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Esteroidogénesis y diferenciación sexual en el pejerrey Lic. Martín Blasco Director: Dr. Gustavo Somoza1 Co-Directora: Dra. Denise Vizziano2 IIB-INTECH Dpto. Oceanología. UdelaR.URUGUAY  1
Composición de la tesis Cuantificación de andrógenos Perfiles de expresión de marcadores Síntesis de andrógenos  en órganos del pejerrey 2
Introducción. Determinación sexual y diferenciacióngonadal ♀ Determinación sexual Diferenciación gonadal ♂ 3 Devlin & Nagahama, 2002
Introducción. Mecanismos de determinación sexual ESD GSD GSD Temperatura XX XY pH ZW ZZ ♀ ♂ ♀ ♂ 4
Introducción. TSD en el pejerreybonaerense Odontesthesbonariensis ♀ 17° C ♂ 29° C 5 Strüssmann et al. 1997, Ito 2005
Introducción. Determinación sexual y diferenciación gonadal eclosión Diferenciación  Gonadal EST TFH (17°C) TFMix (25°C) TFM (29°C) 0               1              2               3              4              5              6               7             8            9 semanas post-eclosión 6
7 Introducción. Diferenciaciónmorfológica en el pejerrey ♀ ♂ Determinación Primerossignos de diferenciación
8 Introducción. Marcadorestempranos de la diferenciación ♀ cyp19a1a fst foxl sox9 nr0b1  dax1  ♂ dmrt1 nr5a1 sf-1 amh
Introducción. Sensibilidad a los esteroides 9 Adaptado de Piferrer, 2002
Introducción. Hipótesis los esteroidescomomediadores de la dif. Estrógenos Determinación  sexual Diferenciación gonadal ¿Andrógenos? ♀ Estrógenos Yamamoto, T-O ,1969 Inh. Arom ♂ Andrógenos 10
11 Introducción. Biosíntesis de esteroidessexuales en peces
Objetivo general Estudiar el rol de los andrógenos 11-oxigenados en el proceso de determinación-diferenciación sexual del pejerrey Objetivos particulares ,[object Object]
Caracterización de enzimas clave para la síntesis de andrógenos.
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Análisiscuantitativo de los andrógenos.12
Desarrollo de la estrategia de estudio La producción de esteroides es muydifícil de estudiar en los estadíostempranos Biología molecular para el estudio de la capacidadandrogénica. ¿Quéandrógenos son importantes?  ¿Quéenzimasestáninvolucradas? Elección de genes. 13
14 Capítulo I. Introducción. Estudio de la esteroidogénesis Espermatogénesis Caracteressexualessecundarios
Capítulo I. Materiales y métodos. “Bioquímicaclásica” Resolución Extracción Incubación TLC T. indif. Muestras T. juv. Etc. HPLC Fraccionamiento Identificacióndefinitiva DPMs/mg DPMs/pico 15
Cap. I. Resultados. Testículosanalizados Diferenciación Juveniles Adultos mpe IGS% Indiferenciado Experimento 16
Cap. I. Resultados. Síntesis de 11-KT en la gónadaindiferenciada (TFM) Semana 5 (TFM) Incubado con A4 11-KT 17
18 Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en testículos de juveniles Meses 6,5  Incubados con 17P
19 Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en testículosmaduros (17P) Incubados con 17P
Cap. I. Resultados. Identificación de 11-KT, 11β-OHA4 y 11-KA4 20
Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en ovarios (P.V.) Incubados con A4 ó 17P 21
Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en riñón Riñón 11β-OHA4 22
Cap. I. Discusión y conclusiones.  23 Semana 5 TFM 11-KT 11-KT ¿Hígado? Juveniles ¿Sangre? 11-KT 11β-OHA4 Adultos
24 Cap. I. Discusión y conclusiones.  A4 11β-OHA4 11-KA4 11-KT
Cap. I. Discusión y conclusiones. Androgénesis en otrosórganos Riñón 11β-OHA4 Ovario SNC Hígado 25
Potencialandrogénicodurante el desarrollogonadal ¿Andrógenos? Enzimas clave en la síntesis de andrógenos (P450-scc y P450-11b) Estudio de la expresión en tejidos Expresióntempranadurante el TSD y la diferenciación a TFM y TFH 26
Capítulo II. Patrones de expresióngénica Caracterización de las secuencias de cyp11a1 y cyp11b1 OligosqPCR Testículos ♀ Tejidos ♂ TFH TFM Sitios de expresión Perfiles de expresión t= 1, 2, ..9 spe 27
Capítulo II. Troncos y gónadas pre- y post-diferenciación 28
Cap. II. Resultados. Secuencia y características de la cyp11a1 Región de unión a esteroide (Tsujita et al, 1993). Región de unión a adrenodoxina (Wada et al, 1992). Región de coordinación del grupohemo. 29
Cap. II. Resultados. Secuencia y características de la cyp11b1 Sitio de unión a esteroides Unión a oxígeno (C) Región de Ozol (D) Sitioaromático, (E)  Sitio de unión al hemo 30
Cap. II. Resultados. P450-scc y P450-11b porClustalW 31
Cap. II. Resultados. Sitios de expresión de cyp11a1 y cyp11b1 ♀ ♂ 32
Cap. II. Resultados . Expresión de cyp11a1 y cyp11b1 en troncos (1-8) 33
Cap. II. Resultados . Expresión de cyp11a, 11b1, 19a1a en gónadas 34
35 Cap. II. Resultados . Marcadores de la diferenciacióngonadal
Cap. II. Discusión y conclusiones cyp19a1a ♀ nr5a1 ♂ 11-KT cyp19a1a cyp11b1 amh sox9 dmrt1 nr5a1 36
Capítulo III. Introducción. Determinacióncuantitativa de esteroides Bioquímicaclásica Métodosdirectos RIAs EIAs ,[object Object],¿ESTEROIDES? ,[object Object]
Necesidad de conjugación (haptenos)
Reactividadcruzada
Disponibilidadcomercial (síntesisa medida)+ RIA(EIA)  LC + fraccionador + extracción + RIA (3 días) 37
38 Capítulo III. Estrategia HPLC-ESI-MS Esteroides de interésmedidospor RIA en un modeloconocido Carassiusauratus
Cap. III. Materialesy métodos. Ionesmoleculares y linealidad Estándares de esteroides  1 ppm SCAN LC-MS ENFOCADO 0,2-50 ppb 39
Cap. III. Materiales y métodos. Determinaciones en plasma Evaporación Extracto en fase móvil (CH3CN:H2O) Histología gonadal  [HE:E] Extracción orgánica [Partición-Congelación] Centrifugación 30 min x 350 rcf Extracción por punción del pedúnculo caudal LC-MS 40
Cap. III. Resultados. Espectrosde masaen modo SCAN 41
Cap. III. Resultados. Resolución, LD, LQ en modoenfocado (SIM) LQ LD 42
43 Cap. III. Resultados . Concentracionesséricas en goldfish

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Steroidogenesis and differentiation in the pejerrey Odontesthes bonariensis. Ph. D. Thesis Martín. Blasco

  • 1. Esteroidogénesis y diferenciación sexual en el pejerrey Lic. Martín Blasco Director: Dr. Gustavo Somoza1 Co-Directora: Dra. Denise Vizziano2 IIB-INTECH Dpto. Oceanología. UdelaR.URUGUAY 1
