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Poxvirus
Este documento proporciona información sobre varios virus de la viruela incluyendo el virus de la viruela bovina, el virus de la viruela caprina y ovina, y el virus de la viruela aviar. Describe las características morfológicas, los mecanismos de patogenicidad, los signos clínicos, el diagnóstico y la prevención y control de estas enfermedades virales que afectan principalmente al ganado y las aves de corral.
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Poxvirus
- 1. FIRST UP CONSULTANTS INSTITUTO POLITÉCNICONACIONAL POXVIRUS 1 ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS UDA: Microbiología Veterinaria
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- 3. FIRST UP CONSULTANTS SUBFAMILIA CHORDOPOXVIRINAE 3 •Dominio: Viridnaviria • Grupo I de la clasificación de Baltimore • Familia: Poxviridae Fig. 1. Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020).
- 4. FIRST UP CONSULTANTS CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS 4 Fig. 1.Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020). • 230 x 270 nm • Cápside ovalada de conformación compleja • Envueltos en su mayoría • DNA dc líneal 130-375 kpb • RNA polimerasa dependiente de DNA • Genes tempranos, intermedios y tardíos
- 5. FIRST UP CONSULTANTS 5 Replicación viral Fig. 2.Replicación viral de los poxvirus. (Flores, C. 2015).
- 6. FIRST UP CONSULTANTS MECANISMOS DEPATOGENICIDAD 6 Fig. 1. Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020). • Vía de entrada: cutánea o respiratoria • Penetración de dermis e infección sistémica • Replicación en macrófagos • Diseminación a ganglios linfáticos • Primera viremia en hígado y bazo • Segunda viremia cutánea
- 7. FIRST UP CONSULTANTS FACTORES DEVIRULENCIA 7 Fig. 1. Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020). • Producción de proteínas que interfieren con la activación del complemento • Virocinas y viroceptores • Producción de ligandos que evitan la quimiotáxis e inhiben apoptosis.
- 8. FIRST UP CONSULTANTS VIRUS DELA VIRUELA BOVINA 8
- 9. FIRST UP CONSULTANTS GÉNERO: ORTHOPOXVIRUS 9 •Epizootiología: Roedores hospederos principales, vacas, felinos, elefantes y humanos • Ciclozoonosis • Afecta a vacas lecheras Fig. 3. Vaca Holstein. (Oliva, E. 2015).
- 10. FIRST UP CONSULTANTS SIGNOS 10 • Morbilidad70-90%, Mortalidad 5-10% • Periodo de incubación: 12-21 días • Fiebre, abatimiento, conjuntivitis, lagrimeo. • Erupciones cutáneas con zonas eritematosas y se convierten en pápulas. • Formación de úlceras en patas y hocico Fig. 4. Signos de viruela bovina. A. Pápulas que forman nódulos y B. Acercamiento de la erupción cutánea. (Marian, C. 2018). A B
- 11. FIRST UP CONSULTANTS NECROPSIA 11 • Edemas,vasculitis y necrosis en epidermis y dermis. • Pápulas en ojos, hocico, tráquea, rumen, abomaso, vulva, ubre y pezones. Fig. 5. Pápulas en ubre. (Erch, R. 2018).
- 12. FIRST UP CONSULTANTS DIAGNÓSTICO 12 • Diagnósticodiferencial: neumonía parasitaria y linfoadenitis caseosa (Sarna). • Muestras: biopsia de piel, lesiones pulmonares o suero. • Aislamiento viral en embrión de pollo o en cultivo celular. (Presencia de inclusiones intracitoplasmáticas). Fig. 6. Inclusiones intracitoplasmáticas en células epiteliales ocasionadas por poxvirus. (Vargas, D., et al. (2011).
- 13. FIRST UP CONSULTANTS DIAGNÓSTICO 13 • Serología:ELISA, inmunofluorescencia indirecta • Microscopia electrónica con tinciones negativas. Fig. 7. Cowpox virus. Micrografía electrónica (Marian, C. 2018).
