GUÍA DE PRÁCTICA DE LABORATORIO EN CITOLOGÍA APLICADA

LABORATORIO DE CITOLOGÍA APLICADA 2022
1
UNIVERSIDAD MAYOR DE SAN ANDRÉS
FACULTAD DE CIENCIAS FARMACÉUTICAS Y BIOQUÍMICAS
CARRERA DE BIOQUÍMICA
CITOLOGÍA APLICADA
Dr. YOHEL JIMÉNEZ VELARDE
2022

2
CONTENIDO
REGLAMENTO DE LABORATORIO DE CITOLOGÍA APLICADA
DE LA EVALUACIÓN
NORMAS DE BIOSEGURIDAD PARA EL PERSONAL DEL LABORATORIO
DE CITOLOGIA APLICADA
PRÁCTICA N° 1 CITOLOGÍA DEL CUELLO UTERINO NORMAL
PRÁCTICA Nº 2 TÉCNICA ACONSEJADA PARA LA TOMA DE MUETRAS
DE FROTIS CERVICO-UTERINO.
PRÁCTICA Nº 3 FUNDAMENTOS Y MECANISMOS DE LA TÉCNICA DE
COLORACIÓN DE PAPANICOLAOU
PRÁCTICA Nº 4 FUNCIÓN OVÁRICA, EVALUACIÓN HORMONAL E
ÍNDICE DE PICNOSIS
PRÁCTICA Nº 5 CAMBIOS CITOLÓGICOS PRODUCIDOS POR
INFECCIONES
PRÁCTICA Nº 6 EL SISTEMA BETHESDA PARA IFORMAR LA
CITOLOGÍA CÉRVICO VAGINAL

3
INTRODUCCIÓN
El Laboratorio de Citología está diseñado para que el estudiante universitario se
familiarice con técnicas más comunes que se emplea corrientemente,
principalmente en laboratorios especializados en Citología como de
investigación. Tomando en cuenta de que el campo de actividad profesional
futura del estudiante de Bioquímica con Mención en Citología Aplicada puede
ser muy amplio, ya que se involucran dentro del plan general de estudios
muchas áreas de la ciencia. De acuerdo a este planteamiento, probablemente
algunos experimentos pueden resultar de mayor interés que otros. Durante los
primeros meses se aprenderá principalmente técnicas generales que son
comúnmente empleados en laboratorios citológicos. Finalmente en la medida
de las posibilidades mostraremos las pruebas que se utilizan para observar los
aspectos más finos de la Citología.
Actualmente los laboratorios de Citología ocupan un espacio de primera línea
como apoyo al Plan Nacional de Prevención, Control, Seguimiento y
Tratamiento de Lucha contra el Cáncer de la Mujer como un componente
horizontal del mismo. El éxito de los nuevos desafíos para mejorar la eficacia
del Programa, dependerá en gran parte de la calidad y del desempeño del
Laboratorio de Citología.
El máximo provecho que el estudiante puede obtener de este laboratorio y de
cuanto pueda aprender de él, depende exclusivamente de su interés y
responsabilidad. Siguiendo atentamente los pasos de los procedimientos de las
diferentes técnicas y comprendiendo los principios y fundamentos de las
pruebas y como ellas pueden ser aplicadas a diferentes situaciones, podremos
hacer que este curso resulte muy interesante, agradable y poco complicado.

4
OBJETIVOS
Promover la implementación de metodologías y prácticas innovadoras de
aprendizaje, coherentes con el modelo pedagógico que privilegia la
participación activa del estudiante en su proceso formativo y la integración en
las prácticas académicas de las tres funciones básicas de la Universidad -
docencia, investigación y difusión.
Apoyar investigaciones que exploren estrategias para aumentar al máximo la
exactitud de los métodos citológicos u otros métodos.
Identificar la problemática que conlleva el cáncer cérvico uterino en nuestro país
y el riesgo que queda confinado a las mujeres, la familia y la comunidad,
identificando las características citológicas que pueden presentar los frotis
cérvico-vaginales, describiendo los patrones de normalidad celular.
Elaborar resultados citológicos confiables, oportunos y reproducibles,
mejorando continuamente en la práctica de la toma de muestras ginecológicas
según el sistema de calidad implementado de acuerdo a normas
internacionales.
Analizar imágenes citológicas cérvico-vaginales, de glándula mamaria y
citologías no ginecológicas precisando las características de anormalidad
tumoral de las células y explicando las diferencias con otras alteraciones de
origen no tumoral.
MATERIALES DE LABORATORIO
La mayor parte de los materiales serán proporcionados en las prácticas. La
utilización del (EPP): mandil, guantes barbijo y gorras en el laboratorio es
obligatoria. Además, necesitará un cuaderno en el cual anotará sus resultados.

5
REGLAMENTO DE LABORATORIO DE
CITOLOGÍA APLICADA
1. El Laboratorio es la parte práctica del curso de Citología, pero también el
laboratorio es un lugar de trabajo, en el que debe guardarse el
comportamiento adecuado.
2. Las prácticas se realizarán a la hora indicada dentro de los horarios
establecidos; se estima una tolerancia máxima de 10 minutos.
3. Cualquier falta deberá ser justificada dentro de las 48 hrs.
4. Para trabajar en el laboratorio es obligatorio el uso de: mandiles
debidamente identificados, barbijos, gorra, guantes
5. Para desarrollar las prácticas cada estudiante deberá estar previsto de
su manual de Laboratorio.
6. Para anotar datos y resultados de las prácticas es indispensable que el
estudiante disponga de un cuaderno exclusivo para el laboratorio.
7. Queda estrictamente prohibido consumir alimentos y bebidas dentro del
laboratorio.
8. Todo material roto, deteriorado o extraviado deberá ser repuesto sin
excusa.
9. Queda estrictamente prohibido el uso de celulares dentro del Laboratorio
10.Una vez finalizada la práctica, se realizará la salida ordenada de los
ambientes y desalojo total del Laboratorio.

