PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03 ‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL EXAMEN PARASITOLÓGICO EN HECES E IDENTIFICACION DE ELEMENTOS NORMALES’’

UNIVERSIDAD NACIONAL JORGE BASADRE GROHMANN
‘’NUEVOS TIEMPOS, NUEVOS LÍDERES, NUEVAS PERSPECTIVAS’’
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA ACADÉMICA PROFESIONAL DE FARMACIA Y BIOQUÍMICA
PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03
‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS
PARA EL EXAMENPARASITOLÓGICO ENHECES E
IDENTIFICACION DE ELEMENTOS NORMALES’’
PRESENTADO POR : Gómez Mamani, Maryori Thania.
CÓDIGO : 2014-125030.
CURSO : Parasitología clínica.
DOCENTE : Q.F. Elizabeth
AÑO : 3er año.
FECHA DE ENTREGA : Lunes 16 de mayo.
TACNA-PERÚ
2016

ANÁLISIS INSTRUMENTAL UNIVERSIDAD NACIONALJORGE BASADRE GROHMANN– ESFB – FACS- TACNA
Maryori ThaniaGómezMamani. 2014-125030. 2
PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03
‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL EXAMEN
PARASITOLÓGICO EN HECES E IDENTIFICACION DE ELEMENTOS
NORMALES’’
I. OBJETIVOS:
 Adiestrar al alumno en la preparación de muestras parasitologías.
 Diferenciar y observar las muestras parasitologías en heces.
 Identificar los distintos elementos normales en las heces por medio de la
observación microscópica con la finalidad de diferenciarlos posteriormente de las
formas parásitas que puede encontrarse en un diagnóstico.
II. MARCO TEÓRICO:
Para una identificación de elementos
extraños o agentes parasitológicos que
han ingresado al tracto digestivo, es
menester identificar en primer lugar a
los elementos normales que se
observan al microscopio, los que son
residuos no digeridos o semidigeridos
de alimentos que generalmente son de
origen vegetal y que por su naturaleza
están revestidos de celulosa. Las células
vegetales en su mayoría, tiene celulosa
conformando la estructura de su pared
(fibra), en el ser humano no tiene la
enzima celulasa para digerir celulosa,
por lo tanto ésta pasa a través del tracto
digestivo son ser atacada por las
secreciones gástricas.
Las muestras fecales se examinan para detectar la presencia de protozoos y las
larvas o huevos de los helmintos. Por lo general, las tenias adultas y sus
segmentos resultan visibles a simple vista, pero los huevos, los trofozoitos y los
quistes sólo pueden verse al microscopio. La observación de esas estructuras
exigen la preparación y el examen correctos del material.

2.1. TOMA DE MUESTRA FECALES:
Dada la fragilidad de muchos parásitos intestinales y la necesidad de
preservar su morfología para identificarlos con exactitud, no puede hacerse
un diagnostico fiable al microscopio a menos que la toma de muestra de
heces se haga debidamente:
a. Entréguese al paciente un recipiente de plástico de boca ancha y de
cierre hermético.
b. Pídale al paciente que defeque directamente en el recipiente o en
una bacinica y utilice varillas de madera o bajalenguas o una
cucharita o tenedor de plástico para introducir la muestra en el
recipiente.
c. Algunos microorganismos, especialmente los trofozoitos
amebianos, comienzan a desintegrarse o alterarse al poco tiempo de
ser excretados y su vuelven irreconocible. Las temperaturas
elevadas aceleran esos cambios. Así pues las muestras deben llegar
al laboratorio tan pronto como sea posible después de la defecación.
De preferencia no deberán de trascurrir más de dos horas hasta el
momento del análisis en el laboratorio. Si no es posible, la muestra
debe tratase con conservantes. (formalina al 10%),
d. El recipiente debe tener los siguientes datos:
 Nombre o número del paciente
 Fecha de la toma
 Hora de la excreción
e. La muestra más pequeña que debe de aceptarse es la del tamaño del
huevo mediano de una gallina. NO debe de tener orina ya que esta
destruye los trofozoitos amebianos. Si la muestra es muy pequeña o
está mezclada con orina o suciedad debe de rechazarse. Pídale al
paciente que traiga otra.
f. Manténgase el frasco de la muestra dentro del frigorífico, si ello no
es posible, colóquese en el lugar más fresco y sombreado del
laboratorio. No debe de dejarse al sol.
g. No debe de mezclarse con agua ni con orina.
h. El paciente no debe de ingerir medicamentos por lo menos 24 a 48
horas antes de la toma.

