Ejemplos de Investigación

EVALUACIÓN DE LA CONTAMINACIÓN POR BACTERIAS PATÓGENAS
AMBIENTALES COMO FACTOR CAUSANTE DE INFECCIONES
INTRAHOSPITALARIAS EN PACIENTES DE LA UNIDAD DE CUIDADOS
INTENSIVOS DEL HOSPITAL MILITAR CENTRAL.

I.- Antecedentes del problema:
En los estudios realizados el siglo pasado ya se sospechaba de la presencia de
microorganismos luego se empezó a estudiar la etiología de las enfermedades y se fueron
haciendo nuevos descubrimientos. Antón L. Fue el primero que informo de la presencia de
microorganismos, posteriormente hacia fines del siglo XIX, Pasteur había eliminado con
métodos experimentales el mito de la generación espontánea de las enfermedades , y se
conoció desde entonces que los microorganismos eran la causa de las enfermedades
infecciosas .
Si bien las técnicas actuales permiten una evaluación más directa de su virulencia y
patogenicidad, haciendo que los postulados que en algún momento enuncio Koch resulten
obsoletos, las presunciones fundamentales de estos resultados todavía sirven como base
para vincular de manera inequívoca los microorganismos con las enfermedades que causan.

II.- Planteamiento del Problema:
Las infecciones intrahospitalarias son frecuentes debido a la proliferación y
multiresisitencia de las cepas , los pacientes inmunocomprometidos o debilitados, por
alguna enfermedad, que en su mayoría son los que asisten a los hospitales, son en extremo
susceptibles a infecciones adquiridas en el hospital, después de la colonización de cepas
ambientales o luego de procedimientos invasores como cateterismo, broncoscopia
colposcopia o biopsias quirúrgicas en las cuales se traumatizan o cortan membranas
mucosas y se facilita el ingreso del microorganismo.

El problema seria :
¿Cómo contribuye la contaminación por bacterias patógenas ambientales a la adquisición
de infecciones intrahospitalarias en pacientes atendidos en la unidad de cuidados
intensivos del Hospital Militar Central ?

III.- Enunciado de la Hipótesis :
La contaminación por bacterias patógenas ambientales es un factor determinante para la
adquisición de infecciones intrahospitalarias en pacientes atendidos en la unidad de
cuidados intensivos del Hospital Militar Central.

Variable Dependiente : Infecciones intrahospitalarias.
Variable Independiente : Bacterias patógenas ambientales.
Variable Interviniente : Condiciones de Salud

IV.- Objetivos :

• Aislar las bacterias patógenas ambientales contaminantes de la unidad de
cuidados intensivos
• Determinar las vías de diseminación de los microorganismos infectantes.

• Proponer la aplicación de medidas profilácticas y campañas de educación
sanitaria para disminuir la contaminación bacteriológica ambiental en UCI.

V.- Importancia de la investigación:
Las infecciones intra hospitalarias constituyen un problema muy común y serio en salud
pública ya que aproximadamente el 30% de pacientes admitidos en un hospital desarrollan
una infección, este porcentaje varía de un hospital a otro e incluso dentro del mismo
servicio, se estima que estas infecciones duplican el promedio de la duración de la
hospitalización y son causa de morbilidad importante observándose enfermedades
diarreicas conjuntivitis, infecciones de la vía respiratoria, infecciones de heridas e
infecciones en el tracto urinario, y otras.
Aunque todos los pacientes son susceptibles a este tipo de infecciones existe un grupo de
alto riesgo, son los pacientes atendidos en UCI, que por la gravedad de su estado, son mas
susceptibles a contraer una infección, lo que en ellos representa un grave riesgo de
mortalidad.
La mayoría de infecciones hospitalarias son transmitidos por vía directa donde el
mecanismo más frecuente de contaminación consiste en el contacto personal entre el
portador y el receptor a través de las manos. Existen bacterias relacionadas con infecciones
hospitalarias entre las que se encuentran el genero Pseudomona sp., causante de severas
infecciones en el tracto urinario. El género Staphylococcos, que causan bacteremias
neumonías, infecciones de la piel, infecciones de quemaduras, artritis, osteomelitis,
endocarditis.
Evaluadas las vías de contaminación mas frecuentes se tratará de disminuir la morbilidad
de infecciones intra hospitalarias para lo cual se propondrá una intensiva campaña de
educación sanitaria y la aplicación de medidas profilácticas.

VI.- Material y Método:
6.1.- Método:
Se realizará una observación del ambiente de la unidad de cuidados intensivos para
determinar las zonas de muestreo, y se recolactaran algunos datos como: número de
pacientes, camas y de personal de salud que atiende en los diferentes turnos de UCI.
6.1.1.-Toma y procesamiento de las Muestras (1º dia):
Aire:
Se dejara expuesta una placa por m² de Plate Count durante 1 hora. Se escogió agar Plate
Count debido a que es un agar nutritivo para recuento general y permite crecimiento de
cualquier bacteria debido a que no posee sustancias inhibidoras.
Cumplida la hora, la muestra se guardara a la estufa por 24 horas a 37°C. Luego de las
24h, se hará una resiembra por estría en Agar sangre y agar MacConkey para la posterior
identificación, además se realizará el recuento general de colonias que crecieron en la
placa. El resultado se dará por el uso de la siguiente formula, expresada en UFC/ hora.

UFC/h = Recuento de Germenes x 60
-----------------------------------------
Tiempo de exposición en min.
60=constante

Uniforme, Manos, Antebrazos del personal, Camas y piel del Paciente y Equipos Médicos:

Se utilizará el siguiente material:
• Un tubo estéril de 20 cm que con 10ml de Tween y un hisopo.
El Tween es un viabilizador que permite una mejor toma de muestra.
• Además un tubo de 20 cm (estéril) que con 10 ml de caldo
peptonado.
El hisopo embebido del medio viabilizador será frotado por la superficie a muestrear:
manos antebrazo, uniforme (principalmente pechera y puños) colchones y equipos médicos.
Después de la toma de muestra el hisopo será transferido al tubo con 10ml de caldo
peptonado. El caldo peptonado es un medio de enriquecimiento que permite el desarrollo
de cualquier bacteria exigente que pudiera estar presente, y además se comporta como un
excelente medio de transporte. Los tubos fueron llevados al laboratorio, y se espero una
hora antes de empezar a procesar la muestra, ya que es el tiempo requerido para que la
muestra se disperse completamente en el caldo peptonado.
El hisopo que estaba dentro del caldo peptonado se utilizará para sembrar por estría en
Agar sangre y MacConkey.
Se tomará con una pipeta estéril 0.1ml de caldo peptonado, este volumen se depositará en
una placa vacía, a la que inmediatamente se le agregará agar Plate Count a 37ºC, se
repetirá este procedimiento tomando 1ml de la muestra.
Luego todas las placas serán incubadas a 37º C, para su identificación y recuento después
de 24 h.

