionarios a partir de la practica 3
La titulación potenciométrica es un método moderno de análisis químico que permite conocer la concentración del analito mediante un pHmetro, instrumento que posee un electrodo de membrana permeable que permite el paso de los iones de la especie que se quiere estudiar.
La titulación potenciométrica es un método moderno de análisis químico que permite conocer la concentración del analito mediante un pHmetro, instrumento que posee un electrodo de membrana permeable que permite el paso de los iones de la especie que se quiere estudiar.
Tecnicas instrumentales ejercicios numericos - 2.2 - contaminante en una be...Triplenlace Química
Se quiere determinar la concentración de un contaminante en una bebida empleando valores de absorbancia, a partir de una calibración con patrones externos. Para obtener los valores presentados en la tabla de la derecha, se analiza una serie de patrones de concentración conocida del contaminante. Cada patrón, por triplicado, da lugar a un valor de absorbancia que se mide, con respecto a un blanco (disolución que no contiene el analito), por medio de un espectrofotómetro UV-V.
Patrón / (µg/ml) Absorbancia (A)
5 0,0705 – 0,0703 – 0,0707
10 0,1743 – 0,1742 – 0,1743
20 0,3152 – 0,3155 – 0,3157
30 0,4953 – 0,4959 – 0,4959
40 0,7146 – 0,9634 – 0,7144
50 0,8730 – 0,8729 – 0,8728
60 1,0642 – 1,0640 – 1,0644
¿Son válidas todas las absorbancias? Si hubiera algún valor anómalo, rechazarlo. Representar los valores medios de absorbancia correctos frente a la concentración de los patrones del contaminante. Comprobar que la linealidad de los datos se verifica para todo el intervalo estudiado.
A partir de todos los valores aceptados, encontrar los parámetros estadísticos del calibrado: ordenada en el origen, pendiente y coeficiente de correlación y determinación.
Si la A correspondiente a una muestra problema (diluida 1:1) es de 0,5136, ¿cuántos microgramos del contaminante por mililitro contendrá la bebida?
Calibraciones, formas de calculo y materialesWilfredo Gochez
El proceso de la calibracion en Quimica Clinica es uno de los pasos mas criticos que define la calidad de los resultados en las pruebas.
Sin embargo en la literatura tradicional se encuentra muy poco material que explique de forma clara, precisa y facil como realizarlo de manera que los principiantes en esta materia comprendan de manera practica y teorica en que consiste la calibracion de las pruebas. Ademas la automatizacion de los analisis en quimica clinica han dotado a los laboratorios de modernos equipos de Quimica clinica, con caracteristicas modernas y de vanguardia, pero que aun necesitan de los criterios que el profesional en laboratorio clinic debera considerer para poder validar las calibraciones del equipo.
ROMPECABEZAS DE ECUACIONES DE PRIMER GRADO OLIMPIADA DE PARÍS 2024. Por JAVIE...JAVIER SOLIS NOYOLA
El Mtro. JAVIER SOLIS NOYOLA crea y desarrolla el “ROMPECABEZAS DE ECUACIONES DE 1ER. GRADO OLIMPIADA DE PARÍS 2024”. Esta actividad de aprendizaje propone retos de cálculo algebraico mediante ecuaciones de 1er. grado, y viso-espacialidad, lo cual dará la oportunidad de formar un rompecabezas. La intención didáctica de esta actividad de aprendizaje es, promover los pensamientos lógicos (convergente) y creativo (divergente o lateral), mediante modelos mentales de: atención, memoria, imaginación, percepción (Geométrica y conceptual), perspicacia, inferencia, viso-espacialidad. Esta actividad de aprendizaje es de enfoques lúdico y transversal, ya que integra diversas áreas del conocimiento, entre ellas: matemático, artístico, lenguaje, historia, y las neurociencias.
Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3.pdfsandradianelly
Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestra y el maestro Fase 3Un libro sin recetas, para la maestr
Cinética e Inhibición enzimática (laboratorio bioquimica)
1. Universidad de La Serena
Facultad de Ciencias
Departamento de Biología
Laboratorio Bioquímica General
Ingeniería en Alimentos
Alumna: Natalia Vargas Guzmán
Profesora: Carla Maturana Valdivia
I Semestre 2013
2. La concentración de sustrato determina la actividad enzimática
medida como la velocidad de la catálisis enzimática. Si la
concentración de la enzima se mantiene saturada, la
producción de producto será a una velocidad máxima.
8. En la inhibición competitiva, el inhibidor
compite con el sustrato por el sitio activo.
