El documento describe los métodos de diagnóstico de laboratorio para las infecciones parasitarias. Explica que el diagnóstico puede ser directo al visualizar la forma evolutiva del parásito o indirecto mediante la detección de sustancias o respuestas inmunes producidas por el parásito. Luego detalla los métodos de diagnóstico directo e indirecto para diferentes tipos de parásitos y ubicaciones, incluyendo exámenes de heces, sangre, tejidos y muestras de otras cavidades. Finalmente, explica en

1. Diagnóstico
WILMA STRAUSS ZEGADA
Docente Titular Emérito
Cátedra de Parasitología
FACULTAD DE CIENCIAS FARMACÉUTICAS Y BIOQUIMICAS
UNIVERSIDAD MAYOR DE SAN ANDRÉS
3

2. Para el diagnóstico de
las infecciones
causadas por parásitos
la selección de la
prueba de laboratorio
adecuada y la
interpretación de los
resultados, se basan
en la comprensión del
ciclo biológico del
parásito y de su acción
patógena en el
hospedador infectado
Diagnóstico de las parasitosis

3. Diagnóstico de
las enfermedades
parasitarias
Diagnóstico
Clínico
Y
Epidemiológico
Diagnóstico de
Gabinete
Diagnóstico de
laboratorio

4. Diagnóstico de laboratorio
Se visualiza
una de las
formas evolutivas
del parásito
Diagnóstico
Directo
Captación de
sustancias del parásito
y/o productos del huesped
como respuesta inmune
Diagnóstico
Indirecto
DIAGNÓSTICO
DE
LABORATORIO

5. Diagnóstico directo
Parásitos de
Cavidades
Cavidad
Intestinal
(heces fecales)
Cavidad
Pulmonar
(aspirado
bronquial)
Genitales
(exudados)
Tipo de muestra

6. Diagnóstico directo
Parásitos de
Sangre y
Tejidos
Piel y mucosas
(raspado o
aspirado de
lesión)
Órganos
(aspirado o
biopsia)
Sangre
(sangre venosa)
Tipo de muestra

7. Diagnóstico de parasitosis intestinales
El examen coproparasitológico consta de los
siguientes pasos:
⚫ Obtención de la muestra
⚫ Examen macroscópico
⚫ Examen microscópico que comprende el
examen directo en fresco y las técnicas de
concentración de los elementos parasitarios.

8. Obtención de la muestra
⚫ Se debe solicitar al paciente traer la muestra
en recipiente de vidrio o plástico con tapa de
rosca.
⚫ La muestra no debe contener agua u orina y
debe llegar al laboratorio en el menor tiempo
posible (media hora y máximo dos horas).
⚫ Si la muestra no será observada durante el
día se debe añadir una solución
conservadora (ej. Encuestas en población).

9. Examen
Coproparasitológico
Obtención de la muestra
en recipiente apropiado
Examen macroscópico
se observa la consistencia,
caracteres organolépticos,
restos alimenticios y
parásitos adultos
Examen microscópico
Consta del examen en fresco y
de una o dos técnicas de
concentración

10. Protozoarios
Huevos y larvas
Consistencia de las heces en relación con los parásitos
Formada
Semi
formada
Blanda
Líquida Trofozoitos
Quistes
Helmintos

11. Examen Microscópico
Elementos parasitarios
⚫ Trofozoitos y quistes
y ooquistes de
Protozoarios.
⚫ Huevos y larvas de
Helmintos.
⚫ Parásitos adultos
Elementos no parasitarios
⚫ Glóbulos rojos
⚫ Glóbulos blancos:
polimorfo nucleares,
eosinófilos, macrófagos
⚫ Cristales de Charcot-
Leiden
⚫ Levaduras
⚫ Células y fibras vegetales
⚫ Artefactos

12. Examen en fresco
⚫ El examen en fresco debe realizarse inmediatamente llega la
muestra al laboratorio para esto en un portaobjetos limpio y
desengrasado se coloca a la derecha una gota de solución salina y
a la izquierda una gota de solución de Lugol.
⚫ Con una varilla de vidrio o con un palillo de madera se toma una
pequeña porción de la muestra y se la diluye primero en la solución
salina y luego en la solución de Lugol, poniendo un cubre objetos
encima de cada preparación.
⚫ Se lleva al microscopio y se observa primero con aumento de X10 y
después con aumento de X40 recorriendo toda la superficie del
cubreobjetos.
⚫ Si se sospecha la existencia de trofozoitos se realiza la preparación
solo con solución salina utilizando platina caliente o bien colocar a
un costado del portaobjetos una moneda caliente ya que el calor
mantiene vivos a los trofozoitos.

