Este documento describe los parámetros ambientales y requerimientos nutricionales de microcrustáceos de agua dulce como Daphnia y Moina, los cuales son importantes en acuacultura. Explica las condiciones óptimas para el cultivo de estas especies, incluyendo temperatura, oxígeno disuelto y pH. También resume diferentes medios y nutrientes recomendados para sistemas de cultivo intensivos y extensivos.

1. VI. CULTIVO DE MICRCORUSTACUOS
DE AGUA DULCE
1. CONSIDERACIONES GENERALES
Dentro de esta clase de organismos existen dos géneros de agua dulce de gran importancia en
Acuacultura, que son Daphnia y Moina, las cuales se localizan en diversos medios. El género
Daphnia comprende más de 20 especies, de las cuales las más conocidas son: Daphnia magna, D.
pulex, D. longispina, D. strauss.
En relación al género Moina podemos mencionar a las especies: Moina rectirostris, M.
macrocopa, M. brachiata y M. affinis.
1.1) Morfología
Estos organismos se caracterizan por poseer un cuerpo comprimido lateralmente y ovalado
(Figura 24); no se distinguen segmentos como en otros crustáceos. Presentan dimorfismo sexual
marcado, la hembra es más grande que el macho (Figura 25). Presentan un carapacho de quitina
transparente, las antenas o apéndices con numerosas setas; ojos compaestos y simples (ojo
nauplio). Una cavidad embriónica con huevos y embriones situados en la parte dorsal, entre el
carapacho y el dorso del cuerpo. Para la identificación de especies son importantes los apéndices
toráxicos en la forma y número de espinas y setas (Figura 24).
2. PARAMETROS AMBIENTALES
2.1) Hábitat
Son organismos ampliamente distribuidos en lagos, reservorios artificiales, charcos temporales y
aguas de desecho. Poseen huevos de resistencia llamados efipios con una envoltura quitinosa que
el aire y los animales pueden distribuir. Son abundantes en ambientes con alta concentración de
materia orgánica en donde proliferan hacterias, levaduras y microalgas. Especies de Daphnia
pueden cohabitar con Moina, Copépodos y Brachiópodos.
2.2) Temperatura
D. magna es especialmente resistente a cambios extremos de temperatura desde O°C a 22°C y se
consideran 18°C-20°C como su temperatura óptima.
D. longispina, D. pulex y Moina rectirostris no sobreviven a cambios extremos de temperatura,
se desarrollan en temperaturas de 28°C – 29°C.
Moina macrocopa se desarrolla también en un rango amplio de temperatura desde 5°C a 30°C y
se considera de 24°C – 26°C como su temperatura óptima.

2. Moina brachiata crece en temperaturas de 8°C – 13°C.
2.3) Requerimientos de Oxígeno
Estos organismos habitan en medios donde la concentración de O2 es variable, ya que pueden
crecer tanto en completa saturación de O2 hasta concentraciones muy bajas. Estas
concentraciones están en relación a temperatura, concentración de materia orgánica,
concentración de microalgas, etc.
La supervivencia en medios pobres de oxígeno depende de la capacidad de sintetizar
hemoglobina. Este fenómeno está en relación directa del oxígeno ambiental. Un incremento en
hemoglobina está en razón directa de alta temperatura y excesiva densidad de población. Incluso
la hemoglobina está presente también en los huevos y la síntesis de hemoglobina también está
relacionada con la concentración de CO2 ambiental.
FIG. 23) Daphnia pulex (hembra) Vollmer, 1951
1. Antenula 12. Cámara embrionaria
2. Antena 13. Embrios
3. Músculos de las antenas 14. Proceos abdominales

3. 4. Ojos compuestos 15. Postabdomen
5. Ganglio óptico 16. Ano
6. Músculo del ojo 17. Huevo toráxico
7. Cerebro 18. Saco respiratorio
8. Procesos hepáticos 19. Seta filtradora
9. Intestino 20. Carapacho
10. Corazón 21. Glándula maxilar
11. Ovario 22. Primer par de apéndices
23. Mandíbula
FIG. 24) Estructura de antenulas en macho y hembra de D. magna (Irleva, 1973).