Km Aument
a
Vmax Constant
e
9. En la inhibición no competitiva el inhibidor
se une a la enzima en otro lado, no es su
sitio activo
Km
Vmax
Constant
e
Disminuy
e
10. En la inhibición acompetitiva el inhibidor se
une al complejo enzima-sustrato ya
conformado.
Cambio
proporcional en Km
y Vmax
11.
12. Objetivos:
- Estudiar la influencia de la concentración de sustrato en
la velocidad de una reacción enzimática.
- Calcular la constante de Michaelis-Menten.
Fundamento: Determinar de la actividad enzimática de
una preparación de β-fructofuranosidasa en presencia
de diferentes concentraciones de sacarosa como
sustrato.
13. Materiales:
• 8 tubos de ensayo
• Pipeta
• Baño termorregulador a 27°C
• Espectrofotómetro
• 8 Cubetas de espectrofotómetro
Reactivos:
• Solución Glucosa-Fructosa 0,01M
• Soluciones de sacarosa (distintas concentraciones)
• Reactivo DNS (inhibe o detiene la act. Enzimática)
• Buffer acetato
• Solución extracto de β-fructofuranosidasa con una
dilución que asegure un producto 5 moles/min.
14. Procedimientos:
1. Disponer serie de 6 tubos de ensayo con concentración creciente de
sacarosa.
2. Luego agregar :
- 1,5 mL Buffer acetato
- 0,5 mL solución enzima 1/2000.
3. Equilibrar a 27°C por 3 minutos (Agregar sacarosa 1 mL).
4. Dejar en baño a 27°C por 40 minutos.
5. Agregar 2 mL de DNS, enfriar.
6. Agregar 15 mL de Agua destilada
7. Medir absorbancia (540nm).
15. Resultados y Conclusiones
Para calcular la concentración de glucosa usaremos la ecuación de la
recta obtenida por la curva de calibración:
y = 0,183x - 0,0085
r² = 0,9992
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
1.8
2
0.00 2.00 4.00 6.00 8.00 10.00 12.00
Absorbanciaa540nm
Concentración Glucosa (mM)
Curva de calibración Glucosa-Fructosa por el Método
DNS
Abs =0,183 [Glucosa]-0,0085
[Glucosa] = Abs+0,0085
0,183
16. Abs =0,183 [Glucosa]-0,0085
[Glucosa] = Abs+0,0085
0,183
Reemplazamos la absorbancia de cada tubo
para calcular la concentración de glucosa.
Calcular concentración de sacarosa en reacción para cada
tubo:
C1 x V1 = C2 x V2
Concentración del tubo 1:
0,45M x 1 mL = C2 x 3 mL
C2 = 0,15 M Sacarosa en reacción
Para calcular la velocidad de la reacción:
V= [glucosa] tiempo de reacción: 40
minutos
tiempo reacción
17. Tabla: Valores obtenidos
Tubo
[sacarosa]
M
Absorbanci
a
[Sacarosa
en reacción]
M
[Glucosa] Velocidad de
reacción
(M/min)
1 0,45 2,95
0,15 16,1 0,40
2 0,3 3,07 0,1 16,8 0,42
3 0,2 3,01
0,066 16,49 0,41
4 0,1 2,04 0,033 11,2 0,28
5 0,05 1,42
0,0166 7,8 0,19
6 0,03 1,14 0,01 6,27 0,15
P 0,45 0,57
0,15 3,17 0,079
18. [sacarosa] M
Velocidad de reacción
(M/min)
0,45 0,40
0,3 0,42
0,2 0,41
0,1 0,28
0,05 0,19
0,03 0,15
Tabla datos gráfico Michaelis-Menten
Vmax
Km= Vmax
2
Vmax = 0,21
(M/min)
2
Km = 0,02 M
19. 0
0.05
0.1
0.15
0.2
0.25
0.3
0.35
0.4
0.45
0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12 0.14 0.16
Velocidad(M/min)
Concentración sacarosa (M)
Grafico Michaelis-Menten: Influencia de la concentración de
sacarosa sobre la velocidad de reacción catalizada por la
-fructofuranosidasa
Km
Vmax
Vmax
2
20. y = 0,0484x + 2,0082
R² = 0,9818
0
1
2
3
4
5
6
7
8
0 20 40 60 80 100 120
1/v(M/min)
1/[S] (M)
Grafico Lineweaver-Burk: Influencia de la concentración de
sacarosa sobre la velocidad de reacción catalizada por la
-fructofuranosidasa
21. 1/s 1/v
6,67 2,5
10 2,38
15,15 2,44
30,30 3,57
60,24 5,26
100 6,67
Tabla datos gráfico Lineweaver-Burk
y = 0,0484x + 2,0082
1 = 2,0082 (M/min)
Vmax
Km = 0,0484
Vmax
Vmax = 0,4979 (M/min)
1 = 41,49 (M)
Km
Km = 0,0241 (M)
22.