6
NORMAS DE BIOSEGURIDAD PARA EL
PERSONAL DEL LABORATORIO DE CITOLOGIA
APLICADA
a) Es requisito obligatorio para el ingreso al Laboratorio que los
estudiantes se encuentren inmunizados, preferentemente con el
esquema completo (presentar fotocopia de carnet de vacunación
al ingreso al Laboratorio).
b) Es indispensable portar de forma personal, alcohol al 70% - 75%
o solución hidroalcohólica (gel hidroalcohólico).
c) En caso que un estudiante se encuentre con síntomas de la
COVID-19, debe informar de inmediato al Docente para tomar las
debidas acciones.
d) Uso obligatorio de EPP (barbijos, mascarillas faciales (protector
facial), gorras y batas (mamelucos) en cumplimiento a las medidas
de bioriesgo. Los mandiles, deben estar debidamente
identificados
e) No se debe salir del laboratorio con la vestimenta de trabajo
(guardapolvo), quitarse la ropa de trabajo antes de salir del
laboratorio.
f) Utilizar guantes en todo trabajo que estén en contacto con material
infeccioso.
g) Utilizar barbijos o mascarillas, como protección frente a polvo
(partículas) y aerosoles en todo lo que consta el procesamiento de
la muestra: grabado de láminas con lápiz de diamante, tinción y
montaje.
h) No se permitirá comer, beber, fumar y/o almacenar comidas dentro
del área de trabajo especialmente en Toma de Muestra.
i) Asegurarse de no presentar cortes, raspones u otras lastimaduras
en la piel y en caso de que así sea cubrir la herida de manera
conveniente.
j) Bajo ninguna circunstancia se pipetearán sustancias tóxicas
(ácido clorhídrico, amoniaco, tolueno, etc.) con la boca, para ello
se utilizaran peras plásticas o pipetas automáticas.
k) Lavarse las manos prolijamente antes y después de desarrollar
cualquier actividad y desinfectarlos cuando corresponda.
l) Utilizar recipientes con una solución desinfectante pera desechar
todo material infectado: Hipoclorito de sodio al 0.5%.
m) Informar al responsable del Laboratorio de cualquier accidente o
exposición a material infeccioso que ocurra dentro de los
ambientes del laboratorio.

7
PRÁCTICA N° 1
CITOLOGÍA DEL CUELLO UTERINO NORMAL
FUNDAMENTO
El cuello uterino o cérvix, está tapizado por dos tipos de epitelio, EL
EXOCERVICAL, que es plano pavimentoso (EPITELIO ESCAMOSO
ESTRATIFICADO NO QUERATINIZADO) y EL ENDOCERVICAL, que es
cilíndrico mucosecretante, que contiene entre otros mucina y está bajo control
hormonal por parte de los estrógenos y la progesterona, lo que hace que sus
características presenten variaciones cíclicas a lo largo del ciclo menstrual. El
sitio de unión de estos dos epitelios se denomina zona de unión escamo
columnar (UEC) que depende en gran parte de la acción de las hormonas
ováricas, de la menarca, del embarazo, etc.
La transición entre el útero y el cérvix se realiza a nivel del orificio cervical
interno, lugar donde cambia el epitelio y el estroma. La transición entre el
endocérvix y el exocérvix tiene lugar a nivel del orificio cervical externo. La
transición entre el epitelio endo y exocervical se modifica a lo largo de la vida
sexual de la mujer.

8
CITOLOGÍA DEL CUELLO UTERINO NORMAL
CARCTÉRÍSITICAS CITOLÓGICAS
CÉLULAS SUPERFICIALES
a) Se originan de la capa superficial del epitelio escamoso no queratinizado,
b) Son las más comunes de la fase preovulatoria y reflejan el mayor grado
de madurez.
c) Miden entre (40-60 micras), poligonales, de bordes citoplasmáticos bien
definidos e irregulares
d) El citoplasma es translúcido, homogéneo,
e) Puede mostrar gránulos de queratohialina alrededor del núcleo,

9
f) Los núcleos son pequeños (PICNÓTICOS) (5-7 micras), centrales y
redondos,
g) Son las observadas durante la madurez sexual cuando el efecto
estrogénico es más intenso (fase ovulatoria) y en casos de acción
hormonal hiperestrogénica (persistencia del folículo y tumores
funcionantes, entre otras causas).
Células superficiales basófilas y acidófilas con núcleos picnóticos (Obj. 10x)

10
Células escamosas superficiales. Que muestran gránulos de queratohialina o Heleydina
(Obj. 40x)
CÉLULAS INTERMEDIAS
a) Son las células más frecuentes en la fase postovulatoria.
b) Representan las células más constantes y numerosas en los frotis
vaginales,
c) Son células también grandes (30-50 micras), con citoplasma
transparente, poligonal y de bordes plegados.
d) La tinción suele ser pálida verde-azulada (cianófila),
e) Los núcleos son redondos u ovales, (9-11 micras), de apariencia
vesicular y cromatina fina,
f) Ocasionalmente muestran una barra o surco longitudinal y en él puede
identificarse la cromatina sexual o corpúsculo de Barr (estructura
planoconvexa de aproximadamente l micra de diámetro adherida a la
cara interna de la membrana nuclear).
g) Las células intermedias tienden a mostrar citólisis en la fase
progestacional por acción de la flora lactobacilar (bacilos de Döderlein).
h) El glucógeno contenido en las células intermedias es convertido en ácido
láctico por acción de la bacteria vaginal de Döderlein. Este ácido láctico
provoca un pH bajo (pH: 4,5 – 4.8) que servirá de protección contra otras
bacterias e infecciones.

11
i) Las células naviculares, llamadas así por Papanicolaou por aparentar
una característica forma de barca, son variantes de las células
intermedias.
Células intermedias basófilas con bordes plegados (Obj. 40x)
Bacilos de Döderlein con citólisis (Obj. 20x)

12
CÉLULAS PARABASALES
a) La descamación de células parabasales originadas en el estrato
profundo es infrecuente y aparecen fisiológicamente en los estados
atróficos de la infancia y menopausia.
b) Las células son pequeñas (15-30 micras), poliédricas o elípticas (ovales),
con citoplasmas cianófilos y bordes celulares muy bien definidos.
c) Los núcleos son redondos u ovales, entre 8-12 micras y suelen ser
vitales, es decir, con una cromatina reconocible y uniformemente
distribuida,
d) En ocasiones, las células parabasales pueden presentar citoplasmas
eosinófilos y núcleos pequeños y picnóticos como consecuencia de una
rápida maduración provocada por una intensa acción estrogénica o
irritativa.
Células parabasales (PP 1) (Obj. 10x)

13
Células parabasales (PP 2) (Obj. 40x)
CÉLULAS BASALES
a) Son las células más pequeñas del epitelio vaginal (15-20 micras). El
citoplasma es escaso e intensamente cianófilo con bordes lisos y
definidos.
b) Normalmente no se exfolian (presentes en niñas, pacientes atróficas,
erosiones severas, deficiencia severa de estrógenos, cáncer).
c) El núcleo es central, redondo, relativamente grande e hipercromático.
d) Denominados también queratinoblastos o prequeratinocitos.
e) Citoplasma denso, se tiñe de color verde-azuloso con tinción de
Papanicolaou.
f) Formada por elementos responsables del recambio celular.
g) Integridad del epitelio.
h) Divisiones celulares (mitosis).
i) Contienen abundantes ribosomas.
j) En su citoplasma se observan pequeños cúmulos de glucógeno y
citoqueratinas o gránulos de queratohialina (19), micronucleólos y
microvellosidades