Catéteres, Sondas, y Tubos Endotraqueales (T.E.T):

Se realizará en los pacientes se presentaron flebitis o alguna secreción proveniente del lugar
de la aplicación. En todos los casos se les extraerá el catéter o sonda evitando contaminar la
muestra, se cortará la punta con una tijera estéril y se colocará en un tubo o vial estéril con
caldo peptonado e inmediatamente será llevado al laboratorio. En el laboratorio, con la
ayuda de un asa de kolle se tomará muestra de la secreción adherida al catéter, sonda o
T.E.T. y se hará un frotis para hacerle una coloración Gram, además se sembrará por estría
en agar sangre y agar MacConkey, y según la observación del frotis cuando se encuentre:

Cocos gram positivos: se sembrará en manitol y Agar Azida (selectivo para
Staphylococcus y Streptococcos), si en el frotis se observara:
Cocos gram negativos en pares: se sembrará en Agar chocolate. Este ultimo medio se
incubara 24 – 48h en condiciones especiales (atmosfera de CO2, que se consigue
introduciendo una vela prendida dentro de un equipo de metal herméticamente cerrado,
bajo estas condiciones solo desarrolla el genero Neisseria. La especie se determinará por
pruebas de diferenciación bioquímica como en los otros casos.
Cuando se encuentre bacilos en la observación microscópica no se seguirá ningún
procedimiento especial ya que la muestra también se sembrará un agar selectivo, en este
caso MacConkey.

6.1.2.-Identificación: (2º día)

Después de la toma de muestra se incubará las placas a 37º C por 24h se hará la lectura de
estas, se apuntará en la ficha clínica las características de las colonias que crecieron, tanto
en MacConkey y en agar sangre, por ejemplo color de las colonias, forma, aspecto,
hemólisis etc.

Desarrollo Solamente en Agar sangre:
Se procederá a tomar una de las colonias que crecidas y se hará un frotis directo para una
tinción GRAM y observarse en el microscopio:

- Cocos Gram positivos en Cadena: esta observación al microscopio
además de las características de desarrollo en agar sangre como por ejemplo hemólisis,
tamaño y color de la colonia nos indica Streptococos, para confirmar se le hará la prueba de
la Catalasa, ya que todos los Streptococos son Catalasa negativo.
Para informar S. pneumoneae se le hará la prueba de sensibilidad a la optoquina
(Clorhidrato de etilhidroxicupreina, es un derivado de la quinina que produce lisis selectiva
en neumococos).
Se le resembrará en manitol, para descartar S. grupo D “enterococos”. Los enterococos son
microorganismos que crecen en manitol pero que a diferencia de los Staphylococcus, no
hacen virar el medio.
Por ultimo cuando sea negativo a todas las pruebas anteriores, se procederá a analizar su
sensibilidad a la Bacitrina, para separar el grupo A “sensible” y el grupo B “resistente”.
Recalcamos que solo nos interesa aislar estos grupos por que son los únicos patógenos o
asociados con infecciones humanas.

- Cocos Gram positivos en racimo: El desarrollo en agar azida y
colonias doradas en agar sangre, nos indica Staphylococcus, para confirmar se hará la
prueba de la coagulasa, que consiste en colocar una colonia en aproximadamente 2 ml de
plasma e incubar durante 1h a 37ºC . Las colonias coagulasa positivos pertenecen a S.
aureus, y para confirmar se sembrará en Manitol, los coagulasa negativos se informaran
como Sthaphylocuccus sp.
Para confirmar este resultado en algunos casos se realizará la prueba de la catalasa, para
diferenciar Staphylococcus aureus de Staphylococcus sp.

El frotis también nos servirá para descartar la infección por hongos o levaduras

Desarrollo En Agar MacConkey:
Se seleccionará una de las colonias que desarrolló en agar MacConkey y será resembrada
por punción y estría en los medios de diferenciación bioquímica: TSI, LIA, CITRATO y
SIM, según los resultados obtenidos de esta bacteria, y pruebas adicionales como Rx de
Kovacs y Catalasa, se informará el nombre del microorganismo.
Además se le hizo un frotis y una coloración gram para orientar la
elección de los discos en el antibiográma.

Desarrollo en Agar Chocolate:
Indica la presencia de Neisseria, se siguirá el mismo procedimiento de desarrollo en
MacConkey, para la identificación de la especie, pero la batería de tubos será incubada en
condiciones especiales.

6.1.3.- Recuento:

Para el recuento total de colonias, se dividirá la placa en cuatro y se contará solo un
cuadrante multiplicando el resultado por cuatro.

Los Limites para la calificación del ambiente son:

Área Critica 100 UFC/hr
Área Riesgosa ↑50 UFC/hr
Área Regular 26 - 50 UFC/hr
Área Buena 11 - 25 UFC/hr
Área Biolimpia 0 - 10 UFC/hr

6.1.4.- Pruebas De Sensibilidad : (2º día)

Se realizarán pruebas de sensibilidad “en placa”, de todas las colonias sospechosas. Esta
prueba será hecha simultáneamente a la diferenciación bioquímica.

Las placas utilizadas fueron de agar Muller Hinton, y se seleccionarán 10 discos
antibióticos por microorganismo, los discos serán colocados a una distancia uniforme uno
del otro para evitar interferencia entre ellos.
Se utilizará discos antibióticos que fueron elegidos según la observación del frotis. La
elección de los discos será de la siguiente manera:

Cocos gram positivos: Staphylococcus, Streptococos

1.- Fluoroquinolonas (Ciprofloxacino o Norfloxacino)
2.- Penicilinas
3.- Amoxicilina + ac clavulanico o ampicilina + sulbactan
4.- Cefalosporinas de 1º generación (cefalotina o cefradina)
5.- Cefalosporinas de 2º generación (cefaclor o cefuroxima)
6.- Cefalosporinas de 3º generación (ceftazidima o ceftriaxona)
7.- Cloranfenicol, eritromicina o Lincosaminas (clindamicina)
8.- Vancomicina
9.- Rifampicina asociada a vancomicina

Cocos gram negativos: Neisseria, Moraxella

1.- Cefalosporinas de 2º generación (cefaclor o cefuroxima).
2.- Cefalosporinas de 3º generación (ceftazidima o ceftriaxona).