2.2. EXAMEN MACROSCÓPICO DE LA HECES:
Tan pronto como reciba la muestra de excremento en el laboratorio,
obsérvese su consistencia (grado de humedad) y anótese una de la
siguientes letras en el recipiente: F (formada), B (blanda), S (suelta) o A
(acuosa). Si se observa mucosidades, anótese la letra M, y si se observa
sangre Sa. Por ejemplo: En una deposición suelta con sangre y
mucosidades se describiría con las letras, S, Sa, M.
Si se reciben varias muestras al mismo tiempo, hay que examinar primero
las que contenga sangre y mucosidades, y a continuación las muestras
líquidas. Estas muestras son las que más probabilidad contener trofozoitos
amebianos, que mueren al poco tiempo de la excreción, por lo que deben
examinarse durante la primera hora que sigue a ésta. Las heces formadas
pueden examinarse en cualquier momento del primer día, pero no deben
dejarse de un día para otro (los quistes pueden desintegrarse).
El color: Varía del castaño, café o marrón claro al obscuro.
El olor: Aunque es desagradable, debe ser soportable (característico).
No debe presentar: moco, sangre, pus, parásitos macroscópicos, ni restos
burdos de alimentos.
La cantidad: de materia fecal que un adulto sano elimina por día es
variable en función de la dieta, pero el rango que se considera normal es de
80 a 250 gr repartidas en una a dos defecaciones por día.
La consistencia de las heces: está en función de la cantidad de agua, lo
que a su vez determina el estadio de los parásitos a hallar, por lo que:
 En heces líquidas encontraremos de preferencia trofozoítos de
protozoarios y larvas de helmintos.
 En heces pastosas (semiblandas) encontraremos aunque en menor
proporción, trofozoítos y algunos quistes de protozoarios y también
larvas de helmintos.
 En heces blandas y duras se pueden encontrar quistes de
protozoarios y huevecillos de helmintos, que son formas de
resistencia de los parásitos.

2.3. EXAMEN MICROSCOPICO DE PREPARACIONES HÚMEDAS:
La preparación en húmedo es la técnica más sencilla y fácil para examinar
las heces; este método debe de aplicarse en todos los laboratorios.
Una preparación húmeda puede prepararse directamente a partir de
material fecal o muestras concentradas. Las principales formas de
preparación en húmedo que deben usarse en cada examen fecal son las
realizadas con solución salina, con solución yodada y con azul de metileno
amortiguado:
La preparación con solución salina se usa en el examen microscópico
preliminar de los excrementos. Se utiliza para observar los huevos y las
larvas de gusanos, los trofozoitos de protozoos y los quistes. También
puede revelar la presencia de eritrocitos y leucocitos.

2.4. ALGUNOS CONCEPTOS SOBRE EL ANÁLISIS FUNCIONAL DE LAS
HECES HUMANAS:
El olor, color, aspecto y otras características de las heces nos pueden
indicar alteraciones que se pueden presentar en el normal funcionamiento
del sistema digestivo el paciente, debido, muchas veces, a la presencia de
enteroparásitos. Así tenemos:
OLOR
SI PRESENTA PUEDE SER
Muy fétido Putrefacción infecciosa
Fétido Fermentación bacteriana
moderada
Moderadamente fétido Normal
A medicinas Paciente en tratamiento
A frutas Infección por pseudomonas
COLOR
Negro o marrón oscuro Dieta a base de hierro p
hemorragia gástrica.
Marrón Dieta alta en carnes o alguna
hemorragia intestinal.
Amarillo Normal
Amarillo claro Normal o disfunción hepática
Blanquecinas Disfunción u obstrucción
hepática
Blancas Obstrucción hepática.
CONSISTENCIA
Fluida con sangre Disentería ulcerosa o úlceras
intestinales.
Pastosa endurada Normal
Moderadamente dura Estreñimiento moderado
Muy duras Estreñimiento

III. EQUIPOS, MATERIALES Y REACTIVOS:
3.1. Equipo:
Figura 01: Microscopio
3.2. Materiales:
Figura 02: Láminas
porta y cubre objetos.
Figura 03: Pipetas
Pasteur
Figura 04: Baja lenguas o aplicadores de madera.