  • 2. Composición de la tesis Cuantificación de andrógenos Perfiles de expresión de marcadores Síntesis de andrógenos en órganos del pejerrey 2
  • 3. Introducción. Determinación sexual y diferenciacióngonadal ♀ Determinación sexual Diferenciación gonadal ♂ 3 Devlin & Nagahama, 2002
  • 4. Introducción. Mecanismos de determinación sexual ESD GSD GSD Temperatura XX XY pH ZW ZZ ♀ ♂ ♀ ♂ 4
  • 5. Introducción. TSD en el pejerreybonaerense Odontesthesbonariensis ♀ 17° C ♂ 29° C 5 Strüssmann et al. 1997, Ito 2005
  • 6. Introducción. Determinación sexual y diferenciación gonadal eclosión Diferenciación Gonadal EST TFH (17°C) TFMix (25°C) TFM (29°C) 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 semanas post-eclosión 6
  • 7. 7 Introducción. Diferenciaciónmorfológica en el pejerrey ♀ ♂ Determinación Primerossignos de diferenciación
  • 8. 8 Introducción. Marcadorestempranos de la diferenciación ♀ cyp19a1a fst foxl sox9 nr0b1  dax1 ♂ dmrt1 nr5a1 sf-1 amh
  • 9. Introducción. Sensibilidad a los esteroides 9 Adaptado de Piferrer, 2002
  • 10. Introducción. Hipótesis los esteroidescomomediadores de la dif. Estrógenos Determinación sexual Diferenciación gonadal ¿Andrógenos? ♀ Estrógenos Yamamoto, T-O ,1969 Inh. Arom ♂ Andrógenos 10
  • 11. 11 Introducción. Biosíntesis de esteroidessexuales en peces
  • 12.
  • 13. Caracterización de enzimas clave para la síntesis de andrógenos.
  • 14. Expresión temprana de las enzimas de la androgénesis.
  • 16. Desarrollo de la estrategia de estudio La producción de esteroides es muydifícil de estudiar en los estadíostempranos Biología molecular para el estudio de la capacidadandrogénica. ¿Quéandrógenos son importantes? ¿Quéenzimasestáninvolucradas? Elección de genes. 13
  • 17. 14 Capítulo I. Introducción. Estudio de la esteroidogénesis Espermatogénesis Caracteressexualessecundarios
  • 18. Capítulo I. Materiales y métodos. “Bioquímicaclásica” Resolución Extracción Incubación TLC T. indif. Muestras T. juv. Etc. HPLC Fraccionamiento Identificacióndefinitiva DPMs/mg DPMs/pico 15
  • 19. Cap. I. Resultados. Testículosanalizados Diferenciación Juveniles Adultos mpe IGS% Indiferenciado Experimento 16
  • 20. Cap. I. Resultados. Síntesis de 11-KT en la gónadaindiferenciada (TFM) Semana 5 (TFM) Incubado con A4 11-KT 17
  • 21. 18 Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en testículos de juveniles Meses 6,5 Incubados con 17P
  • 22. 19 Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en testículosmaduros (17P) Incubados con 17P
  • 23. Cap. I. Resultados. Identificación de 11-KT, 11β-OHA4 y 11-KA4 20
  • 24. Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en ovarios (P.V.) Incubados con A4 ó 17P 21
  • 25. Cap. I. Resultados. Esteroidogénesis en riñón Riñón 11β-OHA4 22
  • 26. Cap. I. Discusión y conclusiones. 23 Semana 5 TFM 11-KT 11-KT ¿Hígado? Juveniles ¿Sangre? 11-KT 11β-OHA4 Adultos
  • 27. 24 Cap. I. Discusión y conclusiones. A4 11β-OHA4 11-KA4 11-KT
  • 28. Cap. I. Discusión y conclusiones. Androgénesis en otrosórganos Riñón 11β-OHA4 Ovario SNC Hígado 25