14
Células basales mucosa atrófica (Obj. 10x)
Colgajos de células basales (M5) (Obj. 10x)

15
CÉLULAS ENDOCERVICALES
a) Las células del epitelio cilíndrico endocervical pueden disponerse sueltas
o formando hileras, empalizadas, grupos acinares o conglomerados
(colgajos).
b) La morfología depende de la perspectiva desde la que se las observe,
como consecuencia de su marcada fragilidad citoplasmática,
c) Las células endocervicales aparecen frecuentemente como núcleos
desnudos.
d) Habitualmente expresan una morfología columnar o alargada y si se
observan desde arriba, muestra una forma poligonal o cúbica, adoptando
cuando se agrupan una característica disposición en "panal de abeja“,
e) Los citoplasmas son claros, microvacuolados o están ocupados por una
gran vacuola secretora. Ocasionalmente pueden observarse pequeños
cilios en el extremo libre de la célula.
f) Los núcleos ocupan una posición excéntrica, son redondos u ovales con
una estructura cromatica regular y frecuentemente exhiben
cromocentros, micronucléolos y, en ocasiones, puede identificarse la
cromatina sexual y tienen un tamaño similar al de las células intermedias
o parabasales.

16
g) No es raro observar células binucleadas y multinucleadas.
Colgajos de células endocervicales (Obj. 20x)
Células glandulares cúbicas (Obj. 40x)

17
CÉLULAS ENDOMETRIALES
a) Su aparición ocurre durante o inmediatamente después de la
menstruación.
b) Es relativamente frecuente encontrar células endometriales durante los
primeros cinco días del ciclo; superados estos días, excepto en los casos
de mujeres con dispositivos intrauterinos,
c) Su aparición se relaciona con patología endometrial, frecuentemente
hiperplasias y adenocarcinomas.
Células endometriales normales día 4º de ciclo (obj. 20x)
OBJETIVO:
Distinguir la estructura y funciones de la célula y la anatomía del aparato
reproductor femenino.
MATERIALES
a) Microscopios,
b) Láminas coloreadas con tinción de Papanicolaou del cuello uterino
normal
c) Portaobjetos
d) Cubreobjetos

18
PROCEDIMIENTO
a) Coloque la lámina en el microscopio y observe las diferentes
estructuras y características citológicas del cuello del útero.
b) Clasifique la citología del cuello uterino de acuerdo a las características
morfológicas de las células.
ACTIVIDADES
Reconozca, esquematice y describa las diferentes células que componen el
cuello uterino y otros elementos de origen no epitelial.

19

20
PRÁCTICA Nº 2
TÉCNICA ACONSEJADA PARA LA TOMA DE MUETRAS DE
FROTIS CERVICO-UTERINO
INTRODUCCIÓN
Partiendo del principio que debe regir la relación de confianza entre el clínico y
el laboratorio para todo examen que el primero solicita, las normas de diálogo y
de respeto mutuo no excluyen el análisis ni la reflexión conjunta sobre las
condiciones en que el clínico puede y debe esperar resultados de la mayor
fiabilidad, exactitud, claridad y reproductibilidad posibles. La exigencia de
calidad óptima y de excelencia en el trabajo que confía el clínico al laboratorio
debe ser una norma, considerando que un resultado inexacto o ambiguo del
laboratorio puede conducir a una terapia ineficaz y en muchos casos nociva o
peligrosa para el paciente a cuyo servicio estamos todos los profesionales de
Salud.
Si como en cualquier acto médico, el margen de error cero no es
humanamente posible, el respeto de las condiciones de muestreo del producto
a estudiar puede disminuir hasta niveles aceptables dicho margen de error. En
citología como en cualquier otra área del laboratorio, la calidad de la muestra
condiciona la fiabilidad del resultado.
Conscientes de las consecuencias graves que acarrean para las pacientes los
frotis falsamente negativos, de una parte, y de otra el desmedro que sufren
programas y esfuerzos estatales y privados para disminuir y/o reducir al máximo
posible los decesos por cáncer cérvico-uterino invasivo, muchos equipos, en
diferentes países y desde hacen muchos años, se han reunido y estudiado las
causas de error tanto de los falsos positivos como de los falsos negativos en
citología. Dichos equipos estaban conformados por ginecólogos,
colposcopistas, citólogos, anátomo-patólogos, epidemiólogos, sociólogos, etc.,
todos profesionales de gran prestigio y con gran experiencia no solamente en
su especialidad, sino también como participantes activos de los programas de
lucha contra el cáncer.

21
Para tratar de ser más prácticos y ajustarnos a las recomendaciones del
Sistema Bethesda que no solo propone una clasificación de las lesiones cérvico-
uterinas que es internacionalmente reconocida y aceptada, da también normas
claras en lo que concierne la calidad de las muestras, indicando que todo
extendido que no abarca toda la superficie de exocervix, la de la unión
escamo-columnar como la del canal endocervical, debe ser considerada por
el citólogo como una muestra inadecuada para emitir un diagnóstico fiable.
OBJETIVO
Realizar la toma correcta de muestras, cuyo requisito es importante e
indispensable para una interpretación citológica precisa.
MATERIALES PARA LA TOMA DE MUESTRAS
1. Especulo Vaginal, estéril, con buen anclaje que permita una adecuada
manipulación manteniendo abierta las dos valvas mientras se toma la
muestra.
2. Guantes desechables, debe utilizarse un par por cada paciente para
evitar contaminación.
3. Láminas porta-objetos sin el extremo esmerilado (preferiblemente).
4. Cito-cepillo de cerdas de nylon, este método, permite evaluar con un
alto índice de sensibilidad y especificidad, la muestra endocervical. No
es adecuada la utilización de instrumentos que tienen material
absorbente (copos de algodón). El escobillón con algodón en un extremo
se reserva para examen bacteriológico y frotis.
5. Espátula de Ayre (tiene una parte bífida y una roma en los extremos, Se
debe tomar la muestra con la parte roma de la espátula raspando todo el
cuelo y los fondos de saco.
6. Cito-fijador liquido o en spray o etanol al 95%. También puede
utilizarse laca fijadora para el cabello.
7. Bandeja porta-láminas para facilitar el secado individual de las
muestras.
8. Solución salina normal o agua destilada.
9. Alcohol antiséptico para limpiar y desengrasar las láminas, previa toma
de la muestra.
10.Compresa y torundas de algodón secas.
11.Pinzas Rochestter.
12.Anteojos y barbijo para la protección del tomador de la muestra.