4. FIG. 25) Huevo de resistencia efipios en D. pulex (a) y D. magna (b). (Irleva, 1973).
2.4) Requerimientos en pH
El pH óptimo en estas especies es difícil de determinar. En términos generales, el pH oscila entre
7.1 – 8 y por ejemplo en D. pulex el pH óptimo es de 5 a 6.
2.5) Otros Requerimientos
Existe en estas especies una alta sensibilidad a cambios del equilibrio iónico a diferentes
concentraciones de cationes en el medio.
Las reacciones de Daphnia a la presencia de sales de fosfatos y nitratos (0.5 mg/l) es interesante,
pues estimula la reproducción y la madurez sexual.
Los huevos contienen carotenoides y su síntesis requiere de la presencia de luz. Es importante
mencionar que la madurez sexual también está influenciada por la presencia de luz.
La abundancia y distribución de estas especies depende de la variación estacional pues el número
y tamaño de huevos de resistencia partenogenéticos y la medurez sexual dependen de las
variaciones de T°, S‰, pH y luz, entre otros. Un exceso de luz solar reduce considerablemente
una población.
En relación a la producción de huevos Ephippia (Figura 26) (huevos de resistencia
partenogenéticos) dependen de la temperatura principalmente. Por ejemplo, en Moina rectirostris
éstos se producen a 20~27°C en M. macrocopa a 14°C.
La alimentación en Daphnia y Moina es más compleja que en Branchiópodos, ya que estas
especies se alimentan de bacterias, levaduras y microalgas. La Daphnia se adapta a cambios
ambientales y puede adaptarse a ambientes nuevos en tres - siete días, reproduciéndose
partenogenéticamente. Las colectas de estos organismos de los medios naturales para su cultivo,
deben hacerse en Primavera y Verano.
3. TIPOS DE CULTIVO
La producción de Daphnia y Moina en condiciones de cultivo es relativamente sencilla por su
resistencia a variaciones ambientales y diversas dietas altenativas que se pueden usar como se ha
mencionado en párrafos anteriores.
Como en otras especies de alimento vivo, las alternativas de producción de estas especies pueden
ser: cultivo en laboratorio para fines de investigeción, cultivo intensivo y cultivo extensivo. La
Tabla 33 muestra la producción de microcrustáceos de agua dulce con diferentes especies de
microalgas y bacterias.
3.1) Condiciones Optimas de Cultivo
T°C - 15°C a 25°C

5. O2 - 3 a 6 mg/l
pH - (6.8 – 7.8)
Grado de Oxidación - 14.8–26.2 mg O2/l
3.2) Medios de Cultivo Recomendables
 Medios minerales (sales de fosfatos y nitratos)
 Medios orgánicos (estiércol de caballo, res, cerdo, gallina)
 Medios enriquecidos (combinación de medios orgánicos e inorgánicos o estractos de
suelo
Se recomienda cosechar estos organismos a intervalos regulares para mantener un equilibrio en
el cultivo. En condiciones óptimas de cultivo para iniciar la cosecha (de 20 a 25 días después del
inicio del cultivo), se puede obtener una biomasa de 10 g/m3. Las Tablas 34 y 35 muestran los
diferentes medios de cultivo recomendables para sistemas intensivos y extensivos.
4. IMPORTANCIA NUTRICIONAL
Las especies más estudiadas en relación de su aporte nutricional para la acuacultura son Daphnia
y Moina. La Tabla 36 nos muestra el contenido nutricional reportado para Daphnia.
Estas dos especies de cladóceros de agua dulce han sido seleccionadas dentro del grupo de
zooplancton que ofrece alto contenido nutricional y facilidades de producción en cultivo.
La Tabla 37 muestra la composición mineral y proximal de cinco especies seleccionadas como
alimento vivo; entre éstas se encuentran Daphniay Moina.
Es importante considerar que el contenido nutricional de estas especies está en función directa
del sustrato en el que se desarrollan. La Tabla 5 muestra la composición de aminoácidos
esenciales de estas cinco especies seleccionadas; dentro de éstas, Daphnia y Moina tienen un
buen aporte.
Los cladóceros en Acuacultura han sido objeto de estudios muy serios en países desarrollados
como el Japón y La Unión Soviética. Estos trabajos han permitido conocer las condiciones
óptimas para su producción en cultivo masivo, así como las alternativas de producción en
diferentes medios de cultivo.
TABLA 34. PRODUCCION DE MICROCRUSTACEOS DE AGUA DULCE CON
DIFERENTES ALIMENTOS (IRLEVA I.V., 1973)
ESPECIE ALIMENTO
CONCENTRACION
DE ALIMENTO
ccl/ml.
T°C
CONSUMO
DE
ALIMENIO
cel/hr
REFERENCIA
Daphnia
magna
bacterias
coliformes
1,000 15 200 Manuflcva,
19642,000 700