3.- Penicilinas(amoxicilina o dicloxacilina)
5.- Macrolidos (Claritromicina o roxytromicina)
6.- Tetraciclina
7.- Aminoglucósidos (amikacina o gentamicina)

Bacilos : Echerichia coli, Pseudomonas,Proteus

2.- Ampicilina
3.- Amoxicilina + ac clavulanico o ampicilina + sulbactan
4.- Cefalosporinas de 1º generación (cefalotina o cefradina)
5.- Cefalosporinas de 2º generación (cefaclor o cefuroxima)
6.- Cefalosporinas de 3º generación (ceftazidima o ceftriaxona)
7.- Tetraciclina
9.- Carbapenemos (imipenem o meropenem)
10.- Aminoglucósidos (amikacina o gentamicina)

En caso de resistencia a todos los antibióticos usados en el ATB, se elegirá cefalosporinas
de cuarta generación.

6.2.- Materiales e instrumentos :

Equipo:
• Microscopio american optical one – ten
• Incubadora GCA corporation listed 368ª UL
• Refrigeradora
• Mechero Bunzen

Material de Vidrio:
• Tubos de 20 cm
• Laminas porta y cubre objetos
• Placas petri
• Pipetas de 0,1 y 1,0 ml y 100ml

Material Metálico:
• Asa de Kolle
• Gradillas

Material Medico Quirúrgico:
• Guantes descartables
• Mascarillas
• Algodón
• Hisopos
• Suero fisiológico

Material Biológico:
• Plasma

Reactivos:
• Indol
• Aceite de inmersión
• Cristal violeta
• Bicarbonato de Na
• Lugol
• Alcohol acetona
• Fuccina
• Colorante Wayson
• Tiras reactivas para reacción de catalasa.

Medios y Caldos:
• Agar sangre (base difco)
• Agar Plate Count merck
• Agar MacConkey merck
• Agar salmonella shiguella
• Agar manitol sal común rojo de fenol Merck
• Agar citrato merck
• Agar LIA merck
• Agar SIM merck
• Agar TSI merck
• Caldo peptonado merck
• Tween

Discos Antibióticos: (BIODISC / OXOID)
• Amikacina 30 ucg
• Amoxicilina + ac clavulanico 20 / 10 ucg
• Amoxicilina + sulbactan 20 / 10 ucg
• Amoxicilina 25 mcg
• Azitromicina 15 mcg
• Cefaclor 30 ucg
• Cefalexina 30 mcg
• Cefalotina 30 ucg
• Cefepime 30 ucg
• Cefpirome 30 mcg
• Ceftriazona 30 ucg
• Ciprofloxacino 5 ucg
• Clindmicina 2 mcg
• Dicloxacilina 1 mcg
• Eritromicina 15 mcg
• Estreptomicina 10 mcg
• Gentamicina 10 ucg

• Imipenem 10 ug
• Kanamicina 10 mcg
• Meropenem 10 ug
• Nitrofurantoina 300 ucg
• Norfloxacion 10 mcg
• Optoquina 10ug
• Sulfametoxazol + trimetropina 25 mcg
• Tetraciciclina 30 ncg
• Vancomicina 30 ucg

Instrumento de Recolección de Datos
• Ficha de recolección de datos para pacientes
• Ficha de recolección de datos para personal y ambientes

FICHA DE RECOLECCION: Muestras grupo
FECHA:__:__:__
FICHA Nº:______
Tipo de muestra:
Uniforme ( ) Especificar : .........................................
Equipo medico ( ) Especificar : .........................................
Manos ( )
Aire ( )
Otro ( ) Especificar : .........................................

Datos del Personal:

Nombre : _________________________________________
Turno : ____:____ :_____

Uso de medidas profilácticas:

Si ( ) No ( )
Especificar : ......................................
......................................

PARA SER LLENADO EN EL LABORATORIO:

Cultivo: Positivo ( ) Negativo ( )
Observación del
Frotis:..................................................................................................................

..................................................................................................................
Desarrollo en:
Agar sangre ( ) Manitol ( )
MacConkey ( ) Azida ( )
A. Chocolate ( ) Otro: ...................................
P. Count Nº colonias (.........)
Bioquímica:
TSI : ............................ Catalasa : .....................
LIA : ............................ Oxidasa : ....................
Citrato : ........................... Coagulasa: ...................
SIM : ........................... Otro : ....................
Bacteria(s) asilada(s) : ...................................... .................................
Sensibilidad antibiótica:
SENSIBLE INTERMEDIO
RESISTENTE
................................... ................................... .........................
................................... ................................... .........................
................................... ................................... .........................
................................... ................................... .........................
.................................. ................................... .........................
.................................. ................................... .........................

FICHA DE RECOLECCION DE DATOS PARA PACIENTES
FECHA:__:__:__
FICHA Nº:______
Tipo de muestra:
Biológica ( ) Catéter ( ) Otro:..................
Cama ( ) Sonda ( ) ...........................
Datos del Paciente:
Nombre : _________________________________________
Diagnostico : _________________________________________
Histor. clínica Nº: _______
Fecha de Nacim : __:__:__ Edad : ____
Criterios para Cultivo:
Neumonía ( ) Cateterismo ( )
Fiebre ( ) Intubación ( )
Secreción ( ) Otro: .....................................................
Uso de Antibióticos: No ( ) Si ( ) Especificar :.............................
Historia de uso de antibióticos: ..............................
FECHA: ANTIBIÓTICO:
__:__:__ ...........................
__:__:__ ...........................
------------------------------------------------------------------------------------------------------------
PARA SER LLENADO EN EL LABORATORIO:
Cultivo: Positivo ( ) Negativo ( )
Frotis :
..................................................................................................................................................
Desarrollo en: Agar sangre ( ) Manitol ( )
MacConkey ( ) Azida ( )
A. Chocolate ( ) Otro: ...................................
P. Count Nº colonias (........)
Bioquímica: TSI : ............................ Catalasa : .....................
LIA : ............................ Citrato : ...........................
Coagulasa: ........................ Otro : ....................
SIM : .............................
Bacteria(s) asilada(s) : .................................... ...................................... ...............
Sensibilidad antibiótica:
SENSIBLE INTERMEDIO
RESISTENTE
................................... ...................................
...............................
................................... ...................................
...............................
................................... ...................................
...............................
................................... ...................................
...............................
.................................. ...................................
...............................

VII.- Universo de investigación y muestra:
Universo: Ambiente de UCI
Muestra : Hisopados de superficies y aire.