22
13.Recipiente con bolsa plástica roja para desechar el material biológico,
contaminado.
14.Cubeta o balde para utilizar con hipoclorito al 0,5% para desinfección
del material usado.
PROCEDIMIENTO
La toma de muestra se realizará en el servicio de Ginecología del Hospital
Municipal Modelo Corea.
TÉCNICA DE TOMA DE MUETRA
a) La paciente debe colocarse en posición ginecológica, de manera tal que
se encuentre cómoda y respetando su intimidad. Para facilitar la posición
se le debe pedir que se siente lo más cercano posible del borde de la
camilla, antes de acostarse.
b) Fijar el espéculo en posición abierta.
c) Observar las características del cuello e identificar los sitios de la toma
de la citología.
d) En la toma de la citología, se deben tener como objetivos raspar
minuciosamente la unión escamo columnar o zona de transformación y
la obtención de la muestra endocervical.
LAS MEJORES MUESTRAS SE OBTIENEN CON EL USO DE LA ESPÁTULA
DE AYRE Y EL CITO-CEPILLO.
a) Una vez identificado el cuello uterino, si existe moco, exudado purulento
o sangre en la superficie del cuello debe removerse suavemente y sin
raspar, mediante toque aplicados con una torunda de algodón

23
humedecida en solución salina normal antes de tomar la muestra. La idea
debe ser absorber y no raspar.
b) Tomar la muestra de la región exocervical, con la parte roma de la
espátula raspando todo el cuello y los fondos de saco, buscando raspar
la unión escamo-columnar con la ayuda de la espátula de Ayre y debe
extenderse el material obtenido inmediatamente a lo lago de la lámina
de forma longitudinal y en un solo sentido y fijar a una distancia de 20 a
30 cm.

24
c) Posteriormente, con el cito-cepillo, se tomará la muestra endocervical. El
cito-cepillo se introduce lentamente por el orificio cervical externo, hasta
alcanzar con suavidad y lentamente la mayor profundidad posible, luego
se hace girar dentro del canal endocervical 360° por una vez. Para evitar
el sangrado, no debe girarse el cito-cepillo varias veces, luego debe
extenderse el material obtenido inmediatamente a lo lago de la lámina
de forma longitudinal y en un solo sentido y fijar a una distancia de 20 a
30 cm.
d) Ayudar a la paciente a incorporarse de la mesa de examen, recordándole
la importancia de reclamar el resultado de la prueba, conservar y
presentar este informe en la próxima cita médica o de toma de citología
cervical.

25
PRÁCTICA Nº 3
FUNDAMENTOS Y MECANISMOS DE LA TÉCNICA DE
COLORACIÓN DE PAPANICOLAOU
FUNDAMENTO:
Los análisis micromorfológico óptico de células descamadas del cuello uterino.
Involucra conceptos anatomopatológicos y fisiopatológicos, técnicas citológicas,
y amplios conocimientos morfológicos, que se aplican en las fases de toma de
la muestra, procesamiento y tinción, observación microscópica, e interpretación;
todos factores que George Papanicolaou concibió y concretó hace más de 70
años atrás, con colorantes de pobre definición y numerosos obstáculos de
índole tecnológico.
Los trabajos de George Papanicolaou, no sólo dieron origen a la concepción del
examen citológico como medio de diagnóstico precoz sencillo y de bajo costo
de una lesión tumoral maligna, sino que también proporcionaron las técnicas de
coloración necesarias para el análisis, de ahí que el propio examen y la tinción
lleven su nombre, Papanicolaou, cuyo principio básico se basa en una
asociación entre los patrones citológicos y los cambios en el ciclo ovárico y
menstrual.
TIPOS DE TINCIÓN
1) Los que diferencian los componentes ácidos y básicos de la célula.
2) Los que distinguen componentes fibrosos de la matriz extracelular.
3) Sales metálicas que se precipitan en los tejidos, formando depósitos de
metales en ellos.
PRINCIPIOS BÁSICOS DE UNA BUENA TINCIÓN
1) AFINIDAD QUÍMICA
2) CONCENTRACIÓN
3) PERMEABILIDAD

26
TÉCNICA
Antes de extender la muestra, verificar que la lámina esté libre de polvo, grasa
u otro material, aun cuando en ese momento se haya extraído de su caja; si es
el caso, limpiarla con torunda alcoholada, dejar secar.
PROCEDIMIENTO (TINCIÓN DE PAPANICOLAOU MODIFICADA)
1. Comprobar que los colorantes estén filtrados antes de su utilización
(Particularmente la Hematoxilina de Harris).
2. Verificar que los alcoholes tengan la concentración óptima, estén
limpios y en cantidad suficiente como para sumergir las gradillas.
3. Preparar el alcohol ácido al 0,25%
4. Preparar el carbonato de litio al 0,5%
5. El personal responsable debe tener en cuenta estos puntos antes de
iniciar la tinción de muestras citológicas.
1º FASE: HIDRATACIÓN
1. Alcohol al 96% 5 minutos tiempo mínimo.
4. Agua corriente Enjuague
5. Colorante Hematoxilina de Harris. Tinción nuclear 3 a 5 minutos
6. Agua corriente Elimina exceso de colorante.
7. Alcohol ácido al 0,25% Una inmersión.
8. Carbonato de Litio Neutralización del ácido1
9. Agua corriente Enjuague
2º FASE: DESHIDRATACIÓN
10. Alcohol al 96% 2 minutos.
13. Colorante ORANGE G. Tinción citoplásmica 1 a 3 minutos
14. Alcohol al 96% 5 inmersiones.
1
Puede utilizarse también agua destilada como neutralizador.