6. 3,000 1,050
4,000 1,700
D. magna
Chlorella
pyrenoidosa
410 18 124
Sushchenya,
1958
750 255
1,140 a 299
1,580 24 393
2,160 405
2,300 327
D. magna Soenedesmus sp
8 58 Vasilleva,
1953415 275
D. magna
Azotobacter y
bacteria Coli
22
Rodina, 1984a
470
D. pulex
Chlamydomonas
reinhardti
25 20 4.5
Richman, 1958
50 5.8
75 13.8
100 19.1
Moina
affinis
Soenedesmus
dimorphus
6,000 24.0
Shirota, 1966
26.5
Moina sp Soenedesmus sp
200 21±2 16.6 Torrentera,
1986
(observación
personal)
500 48.0
TABLA 35. MEDIO DE CULTIVO PARA “PULGA DE AGUA” PARA
SISTEMA INTENSIVO (SEPESCA-ACUACULTURA, 1983, COM. PERS.)
-I-
1. Póngase 6.6. gr de salvado de trigo en 1 litro de agua.
2. Dejar fermentar en un lugar moderadamente caliente durante una semana.
3. Diluir el litro a 100 litros de agua.
4. Agregar 25 a 50 gr de Cloruro de Sodio (sal).
5. Agregar 25 a 50 gr de Sulfato de Calcio.
6. Colocar la solución en un sitio donde le de bastante sol.
7. Sembrar el medio con “Pulgas de Agua”.
-II-

7. 1. Póngase 6.6 gr de salvado de trigo en 1 litro de agua.
2. Dejar fermentar en un lugar moderadamente caliente durante una semana.
3. Diluir 1.5 litros en 100 litros de agua.
4. Agregar 25 a 50 gr de Cloruro de Sodio (sal).
5. Agregar 25 a 50 gr de Sulfato de Calcio.
6. Agregar 5 a 10 gr de hígado cocido en rebanadas de 1 mm de grueso. El hígado debe
cocerse lo más rápidamente hasta que las proteínas se coagulen.
7. No es necesario poner la solución al sol.
8. Siémbrese el medio con “Pulgas de Agua”.
9. Si falta oxígeno disuelto en la solución, debe retirarse un poco de agua (5 litros) y agregar
la misma cantidad de agua limpia fresca y “aereada”.
10. Se añadirá salvado fermentado e hígado cuando sea necesario.
-III-
1. Mezclar hasta formar una suspensión uniforme 1/4 de paquete de levadura para pan
fresca en 100 cc. de agua.
2. Añádase la suspensión a 70 litros de agua.
3. Debe mantenerse burbejeo de aire en la solución para evitar la falta de oxígeno disuelto.
4. Siémbrese el medio con “Pulga de Agua”.
5. Se agregará la suspensión cada cinco o seis días.
TABLA 36. RESULTADOS DE CULTIVOS DE MICROCRUSTACEOS DE AGUA DULCE
(CLADOCEROS) CON NUTRIENTES
ORGANICOS E INORGANICOS - SISTEMAS INTENSIVO Y EXTENSIVO (IRLEVA, I.V.,
1973)
FUENTE
DE
NUTRIEN
TES
DOSIS DE
FERTILIZA
CION POR
m3 DE
AGUA
NO.
INICIAL
DE
ORGANIS
MOS g/m3
TIEMP
O DE
MADU
RACIO
N DEL
CULTI
VO
(DIAS)
DURACI
ON DEL
CULTIV
O
(DIAS)
BIOMA
SA
MAX.
OBTENI
DA g/m3
COSEC
HA
DIARI
A g/m3
VOLLM
EN
TOTAL
DEL
CULTI
VO
M31H2O
REFEREN
CIA
Excreta de
caballo
1.5 kg
(inicial) 0.75
kg (cada 8–
10 días)
10 20–25 40
Shipet,
1950
Excreta de
caballo
1.5 kg
(inicial) 0.75
kg (cada 8–
10 días)
10 612.5
Asketou,
1954
Infusión
de excreta
de caballo
10 litros 5–50 10–16 9–45 250 25.8 30.6
Meshkowa
, 1957