VIII.- Cronograma del Trabajo :
MESES
Etapas 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
Elaboración del X X
proyecto
Organización X X
Muestreo X X X X
Análisis X X X X
Evaluación de los X X X X
Resultados
Elaboración final X X X X
del informe

XI.- Recursos costos y Finaciamientos :

Bienes y Bienes de capital :
Libros, revistas , copias S/. 100.00
Materiales 2500.00
Equipo de Limpieza 150.00
Otros materiales de trabajo 100.00
Servicios :
Transportes 400.00
Otros servicios
Internet 50.00
Teléfono 200.00
Costo del Proyecto : S/. 3 500.00
$. 1008.65
Financiamiento : Hospital Militar Central

PROYECTO DE INVESTIGACIÓN

SENSIBILIDAD DE STAPHYLOCOCCUS AUREUS AISLADO DE MUESTRAS
CLÍNICAS PATOLÓGICAS DE PACIENTES HOSPITALIZADOS EN EL CENTRO
MÉDICO NAVAL ¨C.M.S.T.¨, FRENTE AL PROPÓLEO
(PERIODO MAYO – AGOSTO 2003)

I.- DESCRIPCIÓN DEL PROYECTO:

1. - Observaciones y Antecedentes del Problema

El Propóleo, llamado también Antibiótico natural, es una resina compleja de color
pardo oscuro, soluble en alcohol y éter (8). Constituida por cera de abeja, resinas, aceites
volátiles, polen, etc. (1). Los cuales son recolectados de diferentes plantas como el
álamo, abedul, sauce, pino, roble, etc. (1). y tratados por un grupo especializado de
abejas de la colmena. Las abejas recolectan el Propóleo, con la finalidad de fortalecer y
unir las celdas, como también, para reparar las grietas formadas en el panal y así
proteger a la colmena, evitando la humedad que pueda favorecer el desarrollo de
microorganismos (18). El Propóleo, se ha utilizado desde la antigüedad, en Egipto
como integrante de ungüentos y cremas para embalsamar; los Griegos la conocían como
remedio para las infecciones de la piel, llagas y supuraciones; en el siglo XV utilizado
para el tratamiento de llagas; en América, los Incas lo utilizaban cuando se presentaba
un cuadro de infecciones febriles (4). El Propóleo, presenta una notable acción
antimicrobiana, especialmente en las bacterias Gram (+) y sobre todo activo, frente a
Staphylococcus aureus, debido a la gran concentración de compuestos fenólicos que
tiene (3), (5), (13). Además se le atribuyen las siguientes propiedades: antiinflamatoria,
antiparasitario, antivirales, fungicidas, inmunoestimulante y cicatrizante (20).

2.- Planteamiento del Problema:

En la actualidad se ha podido observar en otros países estudios sobre las propiedades
antibacterianas del Propóleo, estudios que concluyen que, el Staphylococcus aureus in
vitro es sensible al Propóleo (23), (21), (19). En el Perú estudios sobre la actividad
antibacteriana del Propóleo hacia el Staphylococcus aureus es muy escasa, sobre todo en
el ámbito hospitalario. En el presente estudio se quiere determinar sí, el Staphylococcus
aureus aislado de muestras clínicas patológicas de pacientes hospitalizados en el Centro

Médico Naval ¨C.M.S.T.¨ durante el periodo mayo – agosto 2003 es sensible, frente al
Propóleo. Ante las premisas presentadas, surge la siguiente interrogante.

¿Será el Staphylococcus aureus aislado de muestras clínicas patológicas de pacientes
hospitalizados en el Centro Médico Naval ¨C.M.S.T.¨ durante periodo mayo – agosto
2003 sensible, frente al Propóleo?

3.-Enunciado de la Hipótesis:

El Staphylococcus aureus aislado de muestras clínicas patológicas de pacientes
hospitalizados en el Centro Médico Naval ¨C.M.S.T¨. durante el periodo mayo – agosto
2003, es sensible, frente al Propóleo

3.-1.-Variables:

a.- Variable independiente:

- Concentración del Propóleo (1600ug; 800ug; 16ug).
- Especie de Staphylococcus aureus (Microscan).
b.- Variable dependiente:

- Sensibilidad de Staphylococcus aureus.

c.- Variable interviniente:

- Temperatura de Incubación.

4.-Objetivos de la Investigación:

4.1.-Objetivos generales:
- Determinar la sensibilidad de Staphylococcus aureus aislado de muestras clínicas
patológicas de pacientes hospitalizados en el Centro Médico Naval ¨C.M.S.T.¨, frente
al Propóleo durante el periodo mayo – agosto 2003.

4.2.-Objetivos específicos:

- Determinar los intervalos de confianza de la zona de inhibición para cada
concentración de Propóleo y poder determinar la sensibilidad de las cepas de
Staphylococcus aureus.

5.-Importancia de la Investigación:

De cumplirse la hipótesis propuesta, brindaría una base científica para posteriores
estudios sobre la formulación de una especialidad farmacéutica adecuada y comprobar
mediante ensayos clínicos su efectividad.

6.-Metodología:

A. Estrategia de la Investigación:

Revisión Bibliográfica.
Recolección del Propóleo, control de calidad.
Extracción alcohólica del Propóleo.
Preparación de solución stock, diluciones finales de Propóleo (1600, 800, 16ug).
Determinación del tamaño de muestra y del intervalo de inhibición para cada
concentración.
Recolección de las cepas de Staphylococcus aureus en el Centro Médico Naval
(periodo: 01/05/2003 - 31/08/2003)
Preparación del inoculo y de las placas de cultivo
Determinación de la sensibilidad bacteriana frente al Propóleo (Kirby- Bauer).
Interpretación estadística con los datos obtenidos por el método de Kirby-Bauer.

B. Tipos de Análisis:

- Análisis Microbiológico:

Para realizar el Método Kirby-Bauer, se utilizaran discos de difusión frente a cepas de
Staphylococcus aureus, con los cuales se determinará la sensibilidad microbiana.

- Análisis Estadístico:

En la interpretación estadística se utilizará los datos obtenidos por el método de Kirby-
Bauer y se procesará la información mediante el análisis de varianza y la prueba de
scheefe con un nivel de significación de 0,01 y 0,05 y para expresar el número de
cepas sensibles al Propóleo se utilizará el calculo porcentual.

C. Diseño Experimental:

Se realizará lo siguiente:

- Control de calidad del Propóleo:
- Según la Norma Rusa RST-RSFSR-317-77, donde se indica sus características
organolépticas y fisicoquímicas.
- Determinación del tamaño de Muestra:
- Se realizará una muestra piloto utilizando la cepa de Staphylococcus aureus ATCC
29737 frente a 1600ug; 800ug y 16ug. de Propóleo probando 05 veces cada
concentración para poder determinar la desviación estándar poblacional y obtener la
muestra a un nivel de confianza del 95% y 99%.
- Determinación del intervalo de inhibición:
- Del paso anterior se determinará la media y la desviación estándar de cada
concentración para poder determinar el intervalo en milímetros que indique la
sensibilidad del Staphylococcus aureus al Propóleo al 95% y 99% de confiabilidad.
- Método Automatizado:
- Mediante el uso del Microscan, patrón de oro, se utilizará para identificar las cepas de
Staphylococcus aureus (ver anexo).
- Método Kirby-Bauer de discos de difusión:
- Se impregnarán los discos de papel de filtro con cantidades conocidas de la muestra en
estudio (1600ug, 800ug, 16ug). Se colocarán en una superficie de Agar Mueller -
Hilton sembrada previamente con las cepas de Staphylococcus aureus. Luego las
zonas de inhibición serán medidas y evaluadas.