27
17. Colorante Citoplasmático E. A. 50 2 a 3 minutos.
BATERIA DE TINCIONES
OBJETIVO
Establecer los lineamientos generales de operación que contribuyan a mejorar
la calidad de los procesos y resultados, en relación con la tinción, montaje,
lectura e interpretación, para su procesamiento y la detección oportuna del
cáncer cérvico-uterino.
MATERIALES
Gradillas de tinción
Lápiz diamante
Cubreobjetos
Portaobjetos
Citospray
Guantes

28
REACTIVOS
Solución de Hematoxilina de Harris x 500 ml “Merck”
Solución Orange G x 500 ml “Merck”
Solución Policroma EA 50 x 500 ml “Merck”
Xilol p. a. x 1 Litro “Merck”
Bálsamo de Canadá (Flotexx) x 946 ml

29
PRÁCTICA Nº 5
FUNCIÓN OVÁRICA, EVALUACIÓN HORMONAL E ÍNDICE DE
PICNOSIS
FUNDAMENTO
La evaluación hormonal a través de la citología vaginal data de 1847, cuando
Pouchet describe por primera vez los cambios en el epitelio vaginal durante el
ciclo ovárico. Muchos años más tarde, entre 1922 y 1928, el investigador
mejicano Eliseo Ramírez Ulloa publica sus experiencias sobre los cambios
celulares relacionados con la función ovárica que se presentan en vulva, vagina
y cuello uterino a lo largo del ciclo menstrual. Estas aportaciones se consideran
las primeras en el diagnóstico hormonal por medio de la citología. Sin embargo,
la citología hormonal no se desarrolla hasta después del establecimiento de la
citología cérvico-vaginal como método de detección y diagnóstico de la
patología cérvicouterina después de los trabajos pioneros de Papanicolaou.
A partir de la instauración de los ciclos ovulatorios o bifásicos, la primera mitad
está regulada por los estrógenos producidos por el folículo ovárico maduro y,
durante la segunda mitad, el folículo convertido en cuerpo lúteo producirá
progesterona.
La citología vaginal cíclica normal está representada, por tanto, por células
superficiales e intermedias, con porcentajes que oscilan entre el 30 y el 70%.
Durante la fase ovulatoria, el índice de maduración se sitúa aproximadamente
en 0/30/70 y antes de la menstruación, periodo donde los progestágenos
alcanzan sus máximas concentraciones, el índice de maduración se sitúa hacia
la zona media (0/70/30). Durante la menstruación descienden rápidamente los
estrógenos y la progesterona. Con la nueva maduración folicular los estrógenos
vuelven a producir un desplazamiento hacia la derecha del índice de
maduración. De manera resumida, los hallazgos citológicos que caracterizan
las diferentes fases de un ciclo normal de 28 días pueden esquematizarse de la
siguiente manera:

30
Fase menstrual (día 1 al 5):
Durante los primeros cinco días del ciclo, contados desde el primer día de la
menstruación, el frotis es "sucio", conteniendo sangre con restos celulares y
células inflamatorias, endometriales y estromales. Las células glandulares
endometriales se disponen frecuentemente en grupos compactos, con escaso
detalle nuclear. Las células estromales aparecen en conglomerados y con
aspecto similar a histiocitos pequeños. Las células escamosas inicialmente
agrupadas, plegadas y degeneradas, comienzan a partir del 4.°-5.° día a
mostrarse menos agrupadas y con citoplasmas mejor conservados.
Fase posmenstrual (día 6 al 10):
Durante los días 6 al 10 del ciclo menstrual, el frotis contiene
predominantemente células escamosas superficiales y el índice de maduración
puede alcanzar el 60%. Entre los días 6 y 8 hay una desaparición gradual de la
sangre y se pueden observar grupos compactos de células endometriales y
estromales con gran hipercromatismo nuclear (éxodo).
Fase ovulatoria (día 11 al 15):
Los días 11 al 15 comprenden la fase ovulatoria caracterizada por frotis muy
limpios, sin leucocitos ni flora bacteriana. Hay un claro predominio de células
superficiales con amplios citoplasmas extendidos, acidófilos, con ocasionales
gránulos de queratohialina alrededor del núcleo y núcleos picnóticos (figs. 2, 3,
4). Las células tienden a disponerse de manera aislada. Estos hallazgos
adquieren su máximo desarrollo coincidiendo con la ovulación. En ocasiones se
pueden observar hematíes (hemorragia microscópica intermenstrual o signo de
Hartman) y cuando se acompaña de un discreto dolor abdominal es sugestivo
de ovulación. Justo antes o coincidiendo con la ovulación hay abundante moco
que cristaliza en forma de helecho y, ocasionalmente, se puede observar
pequeñas prominencias en los núcleos desnudos de las células endocervicales.
Fase luteínica o secretora (día 16 al 28):
La fase secretora comienza alrededor del día 16 del ciclo. En plena fase lútea
predominan claramente las células intermedias de citoplasmas cianófilos,
densos y plegados, que tienden a disponerse en conglomerados. No es raro
observar ocasionales células naviculares. Cuando los niveles de progesterona
empiezan a disminuir como consecuencia de la degeneración del cuerpo lúteo
y comienza la aparición de nuevos folículos en desarrollo, se aprecia una ligera

31
acción estrogénica. Por tanto, en esta fase el índice picnótico desciende hasta
cifra del 10% aunque, por lo anteriormente expuesto, antes de la menstruación
es frecuente observar una pequeña elevación del índice picnótico y eosinofílico.
Al final del ciclo o fase progestacional final, el frotis alberga células inflamatorias,
gran cantidad de lactobacilos y citólisis que hacen difícil visualizar con detalle la
celularidad.
Citología del embarazo:
Durante el primer trimestre del embarazo, las hormonas provienen inicialmente
del cuerpo lúteo y después, a principios del 4° mes, de la placenta (trofoblasto).
La moderada actividad estrogénica mantenida durante el primer trimestre
disminuye gradualmente por el efecto de la progesterona producida por la
placenta.
Durante el primer trimestre, la imagen citológica del embarazo normal
prácticamente no varía de la fase secretora del ciclo menstrual o de la imagen
citológica secundaria a la administración de progestágenos exógenos.
En general, el frotis del embarazo se caracteriza por el predominio de células
intermedias dispuestas en grupos muy compactos y por una cantidad variable
de células naviculares.
OBJETIVOS.
a) Comprender el papel que realizan las hormonas sobre la función
reproductora y su importancia para el normal devenir de la misma.
b) Conocer las funciones, mecanismo de acción y regulación de los
estrógenos, progesterona, andrógenos, prostaglandinas y resto de
hormonas placentarias e hipofisarias que afectan a la reproducción.
c) Relacionar los cambios ocurridos durante el ciclo menstrual, la gestación,
el parto o la lactación con las hormonas responsables de los mismos.