23. v/s v
2,67 0,4
4,2 0,42
6,21 0,41
8,48 0,28
11,45 0,19
15 0,15
Tabla datos gráfico Eadie-Hofstee:
y = -0,0245x + 0,5043
Km = 0,0245 (M) Vmax = 0,5043 (M/min)
24. Grafico Vmax (M/min) Km (M)
Michaelis-Menten 0,42 0,02
Lineweaver-Burk 0,49 0,024
Eadie-Hofstee 0,50 0,024
Observamos que los resultados obtenidos son
muy similares, gracias a los diferentes gráficos
podemos calcular la actividad enzimática y su
valores de Km y Vmax.
A mi parecer el gráfico mas eficiente es el de
Lineweaver-Burk ya que la actividad enzimática
representada de forma lineal facilita los cálculos.
25. Objetivos:
- Estudiar la acción de inhibidores no competitivos sobre la
velocidad de una reacción enzimática.
Fundamento: Determinar la velocidad de la hidrólisis de
sacarosa a diferentes concentraciones por la β-
fructofuranosidasa en presencia de una concentración
constante de yodo acetato.
26. Materiales:
• 14 tubos de ensayo
• Pipeta
Reactivos:
• Yodo acetato 0,001M
• Solución de Glucosa - Fructosa 0,01M
• Solución de sacarosa a diferentes concentraciones
• Reactivo DNS (inhibe o detiene la actividad enzimática)
• Buffer acetato pH=4,7 0,05 M
• Solución extracto β-fructofuranosidasa
27. Procedimientos:
Luego agregar:
- 1 mL Buffer acetato
Equilibrar a 27°C por 3 minutos.
Agregar 0,5 mL solución enzima 1/250.
Dejar en baño a 27°C por 5 minutos.
Agregar 2 mL de DNS a 100°C por 5 minutos (enfriar).
Agregar 15 mL de Agua destilada
Medir absorbancia (540nm).
Con inhibidor
Sin inhibidor
28. Abs =0,183 [Glucosa]-0,0085
[Glucosa] = Abs+0,0085
0,183
Reemplazamos la absorbancia de cada tubo
para calcular la concentración de glucosa.
Calcular concentración de sacarosa en reacción para cada
tubo:
C1 x V1 = C2 x V2
Concentración del tubo 1:
0,45M x 1 mL = C2 x 3 mL
C2 = 0,15 M Sacarosa en reacción
Para calcular la velocidad de la reacción:
V= [glucosa] tiempo de reacción: 40
minutos
tiempo reacción
Resultados y Conclusiones
Haremos los mismos
procedimientos pero ahora
calcularemos velocidad con
y sin inhibidor
29. Tabla valores
obtenidos
SIN INHIBIDOR CON INHIBIDOR
Tubo
[sacarosa]M
[Sacaros
a en
reacción
] M
Abs
[Glucosa
]
M
Velocida
d
(M/min)
Abs
[Glucos
a]
M
Velocida
d
(M/min)
1
0,45 0,15 2,46 13,51 2,70 2,95 9,85 1,97
2
0,3 0,1 2,05 11,25 2,25 3,07 8,10 1,62
3 0,2 0,066 1,67 9,19 1,83 3,01 6,88 1,37
4 0,1 0,033 0,87 4,77 0,95 2,04 4,67 0,93
5 0,05 0,0166 0,56 3,10 0,62 1,42 3,12 0,62
6 0,03 0,01 0,45 2,48 0,49 1,14 2,30 0,46
35. SIN INHIBIDOR CON INHIBIDOR
Km = 0,0186
Vmax
1 = 0,3016 (M/min)
Vmax
1 x 1 = 1
Vmax 0,0186 Km
1 = 16,21 (M)
Km
Km = 0,0178
Vmax
1 = 0,4385 (M/min)
Vmax
1 x 1 = 1
Vmax 0,0178 Km
1 = 24,63 (M)
Km
36. Gráfico Michaelis-Menten:
Vmax (M/min) Km (M)
Sin inhibidor 2,70 0,040
Con inhibidor 1,97 0,028
Observamos que en presencia del Inhibidor yodo
acetato , la Vmax y Km disminuye. Estamos en
presencia de un inhibidor acompetitivo ya que el
resultado es un cambio proporcional en la Vmax y Km
Gráfico Lineweaver-Burk:
Vmax (M/min) Km (M)
Sin inhibidor 3,32 0,061
Con inhibidor 2,28 0,040