Este documento proporciona información sobre coprología, que es el estudio de las heces fecales en busca de parásitos. Explica que la coprología es un método de diagnóstico no invasivo que permite identificar formas quísticas, trofozoitos, larvas y huevos de parásitos. Detalla los pasos para la recolección y procesamiento adecuado de las muestras fecales, incluido el examen macroscópico y microscópico para identificar parásitos y otros hallazgos

1. COPROLOGÍACOPROLOGÍA
Rita Morales / Módulo II / 2014

2.  Es un método de diagnóstico no invasivo, la obtención
de la muestra es relativamente fácil, se utiliza mx
recién obtenida por expulsión natural.
 Es el estudio de la materia fecal en la búsqueda de
formas parasitarias.
 El análisis de heces es efectivo en la identificación de
formas quísticas, trofozoitos, larvas y huevos.
 La identificación de los parásitos depende de la
preparación adecuada del material.
 El análisis inmediato es indispensable.

3. RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA
 Recolectar en un recipiente seco, limpio y sin orina.
 Considerar a pacientes que reciben bario, bismuto o
antibióticos pues las mx son insatisfactorias.
 Muestras formadas = ideales para quistes de
protozoarios.
 Muestras líquidas (diarreicas) o después de un
purgante = ideales para trofozoitos.
 Consistencia dura y sin sangre: procesamiento
idealmente en dos horas.
 Presencia moco y sangre: inmediatamente.

4. FASES DEL EXAMEN
 Examen Macroscópico
 Color
 Consistencia
 Sangre
 Restos alimenticios
 Moco
 pH
 Examen Microscópico
 Jabones, almidones, Grasas, Células vegetales,
Otros, Parásitos.

6.  COLOR
 Café: estercobilina (bilirrubina)
 BlanquecinoBlanquecino: ausencia de pigmentos biliares.
 Amarillo:Amarillo: Leche, o presencia de bilirrubina inalterada
 Gris oscuro: ingesta de grandes cantidades de
chocolate o cacao.
 Verde: ingesta de espinacas y vegetales clorofílicos.
Diarrea infantil –biliverdina.
 Rojo: remolacha
 Estrías rojas: sangrado porciones inferiores del SGI, o
hemorroides
 Negro: Hierro y bismuto.
 Melena: sangrado porciones altas del SGI.

7.  CONSISTENCIA
 Pastosas: presentan un aspecto moldeado
 Semi Líquidas o Semidiarreicas
 Líquidas o Diarreicas
 Formada
 Caproica “con forma de bolas”
 SANGRE
 Indica hemorragia, varía su coloración de acuerdo
a la parte del SGI de donde provenga.

8.  RESTOS ALIMENTICIOS
 Tejidos o fibras vegetales como indicador de mala
digestión.
 MOCO
Copos desgarrados traslúcidos, indica
procesos inflamatorios del intestino.

9.  pH
Regularmente neutro (6.9-7.2)
ácido en Amebiasis y abundancia de
carbohidratos
alcalino en Shigelosis y exceso de
consumo de proteínas.
 OLOR
 No se reporta, proviene del indol y escatol.

11.  JABONES: Formas varias, generalmente
color ámbar.
 ALMIDONES: coloreados de color oscuro
al observar con lugol.
 GRASAS: Refringentes regularmente
circulares.
 CELULAS VEGETALES: múltiples
formas, doble pared, inclusiones celulares,
diversas coloraciones provenientes de
pigmentos vegetales.

12. DIGESTIBILIDAD
Fibras Musculares: cilindros cortos, con
presencia de estrías o huellas. Prótidos:
aumento de fibras musculares = falta de
digestión. Nota: reportar en “otros”.
Los jabones indican mala digestión de lípidos.
Lípidos: grasas neutras y ácidos grasos.
Glúcidos: (almidón) indigestibilidad o exceso
de ingesta de vegetales ricos en ellos.
Células Vegetales: Provienen de la dieta y su
cantidad está relacionada con ésta.