32
CICLO HORMONAL
% DE CÉLULAS SUPERFICIALES BASÓFILAS Y ACIDÓFILAS CON
NÚCLEO PICNÓTICO
Evaluación Hormonal
FASE ESTROGÉNICA
Aglutinación de células intermedias = 0
FASE LUTEAL
Aglutinación células intermedias de + a
+++
1........10-20 F.M. 15........70-80
2........10-20 F.M. 16........65-75
3........10-20 F.M. 17........60-70
4........10-20 F.M. 18........50-60
5........10-20 F.M. 19........45-55
6........15-25 20........35-45
7........15-25 21........30-40
8........30-40 22........30-40
9........35-45 23........20-30
10.......40-50 24........15-25
11.......50-60 25…….15-20
12.......55-65 26........20-30
13.......60-70 27........20-30
14.......70-80 28…….10-20
F.M. = Fase Menstrual
Elaboración Dr. Yohel Jiménez 2020

33
PRÁCTICA Nº 5
CAMBIOS CITOLÓGICOS PRODUCIDOS POR INFECCIONES
INTRODUCCIÓN
La tinción de Papanicolaou, pese a ser un método citológico y no bacteriológico,
permite la visualización de un determinado número de estos gérmenes o de las
alteraciones celulares producidas por ellos.
TRICHOMONAS VAGINALIS: GENERALIDADES
a) Organismo piriforme (parásito), puede medir de 8 a 20 micras.
b) Posee 4 flagelos anteriores 1 flagelo posterior y una membrana ondulante
con citoplasma grisáceo o verde grisáceo tenue y núcleo excéntrico oval
(vlefaroblasto) junto con gránulos eosinófilos.
c) Sucumben a temperaturas mayores a 40° C, frente a la acción de la luz
solar directa y no más de 35 a 40 minutos en agua.
d) Sobreviven en: esponjas húmedas por varias horas, ropas húmedas hasta
24 hrs. de la inoculación. En orina sobreviven más de 24 hrs.
e) 5 hrs. en agua entre 18 y 29°C pH 4.9 a 7.5
CAMBIOS CITOLÓGICOS
a) Frotis afín a colorantes anaranjados (EOSINOFILIA).
b) Los núcleos muestran una ligera displasia crecimiento e hipercromatismo
(células reactivas), con cierta irregularidad de la cromatina (discariosis
superficial), es por ese motivo que se confunde con células malignas.
c) Puede haber numerosos neutrófilos agrupados en cúmulos alrededor de
trichomonas destruidas, formando balas de cañón.
d) No es raro encontrar junto a trichomonas leptotrix
e) Cambio de medio acido a alcalino 6.8

34
Frotis exocervical: fondo que muestra abundante flora microbiana, infección por
Trichomonas vaginalis (en las flechas se observan a los parásitos visibles). (obj.
20x)
Células intermedias con núcleos reactivos. Las flechas muestra claramente a
los parásitos. Infección por Trichomona vaginalis (Obj. 40x)

35
MONILIASIS, MICOSIS, CÁNDIDIASIS, HONGOS: GENERALIDADES
a) En este grupo se encuentran Candida albicans y Torula glabatra.
b) Aparecen preponderantemente en su forma vegetativa, en forma de
hebras largas que simulan una caña de bambú.
c) hifas y esporas pueden estar presentes simultáneamente en un mismo
extendido.
d) Las esporas se dan como granos de arroz, redondeada, de color rojizo
con un pequeño halo alrededor de ellas.
a) CARACTERÍSTCAS DEL CUELLO: Es blanca forma de Leucorrea
(grumos con apariencia de leche cortada).
b) Se presenta generalmente cuando existe elevados niveles de
progesterona como en el embarazo.
c) Cuando hay variación del pH, cuando cambia hacia la alcalinidad.
d) También se presenta en mujeres diabéticas.
e) Son visibles en lo general en conglomerados celulares.
f) Basofilia o eosinofilia.
Células intermedias aglutinadas, se observan abundantes hifas (Obj. 20x)

36
Células intermedias aglutinas, se observa abundantes micelios, abundantes
esporas (Obj. 40x)
VAGINOSIS BACTERIANA: GARDNERELLA VAGINALIS
a) Al menos 20% de células en preparación húmeda.
b) Sin embargo, gardnerella presente 16-42% de mujeres sin VB.
c) Descubridor Gardner y Dukes 1955
d) Secreción abundante con pH 5 – 5.5
e) Células impregnadas o colonizadas por estas bacterias (clue cells) o células
índice o células (células azules).
f) Están involucrados otras bacterias formando el complejo GAM (gardnerella,
anaerobios, mobiluncus.
g) La vagina normal es un ambiente ácido habitado por lactobacilos
productores de hidrógeno.
h) Hay algún cambio en la flora bacteriana de la vagina (debido a factores
ambientales, de conducta u hormonales).
i) VB se caracteriza por un número reducido de lactobacilos y
sobrecrecimiento de Gram (-), bacterias anaerobias.

37
a) Ausencia de respuesta inflamatoria (vaginosis)
b) Puede encontrarse proliferación de abundantes bacterias (aspecto sucio del
extendido).
c) Estos conglomerados se depositan en los bordes de las células
Vaginosis bacteriana. Típica "células guía" (clue cell) recubierta de cocobacilos
(Obj. 20x)
Presencia de Gardnerella vaginalis, vaginosis bacteriana (Obj. 40x)

38
HERPES SIMPLE VIRUS (HSV)
a) La enfermedad producida por Herpes simplex 2 se contrae por transmisión
sexual y sus síntomas aparecen de 3 a 7 días después del contacto inicial.
b) La infección se exterioriza clínicamente por la presencia de vesículas intra-
epiteliales de crecimiento lento y muy doloroso.
c) La infección por herpes ocurre de manera específica en el núcleo,
provocando un crecimiento de la célula, su morfología depende del estadio
de desarrollo de la lesión vesiculosa.
d) La morfología de las células infestadas se observan a través de la cromatina
en vidrio esmerilado.
e) Métodos para detección más sensibles serología y PCR.
Primer estadio
En esta fase es posible percibir un aumento de tamaño del núcleo, con
cromatina granular y vacuolación fina.
Segundo estadio
Esta proliferación cambia el aspecto del núcleo, tornándolo translucido,
"vidrio esmerilado» la membrana nuclear es claramente discernible y el
citoplasma se vuelve basófilo y denso.
Tercer estadio
La célula infectada muere, ocasionando que la cromatina se condense
morfológicamente en el centro del nucléolo cual confiere a este una
apariencia peculiar, en forma de «cuerpo de inclusión.

39
Células multinucleadas con signos patognomónicos de infección por HSV.
Obsérvese el aspecto esmerilado nuclear. (OObj. 20x)
ACTINOMYCES ISRAELI ASOCIADO A (DIU)
Estudios realizados por Hager y cols. 1979 encontraron en mujeres usuarias de
DIU presentaron actinomices intrauterinos y el germen aislado fue actinomyces
israeli.
a) Acúmulos de estructuras filiformes basófilas. ("colonias aracniformes",
"bolas de algodón").
b) En ocasiones, estos acúmulos se asocian a un denso exudado inflamatorio
que se dispone en forma de corona alrededor de los mismos

40
Organismos compatibles con Actinomyces. Obsérvese la disposición filamentosa
radial en la prefiere de la colonia (Obj. 40x)
MATERIAL:
* Microscopios
* Láminas fijadas y teñidas por la técnica de Papanicolaou.