- 14. FIRST UP CONSULTANTS PREVENCIÓN YCONTROL 14 • Eliminación adecuada de cadáveres y desechos en la granja. • Desinfección rigurosa • Control del paso del ganado y de vehículos en la explotación • Confinamiento mínimo de 45 días después de la recuperación por la infección Fig. 3. Vaca Holstein. (Oliva, E. 2015).
- 15. FIRST UP CONSULTANTS 15 VACUNA • Vacunacon virus atenuado por vía subcutánea o intradérmica Fig. 8. Vacunación de bovinos. (Estrada, C. 2019).
- 16. FIRST UP CONSULTANTS VIRUS DEVIRUELA CAPRINO Y OVINO 16
- 17. FIRST UP CONSULTANTS GÉNERO: CAPRIPOXVIRUS 17 Fig.9. Hospederos susceptibles del género Capripoxvirus. (Players, L. 2018). • Epizootiología: Ovejas y cabras jóvenes • Diversidad de vías de transmisión (respiratoria más común)
- 18. FIRST UP CONSULTANTS SIGNOS 18 • Morbilidadhasta 75% • Mortalidad <10% pero en hospederos susceptibles hasta 100% • Periodo de incubación: 4 a 21 días • Signos: Fiebre, pápulas, nódulos que se desprenden • Lesiones en hocico, patas, glándulas mamarias • Necropsia similar a VVB Fig. 10. Signos característicos de virus de viruela en caprinos y ovinos. A. lesiones en hocico y B. pápulas en ubres. (Players, L. 2018). A B
- 19. FIRST UP CONSULTANTS DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL 19 •Ectima contagioso • Dermatofitosis • Sarna • Estreptotricosis • Peste de pequeños rumiantes. Fig. 11. Lesiones a la necropsia de virus de viruela caprino. (Piad, C. 2004).
- 20. FIRST UP CONSULTANTS DIAGNÓSTICO 20 Fig. 11.Lesiones a la necropsia de virus de viruela caprino. (Piad, C. 2004). • Muestras: Biopsia, raspado de lesiones cutáneas • Microscopia electrónica • Aislamiento del virus • Inmunofluorescencia • PCR con RFLP • Inmunodifusión en gel de agar (AGID) • ELISA • Contrainmunoelectroforésis • Western blot
- 21. FIRST UP CONSULTANTS PREVENCIÓN YCONTROL 21 • Limpieza y desinfección estricta de los establecimientos • Eliminar adecuadamente a los animales muertos • Cuarentena • Vacunación Fig. 12. Cuarentena de ovinos. (ICA. 2018).
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- 23. FIRST UP CONSULTANTS GÉNERO: AVIPOXVIRUS 23 •Epizootiología: Gran variedad de aves. (Gallinas y pavos) • Metazoonosis Fig. 13. Hospederos susceptibles del virus de viruela aviar. (Ballitsky, A. 2020).
- 24. FIRST UP CONSULTANTS SIGNOS 24 • Pápulas,pústulas, costras en la cabeza y en las patas y conjuntivitis • Baja producción de huevos • Periodo de incubación: 4-10 días • Morbilidad 60%, Mortalidad <50% Fig. 14. Signos de la viruela aviar en gallinas- (Dinev, I. 2019).
- 25. FIRST UP CONSULTANTS SIGNOS Fig. 15.Conjuntivitis ocasionada por viruela aviar. (Dinev, I. 2019). Fig. 16, costras en patas por viruela aviar. (Dinev, I. 2019). 25
- 26. FIRST UP CONSULTANTS NECROPSIA 26 • Placas amarillentas enlas cavidades nasal y bucal Fig. 17. Placas amarillas en cavidad oral. (Dinev, I. 2019).