D. Generalidad y nivel de confiabilidad:
Las técnicas Utilizadas son confiables en un 95% y 99%.

7.-Materiales e Instrumentos:

Materiales:

- Material Biológico:

- Propóleo: 20g (resinas).
- Cepas de Staphylococcus aureus ATCC 29737.
- Cepas de Staphylococcus aureus, aislado de muestras
Clínicas Patológicas.
- Materiales de Vidrio:

- Tubos de Ensayo
- Vasos de Precipitado
- Pipetas
- Probetas
- Matraces
- Trampas de Vacío
- Baguetas
- Pera de Bromo
- Beaker
- Micropipeta
- Placas Petri
- Láminas Portaobjeto
- Materiales de Porcelana:

- Embudos Buschner
- Cápsulas
- Materiales de Hule:

- Mangueras
- Tapones

- Materiales de Metal:

- Mechero Bunsen
- Soportes Universales
- Trípodes
- Rejilla de Asbesto
- Pinzas y Aros para la Pera de Bromo

- Asa de Kole
- Gradilla
- Espátula de Metal
- Regla Graduada en Milímetros
- Calibrador Bernier
- Instrumentos:

- Balanza Analítica
- Baño María
- Horno
- Autoclave
- Refrigerador
- Microscopio
- Microscan (Dade)
- Reactivos (Q.P.):

- Etanol 96°
- Magnesio Metálico (granallas)
- Eter Etílico
- Acido Clorhídrico (c)
- Acetato de Plomo
- Permanganato de Potasio
- Oxido de Aluminio
- Bromo/Yodo
- Tiosulfato de Sodio
- Acetona/Cloroformo
- Hidróxido de Sodio
- Yoduro de Potasio
- Solución de Almidón
- Ácido Sulfúrico (c)
- Hidróxido de Potasio
- Cloruro de sodio 9°/00

- Medios de Cultivo:

- Agar de Müeller-Hilton (Merck)
- Caldo Infusión Cerebro Corazón (Merck)
- Agar Base Sangre (Merck)

- Otros:
- Discos de Papel de Filtro Estériles
- Papel de Filtro
- Algodón Hidrófilo
- Mascarilla Descartable
- Papel Kraff
- Encendedor a Gas Propano
- Agua Destilada

8.-Universo de Investigación y Muestra:

Universo: Muestras Clínicas Patológicas de rutina que se analizarán
durante el periodo mayo – agosto 2003 en el laboratorio de
Microbiología del Centro Médico Naval ¨C.M.S.T.¨, de las
cuales se aislaran cepas bacterianas identificadas como

Muestra:

Según item 6c se aplicará:

=
N=(Nivel de Confianza)2(S)2/(Error)2.
N= número de cepas para el estudio

- Criterios de Inclusión:

- Todas las muestras Clínicas Patológicas de pacientes que estuvieron hospitalizados
durante el periodo de estudio y de los cuales se aislaron cepas identificadas como

- La identificación del Staphylococcus aureus se realizará utilizando el Microscan en
el Laboratorio de Microbiología del Centro Médico Naval.

- Criterios de Exclusión:

- Muestras Clínicas Patológicas de pacientes Crónicos, ambulatorios, de emergencia
que no se hospitalizan.
- Muestras Clínicas de Pacientes con previa administración de Antibióticos.

II.- CRONOGRAMA DE TRABAJO:

• Revisión Bibliográfica: 01/11/02 - 31/01/03

• Presentación del Proyecto: 15/03/03

• Control de Calidad Propóleo: 20/03/03 - 31/03/03

• Determinación Tamaño de Muestra,
intervalo de confianza: 01/04/03 - 20/04/03

• Preparación de las Diluciones: 25/04/03 - 30/04/03

• Recolección de las Muestras: 01/05/03 - 31/08/03

• Elaboración del Método
Kirby-Bauer: 01/09/03 - 31/09/03

• Evaluación/Interpretación Estadística
de los Resultados: 01/10/03 - 31/10/03

• Presentación del Informe Final: 10/11/03

III.- RECURSOS, COSTOS Y FINANCIAMIENTO:

A.- RECURSOS HUMANOS
1.- Personal:
a. Personal de Investigadores:
Responsable del Proyecto:
Q.F. HECTOR A. VILCHEZ CÁCEDA
2.-Bienes y bienes de capital:
a. Libros, revistas y normas
b. Equipos científicos
c. Instrumentos y máquinas
d. Instalaciones e infraestructura en: Laboratorio de Investigación de la
Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímica de la U.I.G.V. y
Laboratorio de Microbiología del Centro Médico Naval “C.M.S.T.”
e. Reactivos
f. Equipos y elementos de limpieza.
3.- Servicios:
a. Transportes y viáticos necesarios para la movilidad
b. Computadoras
c. Servicios básicos: luz, agua, etc.

B.- COSTO DEL PROYECTO Y FINANCIACION

1. Costos Globales
a. Personal
b. Bienes y bienes de capital: 600 soles
c. Servicios corrientes y especiales: 200 soles
2. Inversión y Financiamiento
a. Costo total del proyecto: 800 soles
b. Forma de Financiamiento: “AUTOFINANCIADO”


AFECCIONES RESPIRATORIAS PRODUCIDAS POR PLOMO EN NIÑOS DE 6 – 12
AÑOS EN LA PROVINCIA DE LA OROYA, DEPARTAMENTO DE JUNIN.
(PERIODO ABRIL – OCTUBRE 2009)

I.- DESCRIPCIÓN DEL PROYECTO:

1. - Observaciones y Antecedentes del Problema

En la Provincia de La Oroya, un manto gris cubre toda la ciudad. Esta ciudad de la
región central de Junín intimida al visitante: cerros pelados y de color carbón rodean las
viviendas de adobe y ladrillo, mientras un aire denso golpea los ojos y la garganta. La
causa sobresale en el corazón de la ciudad: la chimenea de una planta de fundición de
metales escupe nubarrones negros. Desde hace más de 80 años, un complejo
metalúrgico emite agentes tóxicos, pero el gobierno sigue sin considerar su cierre.