41
PRÁCTICA Nº 6
EL SISTEMA BETHESDA PARA IFORMAR LA CITOLOGÍA
CÉRVICO VAGINAL
INTRODUCCIÓN
El sistema de Bethesda para informar la Citología cervical, fue desarrollado por
un grupo de expertos en Citología, Histopatología y Ginecología en 1988 en
Bethesda, Marlyland y ha sido objeto de dos revisiones posteriores (1991,
2001).
Este sistema se realizó con el propósito de informar la citología cervical
(Papanicolaou) de una manera clara, proporcionar información relevante al
médico y fomentar la comunicación eficaz entre el médico y el laboratorio.
CLASIFICACIÓN:
• Negativo para lesión intra-epitelial o malignidad (NILM).
• CÉLULAS ESCAMOSAS ATÍPICAS (ASC) COMPRENDE:
Células escamosas atípicas de significado indeterminado
(ASC-US)
Células escamosas atípicas, no se pude descartar una lesión intra-
epitelial de alto grado (ASC-H)
• ANOMALÍAS DE CÉLULAS EPITELIALES ESCAMOSAS
COMPRENDE:
Lesión escamosa intra-epitelial de bajo grado (LIEBG)
Lesión escamosa intra-epitelial de alto grado (LIEAG)
CARCINOMA DE CÉLULAS ESCAMOSAS
CALIDAD DE LA MUESTRA
a) SATISFACTORIA PARA EVALUACIÓN.
b) INSATISFACTORIA PARA EVALUACIÓN.
FACTORES QUE INTERFIEREN CON LA INTERPRETACIÓN CITOLÓGICA
• Eritrocitos (Fondo demasiado hemorrágico)
• Células inflamatorias
• Áreas gruesas

42
• Mala fijación (Fijación tardía, fijación cercana)
• Artificios por desecación
• Contaminantes en 50-70% de las células
MUETRAS INSATISFACTORIOS
• Sin identificación
• Rota
• No celularidad (acelular, escaso material celular pavimentoso y
glandular)
• 75% con contaminates
• Ausencia de células glandulares y células de la Unión Escamo
Columnar (UEC).
CRITERIOS CITOLÓGICOS
CÉLULAS ESCAMOSAS ATÍPICAS (ASC/ ASC-US)
1. Los núcleos tienen aproximadamente entre 2 veces y media y 3 veces el
tamaño del área del núcleo de una célula escamosa intermedia normal.
2. Leve aumento de la relación existente entre el área nuclear y el área
citoplasmática (N:C).
3. Hipercromasia nuclear mínima e irregularidad de la distribución cromática o
de la morfología nuclear / cromatina finamente granular homogéneamente
distribuida.
4. Anomalías nucleares asociadas a citoplasma eosinófilo denso
(paraqueratosis atípica)
NOTA. También entran dentro de esta categoría las células redondeadas
u ovoides que tienen alrededor de un tercio del tamaño de las células
superficiales y, por ende, se asemejan a células intermedias pequeñas o
metaplásicas grandes.

43
Paciente de 38 años de edad con tratamiento hormonal, donde se observa una mucosa
hipotrófica cuyas células poco diferenciadas presentan núcleos ligeramente
discarióticos con cromatina finamente granular ligeramente irregular, estas imágenes
citológicas sugieren realizar nuevo control citológico dentro de seis meses, previa
suspensión del tratamiento hormonal (ASC-US). (Obj. 20x)
Paciente de 25 años, la lámina examinada muestra células intermedias con núcleos
ligeramente aumentados de volumen con cromatina finamente granular bien distribuida
(ASC-US) (Obj. 40x)

44
CÉLULAS ESCAMOSAS ATÍPICAS, NO SE PUEDE DESCARTAR UNA
LESIÓN INTRAEPITELIAL ESCAMOSA DE ALTO GRADO (ASC-H)
1. Las células ASC-H suelen ser escasas.
2. Células pequeñas con relación N:C alta (Metaplasia atípica inmadura).
3. Las células suelen estar aisladas o agrupadas en pequeños fragmentos de
menos de 10 células, a veces, las células pueden observarse “en hilera” dentro
del moco.
4. Las células tienen el mismo tamaño que las células metaplásicas y un núcleo
que es entre una vez y media y dos veces y media más grande de lo normal.
5. La relación N:C puede ser similar a la del H-SIL o LIEAG.
6. Cuando se contempla la posibilidad de interpretar el extendido como ASC-H
o H-SIL, son signos representativos de H-SIL las anomalías nucleares tales
como Hipercromasia, irregularidad cromática y la morfología nuclear anómalas
con la irregularidad focal.
Células parabasales, algunas de ellas con núcleos con núcleos discarióticos con
cromatina granular e irregular. (ASC-H) (Obj. 20x)

45
LESIÓN ESCAMOSA INTRA-EPITELIAL DE BAJO GRADO (LIEBG – L-SIL)
1. Las células se observan dispersas o en grupos.
2. Los cambios citológicos suelen estar limitados a las células que tienen
citoplasma “maduro” o superficial.
3. La discariosis supera el triple del tamaño del área del núcleo de una célula
intermedia normal.
4. Se observa grados variables de hipercromasia nuclear (leve a moderada),
acompañados plemorfismo.
5. Es frecuente observar binucleación y multinucleación.
6. La cromatina puede estar uniforme, densa y granular; otra posibilidad es que
la cromatina se encuentre condensada.
7. Contorno de la membrana nuclear a menudo puede ser irregular.
8. Los halos perinucleares (coïlocitos), se acompañan de una zona perinuclear
clara bien definida y un borde periférico densamente teñido.
9. Otra posibilidad es la paraqueratosis y eosinofilia marcada (queratinizado).
Paciente de 34 años, con anomalías citológicas. Las características nucleares son
representativas de LIEBG. También se observa el efecto citopático de infección por
VPH o coïlocitos. (obj. 40x).

46
Células intermedias discretamente aglutinadas, muchas de ellas con núcleos
discarióticos, membrana nuclear irregular, hipercromasia moderada de cromatina
densa irregularmente distribuida, también paraqueratosis y coïlocitos. (obj. 40x).
LESIÓN ESCAMOSA INTRA-EPITELIAL DE ALTO GRADO (LIEAG – H-SIL)
1. Los cambios citológicos afectan a células más pequeñas e inmaduras que las
LIEBG.
2. Las células pueden estar aisladas, o en colgajos
3. El tamaño de las células son variables, pueden ser similares a los de LIEBG
o pequeñas como las de tipo basal.
4. La hipercromasia nuclear es acentuada y se acompaña de variaciones de
tamaño y morfología nuclear.
5. El contorno de la membrana nuclear es bastante irregular y dentada o
escotaduras
6. La cromatina irregularmente distribuida densa y grumosa.