8. Infusión
de pasto (2
kg/100 1)
10 litros cada
4 días
15–20 15–19 26–47
250–
1,500
34.4
(30–
38.5)
5.5
Meshkova,
1957
Infusión
de excreta
de caballo
y pasto
10 litros cada
2–4 días
(10:3)
10–275 10–24 14–42
250–
1,000
27.3 27.5
Meshkova,
1957
Levadura
proteoliza
da
16–20 g
inicial
30–40 18–20 120–130
800–
1,200
30–50 25–30
Briskina,
1960
8–10 g/5 días
Levadura
proteoliza
da
16–20 gr
inicial
10–40 20–25 180–270 16 280
Briskina,
1960
8–10 g/5 días 26 525
23 557
Fertilizant
es
minerales
37.5 g
nitratos (13
mg N/l) 2
mg/l
superfosfatos
20–40 12 15 13.4 332
Bogatova
&
Askerov,
1958
Fertilizant
es
minerales
37.5 g nitrato
de amonio y
20 gr de
levadura (al
inicio) 19 g
de nitrato de
amonio y 10
g de levadura
c/5 días
50 7
20–25
(verano)
Asketov,
1958
100 5 25–40 20–35 1960
150 3–4
35–45
(invierno
)
Excreta de
caballo
trozos de
vegetales
superfostat
os y
sulfato de
amonio
0.5 – 1 kg 28
Konovalov
& Binting,
1956
Levadura
proteoliza
da y
fertilizante
s
minerales
10:2
0.5 kg 3–4 10–15 106
Askenov,
1960
a
110

9. TABLA 37. CONTENIDO DE AMINOACIDOS
EN Daphnia (IRLEVA I.V., 1973)
Tyrosina 4.27%
Tryptophano 3.62%
Arginina 10.92%
Histidina 2.69%
Cistina 1.17%
Methionina 3.45%
TABLA 38. COMPOSICION MINERAL Y PROXIMAL DE CINCO
ESPECIES
DE ALIMENIO VIVO SELECCIONADO
ESPECIE
Medio de
cultivo
Brachionus
Plicatilis
Tigriopus
japonicus
Acartia
sp
Daphnia
sp
Levadura
Levadura
Levadura
+
Chlorella
Chlorella
Levadura
+
Chlorella
Mezcla% 89.6 89.1 87.6 87.3 88.1 89.3 87.2
Proteína% 7.2 7.9 7.8 9.0 8.5 7.5 8.8
Lipidos% 2.3 2.3 3.8 2.8 1.3 1.4 2.9
Cenizas
%
0.4 0.4 0.5 0.5 2.1 0.7 -
Ca mg/g 0.12 0.26 0.21 0.15 0.39 0.21 0.12
Mg mg/g 0.14 0.17 0.14 0.23 0.76 0.12 0.12
P mg/g 1.48 1.44 1.37 1.31 1.48 1.46 1.85
Na mg/g 0.41 0.30 0.29 0.61 6.63 0.74 1.09
K mg/g 0.35 0.12 0.23 0.84 2.21 0.72 0.92
Fe mg/g 15.9 52.5 43.4 33.8 11.5 72.2 46.4
Zn mg/g 7.4 9.8 8.2 12.3 39.0 12.8 10.0
Mn mg/g 0.4 1.1 1.1 1.0 0.2 13.2 0.5
Cu mg/g 1.1 1.5 1.7 2.4 2.8 1.1 5.8