La percepción sensorial es confirmada a IPS por el gerente de Fiscalización Minera del
Ministerio de Energía y Minas, Luis Saldarriaga: 1,5 toneladas de plomo y 810
toneladas de dióxido de azufre emanan diariamente de la chimenea del complejo
metalúrgico administrado desde 1997 por la compañía estadounidense Doe Run. El
gubernamental Consejo Nacional del Ambiente reveló que la fundición es el principal
emisor, causante de 99 por ciento de los gases tóxicos que se respiran en esta ciudad. En
la planta se procesan hasta 20 productos metalúrgicos, entre los que se destacan cobre,
plomo y zinc.

Doe Run tuvo que admitir esta realidad cuando en 2004 realizó un censo de la
contaminación sanguínea en convenio con el Ministerio de Salud. De los 788 niños
examinados, sólo uno no superaba los 10 mcg/dl de sangre.

2.- Planteamiento del Problema:

Estudios médicos, como los efectuados por la no gubernamental CooperAcción en 1999
y 2003 y por la universidad estadounidense Missouri- Saint Louis en 2005, revelan que
la mayoría de los menores entre seis y 12 años de edad superan en promedio los 40
microgramos de plomo por decilitro de sangre (mcg/dl), cuatro veces más de los 10
mcg/dl que establece como límite la Organización Mundial de la Salud.
En la actualidad estos estudios sirvieron para darnos cuenta que el problema aun

persiste. Por esto es necesario definir claramente la relación que existe entre el plomo
como factor influyente en las afecciones respiratorias en niños de La Oroya, por esto
planteamos la siguiente pregunta de investigación:

¿Sera el Plomo factor influyente en las afecciones respiratorias
en niños de 6 – 12 años en la Provincia de La Oroya?

3.-Enunciado de la Hipótesis:

El plomo es un factor influyente en las afecciones respiratorias en niños de 6 – 12 años
en la Provincia de La Oroya.

3.-1.-Variables:

a.- Variable independiente:

- Concentración de Plomo en sangre (10 g/100ml).
- El Plomo como factor influyente en las Afecciones Respiratorias
b.- Variable dependiente:

- Afecciones Respiratorias en Niños de 6 – 12 años.

4.-Objetivos de la Investigación:

4.1.-Objetivos generales:
- Determinar si el Plomo es un factor influyente en las afecciones respiratorias en niños
de 6 – 12 años en la Provincia de La Oroya.

5.-Importancia de la Investigación:

De cumplirse la hipótesis propuesta, serviría para concientizar a las poblaciones y asi
lograr un apoyo del Ministerio de Salud, ayudaría también para tomar medidas contra la
contaminación y los efectos nocivos hacia la salud humana y ambiental.

6.-Metodología:

A. Estrategia de la Investigación:

Revisión Bibliográfica.
Recolección de datos.
Toma de muestra.
Dosaje de la concentración de Plomo en sangre (VN: 10 g/100ml).

B. Tipos de Análisis:

- Análisis Hematológico:

Hemograma completo

- Análisis Físico:

Espirometria

- Análisis Estadístico:

C. Diseño Experimental:

Se realizará lo siguiente:

- Se realizara toma de muestra, en la cual se hará el dosaje la concentración de
Plomo en sangre.
- Se realizara el examen físico, y adicional una espirometria.
- Se le creara una ficha con sus datos, tomando en cuenta edad, peso , talla,
alimentación. Como nuestras muestras son de niños menores de edad, a sus
padres se les realizara otra ficha con datos parecidos, incluyendo información
adicional, para conocer el nivel de información que tienen sobre el tema a
investigar.
- Se elaborara una hoja de resultados de los análisis realizados a los pacientes.
Procedimiento:
- Recolección de datos
- Se realiza el procedimiento para la toma de muestra para obtener suero a los niños
entre 6 – 12 años de La Oroya.
- Se centrifugan las muestras
- Se realizará el procesamiento de las muestras para medir los niveles sericos de Plomo;

- El método de cuantificación de plomo en sangre utilizado por fue el lead care
(método rápido) y, a toda medición mayor de 30 µg/dL, se le realizó la prueba de
absorción atómica para determinar con exactitud el nivel de plomo correspondiente.
Los niños fueron agrupados en dos categorías según sus niveles de plomo en sangre:
no intoxicados (niveles <10 µg/dL) e intoxicados (niveles ≥10 µg/dL).

D. Generalidad y nivel de confiabilidad:
Las técnicas Utilizadas son confiables en un 95%

7.-Materiales e Instrumentos:

Materiales:

- Materiales de Vidrio:

- Tubos de Ensayo
- Vasos de Precipitado
- Pipetas
- Baguetas
- Beaker
- Micropipeta
- Láminas Portaobjeto

- Materiales de Hule:

- Bombilla
- Ligadura

- Materiales de Metal:

- Gradilla
- Instrumentos:

- Balanza Analítica

- Centrifuga
- Autoclave
- Refrigerador
- Microscopio

- Otros:
- Papel de Filtro
- Algodón
- Vacutainer
- Guantes
- Balanza
- Mascarilla Descartable
- Agua Destilada

8.-Universo de Investigación y Muestra:

Universo: Pobladores expuestos al Plomo en la Porvincia de La Oroya.

Muestra:

Según item 6c se aplicará:
=
N=(Nivel de Confianza)2(S)2/(Error)2.
N= número de muestra

- Criterios de Inclusión:

- Muestras de niños de entre 6 – 12 años de la Provincia de La Oroya, hayan vivido
siempre ahí.

- Criterios de Exclusión:

- Niños de entre 6 – 12 años de la Povincia de La Oroya, con discapacidad y/o
prescripcion medica que pueda alterar la muestra.

II.- CRONOGRAMA DE TRABAJO:

Actividad de hasta
1. Recolección de datos bibliográficos, antecedentes 04/04/09 10/04/09
2. Recolección de muestra de sangre. 11/04/09 13/04/09
3. Proceso de obtención de resultados hematologicos. 10/04/09 12/04/09
4. Obtencion de datos mediante fichas. 14/04/09 04/05/09
5. procesamiento de muestra en laboratorio. 06/05/09 17/05/09
6. Procesamiento de datos y análisis 17/05/06 29/05/09
7. Elaboración tesis final 01/06/09 20/06/09
8. Presentación del trabajo final 30/06/09

III.- RECURSOS, COSTOS Y FINANCIAMIENTO:

A.- RECURSOS HUMANOS
1.- Personal:
a. Personal de Investigadores:
Responsable del Proyecto:
Q.F. HECTOR A. VILCHEZ CÁCEDA
2.-Bienes y bienes de capital:
a. Libros, revistas y normas
b. Equipos científicos
c. Instrumentos y máquinas
d. Instalaciones e infraestructura en: Laboratorio de Investigación de la
Universidad Inca Garcilaso de la Vega.
e. Reactivos
f. Equipos y elementos de limpieza.
3.- Servicios:
a. Transportes y viáticos necesarios para la movilidad
b. Computadoras
c. Servicios básicos: luz, agua, etc.