13. Fibra muscular Grasas
Jabones Almidón

14. Fibra
Tricoma
Aire
Células
vegetales
Haces
vasculares
Célula
vegetal

15. EXAMEN MICROSCÓPICO
 OTROS: Aquí se reportan los Comensales, células
sanguíneas, cristales, levaduras, fibras musculares.
 Entamoeba coli: indicador de contaminación fecal por
excelencia. Quiste 6-8 núcleos
 Endolimax nana: indicador contaminación fecal en
alimentos, menor tamaño E. coli
 Iodamoeba butschlii: Un solo núcleo, vacuola de
glucógeno.
 Entamoeba poleckii: quiste con un núcleo excentrico,
cromatina concentrada y densa.
 Entamoeba hartmanni: quiste con 3 a 4 núcleos, tamaño
redondeado.
 Chilomastix mesnilli: Trofozoito con movimiento tirabuzón
y Quiste en “forma de limón”, núcleo excéntrico.

16. Entamoeba
coli
Iodamoeba
butschlii
Chilomastix
mesnilii
Entamoeba
nana

17. Cristales de Charcot-leyden: disentería
amebiana o degradación de
eosinófilos.

18. EXAMEN MICROSCÓPICO
 Otros también…
 Blastocystis hominis, presenta múltiples fases.
 Levaduras: dependiendo cantidad (+++ con significado
clínico).
B. hominis
fase vacuolar
levadura

19.  PARASITOS
Entamoeba histolytica: Quiste maduro
con 4 núcleos, barra de cromatina, trofozoíto
grande, inclusiones celulares.
Indiferente morfológicamente de E. dispar
¿Cómo se reporta?
Utilizar tinciones especiales

20. Giardia lamblia: Patógeno,
axostilo y dos núcleos característicos.
Trofozoitos y quistes.
Generalmente, con forma ovoide.

21. Trichuris trichiura: Huevo como
fase infectante con forma “Balón
futbol americano”

22. Ascaris lumbricoides: Huevos
mamelonados (capa albuminosa).
Huevo fértil e infértil.

23. Taenia sp.: Huevos redondeados con una
especie de corona radiada y ganchos en su
interior.
Morfología de huevo similar en especies T.
saginata y T. solium.
Morfología de larba distintiva.

24. Hymenolepis nana: Huevos ovales con
dos engrosamientos polares cada uno con
4 filamentos polares finos.

25. Hymenolepis diminuta: Huevos
ovales carece de filamentos polares.

26. Uncinarias: No se diferencian entre sí en la
fase de huevo. Son ovoides con capa hialina,
delgada y transparente.

27. Enterobius vermiculari:
Huevo ovoide con larva en su interior.

28. Strongyloides stercolaris
Se aprecian las larvas rabditoides hembras
(cuerpo alargado) y machos (tiende a enrollar
parte de su cuerpo.

29. PROCESAMIENTO DE MUESTRAS
1. Identificar la muestra
2. Observar y anotar cuidadosamente las
características Macroscópicas.
3. Colocar 5 ml de Solución Salina 0.85% en
un vaso o recipiente
4. Agregar 1 g de materia fecal, mezclar y
homogeneizar.
5. Colocar en un segundo vaso un colador o
gasa doble con papel pH.
6. Colar la solución obtenida en el primer
vaso hacia el vaso dos.
7. Observar la cantidad de restos alimenticios
(+) y el valor de pH. Anota.
8. La solución colada se transfiere a un tubo
de centrífuga.

30. 7. Centrifugar a 2000 rpm por 5 minutos
8. Decantar el sobrenadante y homogeneizar la
muestra.
9. Montar la muestra en lámina portaobjetos:
 De lado izquierdo montar la muestra con
solución salina, y de lado derecho con
lugol + T. tricromica.
7. Observar en el microscopio toda la lámina
primero en seco débil y luego en seco fuerte.
 Recordar: en seco débil se cierra el diafragmaRecordar: en seco débil se cierra el diafragma
y en seco fuerte abrir un poco el diafragma yy en seco fuerte abrir un poco el diafragma y
subir el condensadorsubir el condensador
 En seco débil se inspecciona toda la lámina yEn seco débil se inspecciona toda la lámina y
en seco fuerte se observan las estructurasen seco fuerte se observan las estructuras
sospechosas de ser parásitos.sospechosas de ser parásitos.
7. Anotar y reportar adecuadamente.

31.  Rápida y sencilla
 El citoplasma de los protozoos se observa azul
verdoso con tintes púrpura.
 Los quistes se observan anaranjado a rojizo, con
cromatina, cuerpos cromatoidales de color rojo a
púrpura.
 Los eritrocitos y bacterias de color rojo o púrpura.
 El fondo de la preparación es verdosa
 Los huevos y larvas se tiñen de rojo o café-cobrizo.

32. Preguntas???