3.3. Reactivos:
Figura 05: Solución
salina isotónica
Figura 06: Lugol
parasitológico
Figura 07: Azul de metileno
IV. PARTE EXPERIMENTAL:
4.1. EXAMEN MACROSCÓPICO
a) Observar las características de las heces como:
N Característica Muestra 1
1 consistencia Blanda
2 Mucosidades o sangre No presenta
3 Color Amarillo
4 Olor Fétido

4.2. EXAMEN MICROSCÓPICO
4.2.1. EXAMEN PARASITOLÓGICO DIRECTO:
a) En un portaobjetos limpio, se colocan
separadamente, una gota de solución
salina y otra de lugol. NOTA: si se
sospecha la presencia de trofozoitos
amebianos, debe de utilizarse solución
salina tibia a 37°C.
b) Con el aplicador de madera se toma una
muestra de 1 a 4 mg de heces y se mezcla con la
solución salina, con el mismo aplicador se
retiran las fibras y otros fragmentos gruesos,
procurando hacer una suspensión. NOTA: del
excremento es formado tómese la porción de excremento de modo que contenga
material del exterior y del interior de la muestra.
c) Cúbrase la gota de solución salina y la gota de
solución yodada con laminillas portaobjetos, se
apoya este sobre el portaobjeto en posición
inclinada, se toca él borde de la gota y se hace
descender lentamente hasta que quede sobre el
portaobjeto. Con ello se recudirá al mínimo la posibilidad de que se forme
burbujas de aire en la preparación.
d) Colóquese el portaobjetos con la muestra en la platina del microscopio y
enfóquese la preparación con el objetivo de 10X o uno de menor aumento.
e) Examine toda la zona del cubreobjetos con el objetivo de 10X, enfóquese en el
ángulo superior izquierdo y mueva el portaobjeto con movimientos regulares
en horizontal o en vertical.
f) Cuando se vea un microorganismo sospechoso, pase al objetico de 40X y
aumente la iluminación del diafragma para observar la morfología en detalle.

g) Este es un examen sistemático. Por este método podrá localizar todo parasito
que esté presente. Si la preparación no se examina sistemáticamente cabe la
posibilidad de pasar por alto algún parasito,
Examine cada campo microscópico.
Imagen de la muestra.
Enseguida se hizo los
procedimientos descritos
anteriormente
Se necesitó 2 láminas portaobjetos para
observar después x el microscopio,
también se hizo uso del baja lenguas para
disolver por momentos antes de ver al
microscopio.
Para la mejor observación
de la muestra, se usó 3
reactivos: Solución salina,
Lugol y Azul de metileno.
Esta fotografía muestra 2 láminas
portaobjetos con 3 pequeñas muestras ya
disueltas con los respectivos reactivos.

V. PRESENTACIÓN DE RESULTADOS:
5.1. EXAMEN MACROSCÓPICO
a) Se observó las características de las heces como:
N Característica Muestra 1
1 consistencia Blanda
2 Mucosidades o sangre No presenta
3 Color Amarillo
4 Olor Fétido
La presencia de sangre macroscópica indica patología:
 La sangre en forma de estrías en la superficie indica hemorroides o anormalidades
anales.
 La sangre en la materia fecal también se debe a anormalidades localizadas antes
del colon. Si el tránsito intestinal es lo suficiente rápido, la sangre proviene del
estómago y el duodeno es de color rojo brillante u obscuro.
5.2. EXAMEN MICROSCÓPICO
5.2.1. EXAMEN PARASITOLÓGICO DIRECTO:
PELO VEGETAL PELO VEGETAL

GOTAS DE GRASA CON CÉLULA
VEGETAL
CELULA VEGETAL CON BURBUJAS DE
AIRE
CÉLULA VEGETAL CRISTALES (Prob Oxalato de Calcio)
CRISTALES (Prob Oxalato de Calcio) CÉLULAS DE ALMIDÓN