- 27. FIRST UP CONSULTANTS DIAGNÓSTICO 27 • Diferencial:Herpesvirus, laringotraqueitis infecciosa. • Aislamiento viral • RFLP • Serología: AGID, hemaglutinación pasiva, IFI, IFD, ELISA, inmunoperoxidasa, western blot. Fig. 18. Propagación viral en embrión de pollo. (Islas, J., et al. 2011).
- 28. FIRST UP CONSULTANTS PREVENCIÓN YCONTROL 28 • Control de factores ambientales • Vacuna (virus vivo atenuado) Fig. 19. Vacunación contra el virus de la viruela aviar. (OIE. 2018).
- 29. FIRST UP CONSULTANTS B IB L I O G R A F Í A 29 • Estrada, C. (2019). Vacunas que se deben tener en cuenta de los primeros meses de vida para el ganado. La República, Núm. 13, Bogotá, pp. 32-37. • Gilberto, D., et al. (2011). Avian pox virus in a common barn owl in southern Brazil. Pesquisa Veterinaria Brasileira, Vol. 31, Núm. 7, Brasil, pp. 2-4. • Marian, C. (2018). Cowpox virus infection. Recuperado el 4 de abril de 2021 de http://www.abcdcatsvets.org/cowpox-virus-infection/ • Erch, R. (2018). La viruela en vacas: Tratamiento y síntomas. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://es.erch2014.com/biznes/4938-ospa-u-korov-lechenie-i-simptomy.html • López, P. (2011). Viruela bovina. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://www.ecured.cu/Viruela_bovina • Flores, C. y G. Cantón. (2015). Ciclo de replicación viral de poxvirus. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://www.researchgate.net/figure/Figura-1-Ciclo-de-replicacion-viral-de-los- Poxvirus-a-partir-de-las-2-particulas-virales_fig1_296672013 • SPL. (2020). Small pox life cycle. Science Photo Library, UK, pp. 3404 • Adkins, J. (2000). Cowpox virus. Stanford, USA, pp. 341-343. • ICA. (2018). Sanidad e implementación de buenas prácticas ganaderas en la producción de ovinos y caprinos. Instituto Colombiano Agropecuario, Tolima, pp. 2 y 3. • Players, L. (2018). Peculiaridades del desarrollo de viruela en caso de derrotas de ovejas y cabras. Recuperado el 4 de abril de https://licklogplayers.org/granja/peculiaridades-del- desarrollo-de-la-viruela-en/ • Piad, C. (2004). Útero. CFSPH, Iowa, pp. 4234. • Sanclemente, G. y L. Correa. (2010). Poxvirus que causan enfermedad en los seres humanos. ACD, Colombia, Vol. 18, Núm. 67, pp. 67-77. Disponible en: https://revistasocolderma.org/sites/default/files/poxvirus_que_causan_enfermedad_en_los_seres_humanos.pdf • USDA. (2008). Virus del ovino y del caprino. CFSPH, Iowa, Disponible en: https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/viruela_ovina_y_viruela_caprina.pdf • Islas, J., et al. (2011). Embrión de pollo. FES, México, 52 pp. • Shivaprasad, H. (2014). Herramientas de diagnóstico y prevención. CEU, California, 91 pp. • News, A. (2020). Viruela aviar. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://avicultura.info/enfermedades/viruela- aviar/#:~:text=Un%20diagn%C3%B3stico%20presuntivo%20puede%20realizarse,pudieran%20entregarse%20en%20mismo%20d%C3%ADa. • Dinev, I. (2019). Diseases of poultry. Wiley, USA, 2952 pp. Disponible en: https://www.elsitioavicola.com/publications/6/enfermedades-de-las-aves/276/viruela-aviar-va/ • Ballitsky, A. (2020), Aves domésticas y tropicales. ERP, Holanda, 239 pp. • OIE. (2018). Viruela aviar. Recuperado de https://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Health_standards/tahm/3.03.10_%20Viruela_aviar.pdf