B.- COSTO DEL PROYECTO Y FINANCIACION

1. Costos Globales
a. Personal
b. Bienes y bienes de capital: 500 soles
c. Servicios corrientes y especiales: 200 soles
2. Inversión y Financiamiento
a. Costo total del proyecto: 700 soles
b. Forma de Financiamiento: “AUTOFINANCIADO”

UNIVERSIDAD INCA GARCILASO DE LA VEGA
ESCUELA DE POSGRADO
MAESTRIA EN ADMINSTRACIÓN DE LOS SERVICIOS DE
SALUD


LA GESTIÓN FARMACÉUTICA Y SU INFLUENCIA EN LA
SATISFACCIÓN DE LOS PACIENTES AMBULATORIOS
CRÓNICOS DEL CENTRO MÉDICO NAVAL CIRUJANO MAYOR
SANTIAGO TAVARA LIMA – PERU, 2008

Presentado por:

SILVANA YANIRE SAM ZAVALA

LIMA-PERU
2009

ÍNDICE

I DATOS GENERALES 04

II ESTRUCTURA 05

2.1 Planteamiento del Problema 05

2.1.1 Descripción de la Realidad Problemática 05
2.1.2 Antecedentes Teóricos 07
2.1.2.1 Gestión de la Farmacia de Pacientes
Ambulatorios Crónicos del Centro Médico Naval 07
2.1.2.2 Implementación de la Atención Farmacéutica 08
2.1.2.3 Distribución y Dispensación de Medicamentos 12
2.1.2.4 Satisfacción de los Usuarios 15
2.1.2.5 Taller sobre la Importancia del Tratamiento
Fármaco-Terapéutico 16
2.1.3 Definición del Problema Principal y Específico 19
2.1.3.1 Problema Principal 19
2.1.3.2 Problema Específico 19

2.2 Fundamentos Teóricos de la Investigación 20

2.2.1 Marco Histórico 20
2.2.2 Marco Teórico 22
2.2.2.1 Teoría General de la Administración 22
2.2.2.2 La Empresa y su Organización 23
2.2.2.3 La Administración en la Sociedad Moderna 25
2.2.2.4 Logística Integral 26
2.2.2.5 Administración Estratégica de la Calidad 27
2.2.2.6 Definición de Calidad Total 28
2.2.3 Investigaciones Relativas al Objeto de Estudio 29
2.2.4 Marco Conceptual 34

2.3 Finalidad y Objetivos de la Investigación 37

2

2.3.1 Finalidad e Importancia 37
2.3.2 Objetivo General y Específicos 37
2.3.2.1 Objetivo General 37
2.3.2.2 Objetivo Específico 38

2.4 Hipótesis y Variables 38

2.4.1 Hipótesis Principal y Específica 38
2.4.1.1 Hipótesis Principal 38
2.4.1.2 Hipótesis Específica 38
2.4.2 Variables 39
2.4.2.1 Identificación de Variables 39
2.4.2.2 Operacionalización de las Variables 39

2.5 Metodología 41

2.5.1 Población y Muestra 41
2.5.2 Diseño 42
2.5.3 Técnicas de Recolección de Datos 43
2.5.4 Técnicas para el Procesamiento y Análisis de los Datos 44

III ADMINISTRACIÓN DEL PROYECTO 46

3.1 Programación de Actividades 46
3.2 Presupuesto 46

IV REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 47

V ANEXOS 51

3

UNIVERSIDA INCA GARCILASO DE LA VEGA
FACULTAD DE CIENCIAS FARMACÉUTICAS Y BIOQUÍMICA

CATEDRA DE MICROBIOLOGÍA


SENSIBILIDAD DEL STAPHYLOCOCCUS AUREUS AISLADO DE
MUESTRAS CLÍNICAS PATOLÓGICAS DE PACIENTES DEL HOSPITAL
SANTA ROSA DE PUEBLO LIBRE, FRENTE AL PROPÓLEO (PERIODO
ABRIL – JULIO 2010)

Presentado por:

Mg. Q.F. HÉCTOR ALEXANDER VILCHEZ CÁCEDA

LIMA-PERU
2010

ÍNDICE
I. DATOS GENERALES .........................................................................04
II. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN.......................................................05
2.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA...........................................05
2.1.1 Descripción de la Realidad Problemática...............................05
2.1.2 Antecedentes Teóricos ..........................................................05
2.1.3 Definición del Problema .........................................................06
2.2 FUNDAMENTOS TEÓRICOS DE LA INVESTIGACIÓN ...............07
2.2.1. Marco Histórico................................................................07
2.2.2. Marco Teórico .................................................................09
2.2.2.1. Aspectos del Propóleo...............................................09
A.- Historia ...................................................................09
B.- Sinonimia................................................................11
C.- Origen ....................................................................12
D.- Usos por la Colmena..............................................14
E.- Recolección ............................................................15
F- Métodos de Cosecha...............................................16
G- Composición Química .............................................20
H-Métodos de Extracción.............................................21
I-Propiedades Organolépticas y Físico - Químicas ......27
J-Control de Calidad ....................................................28
K-Propiedades Terapéuticas........................................32
L-Usos e Indicaciones..................................................35
M-Alergia al Propóleo...................................................36
2.2.3 Marco Conceptual ............................................................37
2.3 JUSTIFICACIÓN Y OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN ..........38
2.3.1 Justificación e Importancia de la Investigación ......................38
2.3.2 Objetivos Generales ..............................................................39
2.3.3 Objetivos Específicos.............................................................39

2.4 HIPÓTESIS Y VARIABLES ...........................................................39
2.4.1. Hipótesis General .................................................................39
2.4.2. Hipótesis Específica .............................................................40
2.4.3. Identificación de Variables ...................................................40
2.4.4. Operacionalización de Variables..........................................41
2.5 DESCRIPCIÓN DEL MÉTODO Y DISEÑO....................................41
2.5.1 Tipo y Nivel de Investigación .................................................41
2.5.2 Método y Diseño Específico...................................................42
2.6 UNIVERSO Y TÉCNICAS DE INVESTIGACIÓN...........................44
2.6.1 Universo, Población y Muestra ..............................................44
2.6.2 Técnicas ................................................................................45
2.6.3 Procesamiento y Análisis de Datos ......................................46
III. ADMINISTRACIÓN DEL PROYECTO.................................................47
3.1 Programación .................................................................................47
3.2 Presupuesto ...................................................................................47
3.3 Referencias Bibliográficas..............................................................48
3.4 Anexos ...........................................................................................50