  • 29. Potencialandrogénicodurante el desarrollogonadal ¿Andrógenos? Enzimas clave en la síntesis de andrógenos (P450-scc y P450-11b) Estudio de la expresión en tejidos Expresióntempranadurante el TSD y la diferenciación a TFM y TFH 26
  • 30. Capítulo II. Patrones de expresióngénica Caracterización de las secuencias de cyp11a1 y cyp11b1 OligosqPCR Testículos ♀ Tejidos ♂ TFH TFM Sitios de expresión Perfiles de expresión t= 1, 2, ..9 spe 27
  • 31. Capítulo II. Troncos y gónadas pre- y post-diferenciación 28
  • 32. Cap. II. Resultados. Secuencia y características de la cyp11a1 Región de unión a esteroide (Tsujita et al, 1993). Región de unión a adrenodoxina (Wada et al, 1992). Región de coordinación del grupohemo. 29
  • 33. Cap. II. Resultados. Secuencia y características de la cyp11b1 Sitio de unión a esteroides Unión a oxígeno (C) Región de Ozol (D) Sitioaromático, (E) Sitio de unión al hemo 30
  • 34. Cap. II. Resultados. P450-scc y P450-11b porClustalW 31
  • 35. Cap. II. Resultados. Sitios de expresión de cyp11a1 y cyp11b1 ♀ ♂ 32
  • 36. Cap. II. Resultados . Expresión de cyp11a1 y cyp11b1 en troncos (1-8) 33
  • 37. Cap. II. Resultados . Expresión de cyp11a, 11b1, 19a1a en gónadas 34
  • 38. 35 Cap. II. Resultados . Marcadores de la diferenciacióngonadal
  • 39. Cap. II. Discusión y conclusiones cyp19a1a ♀ nr5a1 ♂ 11-KT cyp19a1a cyp11b1 amh sox9 dmrt1 nr5a1 36
  • 40.
  • 43. Disponibilidadcomercial (síntesisa medida)+ RIA(EIA) LC + fraccionador + extracción + RIA (3 días) 37
  • 44. 38 Capítulo III. Estrategia HPLC-ESI-MS Esteroides de interésmedidospor RIA en un modeloconocido Carassiusauratus
  • 45. Cap. III. Materialesy métodos. Ionesmoleculares y linealidad Estándares de esteroides 1 ppm SCAN LC-MS ENFOCADO 0,2-50 ppb 39
  • 46. Cap. III. Materiales y métodos. Determinaciones en plasma Evaporación Extracto en fase móvil (CH3CN:H2O) Histología gonadal [HE:E] Extracción orgánica [Partición-Congelación] Centrifugación 30 min x 350 rcf Extracción por punción del pedúnculo caudal LC-MS 40
  • 47. Cap. III. Resultados. Espectrosde masaen modo SCAN 41
  • 48. Cap. III. Resultados. Resolución, LD, LQ en modoenfocado (SIM) LQ LD 42
  • 49. 43 Cap. III. Resultados . Concentracionesséricas en goldfish
  • 50.
  • 52. TrazadorEIA-RIA + RIA LC + fraccionador + extracción (acondicionamiento) + RIA (3 días)
  • 53. Cap. III. Conclusiones Cuantificaciónsimultánea de T, 11-KT y 11β-OHA4. Los niveles de detección y cuantificaciónpermitenestudiosfisiológicos. Compatible con otrossistemas (porej. MS/MS). Estudio de bioquímica de esteroides (metabolómica). 45
  • 54. 46 Cap. III. Proyecciones Relacióngónada Circulación Estudio de viasmetabólicascompletas Aplicación Análisis de 11-KT/11β-OHA4 en otrosvertebrados
  • 55. 47 Cap. III. Proyecciones. Anticipo. Macho espermiante Suero
  • 56. 48 Conclusionesgenerales Identificación de los principalesandrógenostesticulares. A4 11β-OHA4 11-KA4 11-KT Machos en diferenciación molecular  11-KT Dimorfismo en cyp11a1 y cyp11b1  Desarrollo testicular temprano Herramientasparaestudio de andrógenos (cuali-cuantitativo)
  • 57. 49 ¿Preguntas? ¿? ¿? ¿? ¿?