CÉLULAS DE ALMIDÓN CÉLULAS DE ALMIDÓN
CÉLULAS DE GRASA

VI. CONCLUSIONES:
 La docente nos adiestró en la preparación de muestras parasitologías.
 Se diferenció y observó las muestras parasitologías en heces.
 Se identificó los distintos elementos normales en las heces por medio de la
observación microscópica con la finalidad de diferenciarlos posteriormente de las
formas parásitas que puede encontrarse en un diagnóstico.
VII. CUESTIONARIO:
7.1. Indique 5 medicamentos que provocan cambios en la coloración de las
heces:
Ciertos medicamentos provocan cambios en la coloración de las heces.
 Negro: Sales de hierro, Sales de bismuto, carbón.
 Verde: cloruro de mercurio, indiometicina, calomel.
 Verde a azul: ditiazanina.
 Marrón: antraquinonas.
 Rojo: fenolftaleína, pamoato de pirivino, tetraciclinas em jarabe,
bromosulfaleína.
 Amarillo: santonina, antibióticos.
 Claro a blancuzco: bário, antiácidos.
 Naranja rojizo: fenazopiridina.
 Rosa a rojo a negro: anticoagulantes dosis excesivas, salicilatos.
7.2. ¿Cuál es la función del lugol en el examen parasitológico?
Utilidad del lugol:
Este colorante es utilizado para resaltar a un más las estructuras de los
diferentes parásitos en materia fecal.

7.3. Haga un atlas parasicológico de elementos normales en las heces
humanas:
FIBRA MUSCULAR NO DIGERIDA GOTA DE AIRE
TEJIDO VEGETAL Y GOTA DE GRASA CELULA VEGETAL DE PAPA
PELO VEGETAL ALMIDÓN INTRACELULAR

CÉLULAS VEGETALES FIBRA MUSCULAR SIN DIGERIR
VIII. BIBLIOGRAFÍA:
8.1. Páginas virtuales:
http://www.equiposylaboratorio.com/sitio/contenidos_mo.php?it=1344
https://espanol.answers.yahoo.com/question/

IX. ANEXOS:

SIGNIFICADO CLINICO DE LASS HECES FECALES
Normalmente y con dieta mixta, la deposición es de color pardo o marrón más o menos
oscuro en el adulto, oscureciéndose a medida que pasa el tiempo expuesta al aire. Con
dieta láctea y en los lactantes es amarillo canario. Con dieta cárnea se hace marrón oscuro.
Una alimentación rica en verduras (espinacas especialmente) tiñe las heces de un color
verdoso, mientras que si preponderan las patatas y el pan, las heces se aclaran hacia un
marrón amarillento. El régimen de prueba antedicho tiende a producir heces de color
ocre, normales. Un exceso de café oscurece la deposición.
UTILIDAD CLINICA
El color de las heces proporciona información sobre patología, disfunciones orgánicas,
hemorragia, alimentación o ingestión d medicamentos. El color anormal ayuda al médico
a seleccionar las pruebas tanto químicas como microbiológicas necesarias para llegar a un
diagnóstico. El color marrón de las heces normales tal vez lo propicié la estercobilina
(urobilina), un pigmento biliar que resulta de la acción reductora de las bacterias sobre la
bilirrubina y otros factores no determinados.
SIGNIFICADO CLÍNICO:

AVISO CLÍNICO:
Los antecedentes dietéticos y medicamentos permiten distinguir anormalidades
importantes de interferencias.
Preparación del paciente.
No se deben utilizar laxantes ni preparaciones de bario una semana antes de recolectar la
muestra.

PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03 ‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL EXAMEN PARASITOLÓGICO EN HECES E IDENTIFICACION DE ELEMENTOS NORMALES’’

Recomendados

Recomendados

Más contenido relacionado

La actualidad más candente

La actualidad más candente (20)

Similar a PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03 ‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL EXAMEN PARASITOLÓGICO EN HECES E IDENTIFICACION DE ELEMENTOS NORMALES’’

Similar a PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03 ‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL EXAMEN PARASITOLÓGICO EN HECES E IDENTIFICACION DE ELEMENTOS NORMALES’’ (20)

Más de Maryori Thania Gómez Mamani

Más de Maryori Thania Gómez Mamani (7)

Último

Último (20)

PRÁCTICA DE LABORATORIO Nº 03 ‘‘TÉCNICAS DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL EXAMEN PARASITOLÓGICO EN HECES E IDENTIFICACION DE ELEMENTOS NORMALES’’