47
El extendido muestra células parabasales con núcleos discarióticos, membrana nuclear
nítidamente engrosada, hipercromasia acentuada con cromatina irregularmente
distribuida densa y grumosa (LIEAG) (Obj. A 20x – B 40x)
Células parabasales y poco diferenciadas dispersas con núcleos discarióticos,
membrana nuclear nítidamente engrosada, hipercromasia acentuada con cromatina
irregularmente distribuida densa y grumosa (LIEAG) (Obj. A 20x – B 40x)

48
CARCINOMA DE CÉLULAS ESCAMOSAS/ CARCINOMA EPIDERMOIDE
CARCINOMA INTRA-EPITELIAL
1. Células de todos los estratos con núcleos discarióticos, con pleomorfismo
marcado
2. Es común observar abundantes células poco diferenciadas dispersas y en
colgajos con núcleos discarióticos, membrana nuclear nítidamente
engrosada,
3. Los núcleos presentan distribución muy irregular de la cromatina aglutinadas
en grumos.
4. La hipercromasia por lo general es acentuada, con cromatina toscamente
granular y grumosa,
5. Se observa también células con núcleos en tinta china.
Abundantes células poco diferenciadas dispersas y en colgajos con núcleos
discarióticos, membrana nuclear nítidamente engrosada, hipercromasia
acentuada, con cromatina toscamente granular y grumosa, algunas células con
núcleos en tinta china,

49
DIFERENTES TIPOS DE NOMENCLATURA PARA LA
CLASIFICACIÓN DE
LOS FROTIS DE PAPANICOLAOU
Sistema de Clases
de Papanicolaou
(1954)
Descriptivo
Reagen O.M.S.
(1968)
Descriptivo
Richart NIC
(1978)
Sistema Bethesda (1988)
Modificado (2001)
Clase I Normal
Negativo a células
Malignas
Negativo
Dentro de los límites normales.
Negativo para lesión intra-epitelial o
malignidad: (NILM)
CATEGORIAS:
 Frotis Satisfactorio para evaluación.
 Frotis Insatisfactorio por diferentes
causas
Clase II Leve Atipia
Atipia Inflamatoria
Atipia Escamosa
CÉLULAS ESCAMOSAS ATÍPICAS
Cambios reactivos y reparativos
Células Escamosas atípicas (ASC):
 Células escamosas atípicas de
significado indeterminado (ASC-US).
 Células escamosas atípicas, no se
pude descartar una lesión Intra-
Epitelial escamosa de Alto Grado
(ASC-H).
Clase III Displasia
Atipia Coïlocítica
Displasia Leve
Displasia Moderada
Displasia Grave
NIC I
NIC II
NIC III
ANOMALIAS DE CÉLULAS
EPITELIALES ESCAMOSAS
L-SIL / LIEBG
L-SIL / LIEBG incluye condiloma (VPH)
H-SIL / LIEAG
H-SIL / LIEAG
Clase IV
Probable
Cáncer
Carcinoma In Situ NIC III H-SIL / LIEAG
Clase V Cáncer Carcinoma Invasor CA invasor Carcinoma Invasor
CÉLULAS GLANDULARES ATÍPICAS
Células Glandulares Atípicas (CGA)
Adenocarcinoma Adenocarcinoma
ANOMALIAS EPITELIALES
GLANDULARES
Adenocarcinoma
 Endocervical
 Endometrial
Elaboración: Dr. Yohel Jiménez Velarde 2018

50
ABREVIATURAS
ASC, Células escamosas atípicas
ASC-H, Células Escamosas atípicas, no se puede descartar una lesión
intra-epitelial escamosa de alto grado
ASC-US, Células Escamosas atípicas de significado indeterminado
CGA, Células glandulares atípicas
NILM, Negativo para lesión intra-epitelial o malignidad
NIC, Neoplasia intra-epitelial cervical
SIL, lesión intra-epitelial escamosa
L-SIL / LIEBG, lesión intra-epitelial escamosa de bajo grado
H-SIL / LIEAG, lesión intra-epitelial escamosa de alto grado
VPH, Virus Papiloma Humano

51
BIBLIOGRAFÍA
1. ATKINSON Bárbara, SILVERMAN Jan F. “ATLAS DE DIFICULTADES
DIAGNÓSTICAS EN CITOPATOLOGÍA”. Editorial Harcourt. Madrid
España. 2015.
2. ALONSO DE RUIZ, Patricia, LAZCANO PONCE, Eduardo. “CÁNCER
CÉRVICOUTERINO. Diagnóstico, Prevención y Control”. Editorial
Panamericana. México, 2018.
3. APGAR S, Bárbara, BROTZMAN Gregory. “COLPOSCOPIA. Principios y
Práctica”. Editorial McGraw –Hill. México,2013.
4. DE AZÚA Javier. “DIAGNÓSTICO CITOLÓGICO EN PATOLOGÍA
MAMARIA. Editorial Espax. Barcelona-11 España 2008.
5. DE BRUX Jean. “HISTOPATOLOGÍA DE SENO” Colección de
histopatología. Editorial Masson. Paris Francia. 2007.
6. SOLOMON, Diane et. al. “EL SISTEMA BETHESDA PARA INFORMAR
LA CITOLOGÍA CERVICAL. Definiciones, criterios y notas aclaratorias”, Ed.
Journal, Buenos Aires – Argentina 2018.
7. WILKINSON E. “FROTIS DE PAPANICOLAOU Y DETECCIÓN DE
NEOPLASIA CÉRVICO-UTERINA”. Clínicas Obstétricas y Ginecológicas.
Edición 4ª. McGraw Hill. 2010.
8. MONSONÉGO, Joseph. “DYSPLAISES DU COL UTÉRIN ET
PAPILLOMAVIRUS HUMAINS” . Edit. Maloine S.A. 2017. Paris – Francia.

GUÍA DE PRÁCTICA DE LABORATORIO EN CITOLOGÍA APLICADA

Recomendados

Recomendados

Más contenido relacionado

La actualidad más candente

La actualidad más candente (20)

Similar a GUÍA DE PRÁCTICA DE LABORATORIO EN CITOLOGÍA APLICADA

Similar a GUÍA DE PRÁCTICA DE LABORATORIO EN CITOLOGÍA APLICADA (20)

Más de Rembert Cari Hojeda

Más de Rembert Cari Hojeda (20)

Último

Último (20)

GUÍA DE PRÁCTICA DE LABORATORIO EN CITOLOGÍA APLICADA