3


ESCUELA DE POST-GRADO

MAESTRIA EN ADMINISTRACION

GESTIÓN ACADÉMICA Y SATISFACCIÓN ESTUDIANTIL: Caso:
FACULTAD DE CIENCIAS FARMACÉUTICAS Y BIOQUÍMICA DE LA

TESIS PRESENTADA POR:

HECTOR RUBEN ALVAREZ FLORES

PARA OPTAR EL GRADO DE MAESTRO EN ADMINISTRACIÓN

LIMA-PERU
2007

INDICE
Pág.
DEDICATORIA 004
AGRADECIMIENTO 005
RESUMEN 006
INTRODUCCIÓN 008
CAPITULO I: EL PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN ……………………………….. 010
1.1 Planteamiento del Problema ……………………………………………………… 010
1.1.1 Descripción de la Realidad Problemática…………………………… 010
1.2 Formulación del Problema …………………………………………………….. 012
1.2.1 Problema Principal …………………………………………………….… 012
1.2.2 Problemas Específicos…………………………………………………. 012
1.3 Objetivos de la Investigación …………………………………………………… 013
1.3.1 Objetivo General ………………………………………………………… 013
1.3.2 Objetivos Específicos …………………………………………………… 013
1.4 Hipótesis de la Investigación …………………………………………………….. 014
1.4.1 Hipótesis General…………………………………………………….. 014
1.4.2 Hipótesis Específicas…………………………………………………. 014
1.5 Variables e Indicadores ………………………………………………………… 015
1.5.1 Variable Independiente ………………………………………………… 015
1.5.2 Variable Dependiente …………………………………………………… 015
1.5.3. Conceptualización de variables ………………………………………. 015
1.5.4 Operacionalización de las Variables …………………………………… 017
1.6 Finalidad ……………………………………………………………………………. 020
1.7 Importancia …………………………………………………………………………. 020
1.8 Limitaciones ………………………………………………………………………… 020
CAPITULO II: FUNDAMENTOS TEÓRICOS DE LA INVESTIGACIÓN ………….. 022
2.1 Referencia Histórica …………………………………………………………….. 022
2.2 Antecedentes de la Investigación …………………………………………… 023
2.3 Teoría General de la Administración …………………………………………. 027
2.4 La Empresa ……………………………………………………………………. 029
2.5 La Administración en la Sociedad Moderna ………………………………… 034
2.6 Teoría General de la Universidad …………………………………………… 036
2.7 La Administración de las Universidades en el Siglo XXI………………… 037
2.8 La Educación Superior y el Desarrollo Universitario ………………………… 040
2.9 Las Facultades Universitarias y su Organización …………………………… 041
2.10 Base institucional de la Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímica … 042
2.10.1. Secretaria Académica 044
2.11 Deserción Universitaria ………………………………………………………… 046
2.12 Deserción Universitaria Argentina …………………………………………… 050
2.13 Satisfacción de los Estudiantes Universitarios …………………………….. 061
2.14 Costo de inversión en el estudiante …………………………………………. 065
2.15 Marco Conceptual …………………………………………………………….. 066
CAPITULO III: METODOLOGÍA EMPLEADA ………………………………………… 075
3.1. Tipo de Investigación …………………………………………………………….. 075
3.2. Diseño de Investigación …………………………………………………………. 075
3.3. Población y Muestra ……………………………………………………………… 076
3.3.1 Población …………………………………………………………………. 076
3.3.2 Muestra ………………………………………………………………….. 077
3.4 Técnicas e Instrumentos de Recolección de Datos ………………………….. 078
3.4.1 Técnica Psicométricas ………………………………………………… 078
3.4.2 Instrumentos ……………………………………………………………. 079
3.4.3 Técnica para el Procesamiento y Análisis de los Datos ……………. 079

CAPITULO IV: PRESENTACIÓN ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE
RESULTADOS …………………………………………………………………………… 082
4.1 Contrastación de la Hipótesis …………………………………………………… 082
4.1.1 Hipótesis General ………………………………………………………. 082
4.1.2 Hipótesis Específica ……………………………………………………. 083
4.2 Alumnos Matriculados y Encuestados en el Año Académico 2005 II-III ……. 084
4.3 Equipos Tecnológicos de Ayuda Audio Visual Año Académico 2005 II-III …. 084
4.3.1 Relación de Pedido y Uso de Retroproyectores ............................... 085
4.3.2 Uso de Microscópios …………………………………………………….. 088
4.3.2.1 Año Académico 2005 .......................................................... 088
4.4 Material, Reactivo e Instrumentos utilizados ................................................. 090
4.4.1 Uso de Materiales, Reactivos e Instrumentos ……………………….. 091
4.4.1.1 Año Académico 2005 ………………………………………… 091
4.5 Datos Obtenidos al Aplicar las Encuestas ................................................ 095
4.6 Datos Obtenidos al Aplicar la Encuesta N° 01-B Satisfacción con la
Administración de Equipos Tecnológicos de Ayuda Audio Visual ………. 098
4.7 Datos obtenidos al aplicar la Encuesta Nº 02-B: Satisfacción con la
administración de Instrumentos, Materiales y Reactivos de Laboratorio ……. 098
4.8 Datos obtenidos al aplicar la Encuesta Nº 03-B: Satisfacción de los
Estudiantes con el desempeño de los docentes ………………………………. 099
4.9 Resultados obtenidos en porcentaje sobre el pedido y uso de los
Retroproyectores en el año 2005 ………………………………………………. 100
4.10 Resultados obtenidos en porcentaje sobre el pedido y uso de los
Microscopios en el año 2005 …………………………………………………… 100
4.11 Resultados obtenidos en porcentaje sobre el pedido y uso de Materiales,
Reactivos e Instrumentos en el año 2005 ……………………………………… 101
4.12 Calificaciones Absolutas obtenidas mediante el uso del cuadro Nª 03
Año Académico 2005 …………………………………………………………….. 104
4.13 Resultados Obtenidos en frecuencia y en porcentaje al aplicar las
Encuestas Año Académico 2005 ………………………………………………. 108
4.14 Cuadros estadísticos para medir la Gestión Académica …………………… 110
4.15 Cuadros estadísticos para medir la Satisfacción ……………………………. 111
4.16 Análisis Estadístico Utilizando la Ji Cuadrado …………………………… 111
4.16.1 Aplicación de la formula de Ji Cuadrada………………………….. 116
4.17 Gráficos estadísticos Año Académico 2005 …………………………………. 119
CAPITULO V: CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ……………………… 123
5.1 Conclusiones …………………………………………………………………… 123
5.1.1 Conclusión General ……………………………………………………… 123
5.1.2 Conclusiones Específicas …………………………………………… 123
5.2 Recomendaciones ……………………………………………………………… 124
Referencia Bibliográfica ……………………………………………………………….. 126
ANEXO 01: (INSTRUMENTOS) ……………………………………………………… 133

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