13. Examen Directo en Fresco
Solución fisiológica
Solución de Lugol

14. Llevar al microscopio
Revisar cada preparación de esta manera, primero A y luego B
A
B
A Solución fisiológica B Solución de Lugol
7.5 cm
2.5 cm
22 mm x 22mm

15. Métodos de concentración
Examen coproparasitológico
METODOS
DE
CONCENTRACIÓN
MÉTODOS
DE
FLOTACIÓN
MÉTODOS
DE
SEDIMENTACIÓN
MÉTODOS
DIFÁSICOS

16. Métodos de Flotación
⚫ El fundamento de estos
métodos se basa en la
utilización de una solución de
mayor densidad que los
parásitos para realizar la
suspensión de las heces
fecales. Los parásitos por su
menor densidad suben a la
superficie de la solución de
donde pueden ser recuperados
para hacer una preparación
microscópica.

17. Concentración por Flotación

18. Métodos de Sedimentación
⚫ Se fundamentan en la
utilización de una solución
de densidad menor para
realizar la suspensión de las
heces fecales. Los parásitos
por su mayor densidad se
depositan en el fondo del
tubo y luego de desechar el
sobrenadante pueden ser
recuperados del sedimento
para hacer una preparación
microscópica.
Superficie
Sobrenadante
Sedimento

19. Concentración por Sedimentación
1
2
3
1 superficie
2 sobrenadante
3 sedimento

20. Métodos Difásicos
⚫ Utilizan para la suspensión de
las heces dos líquidos uno
polar y otro no polar. De esta
manera, los componentes del
bolo fecal se separan en
función a sus coeficientes de
partición difásica, Aquellos de
carácter no polar como grasas
y restos alimenticios van al
líquido sobrenadante (no
polar) y los parásitos se
decantan al líquido polar
quedando en el sedimento.

21. 1. sedimento
2. fase polar
3. interfase lipídica
4. fase no polar
Concentración por métodos difásicos

22. Técnicas especiales
⚫ En algunas parasitosis de localización
intestinal es necesario utilizar métodos
especiales para lograr mejores resultados
entre estos tenemos la Técnica de Graham
para Enterobiasis, las técnicas de recuento
de huevos de helmintos para establecer
cargas parasitarias y las de recuperación de
larvas y/o cultivo para obtención de larvas en
casos de Uncinariasis o Estrongiloidiasis.

25. Métodos de recuento de huevos de Helmintos

26. Método de Stoll o Stoll-Hausheer
⚫ Se basa en la saponificación, homogenización y
aclaración de las muestras por la solución 0,1N de
NaOH que actúa sobre las grasas de las heces las
saponifica, hace que los huevos de los helmintos sean
menos pegajosos, desinfecta y deodoriza la muestra.
⚫ La ventaja del método es que se pueden utilizar heces
blandas o liquidas y la desventaja que se requiere
material de laboratorio especial y es mas complicada
que la de Kato Katz.

28. Método de Stoll o Stoll Hausheer
El numero de huevos o larvas
Encontrados se multiplican por
100, si la materia fecal es dura.
200, si la materia fecal es pastosa
400, si la materia fecal es liquida

29. Material utilizado Depositar la muestra
Sobre el papel
Filtrar la muestra a través de
La malla
Llenar el circulo del plástico
Colocado sobre el porta
Retirar la placa plástica Colocar encima la laminilla
de celofán embebido el la
solución de verde malaquita
La muestra filtrada queda
En el portaobjetos
Extender la preparación y
presionarla sobre papel
absorbente
Técnica de Kato Katz (recuento de huevos)

30. Técnica de
Baermann
Embudo
Coladera con
muestra de heces
Agua tibia
Tripa de goma
Pinza de Mohr
Tubo de centrífuga
Fundamento: termo tropismo
e hidro tropismo de las larvas
Recuperación de larvas rhabditoides de Strongyloides stercoralis

31. Técnica de
Baermann
Recuperación de larvas rhabditoides de Strongyloides stercoralis

33. Coprocultivo de Harada Mori
Recuperación de larvas

34. Técnica de Harada mori (Coprocultivo)

35. FIN