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Colaboraciones y agradecimientos
Miguel Pocoví [Universidad de Zaragoza - Dpto. Bioquimica]
Fernando Civeira/Estíbaliz Jarauta [HUMS - Medicina Interna/LIM]
Isabel Calvo/Juan Sánchez-Rubio/Mª Cruz Ferrer [HUMS - Cardiología/Hemodinámica]
Pilar Martín-Duque [I+CS/ARAID/HUMS - UIT]
Ana Isabel Gracia/Carlos Gómez-Moreno [INA/Universidad de Zaragoza]
Mª Ángeles Navarro [I+CS/HUMS - UIT]
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José Martínez [Hospital Sant Pau - ICCC-CSIC]
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María Royo [UATI Microscopía e Imagen-I+CS]
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                   PS09/00355                       PIPAMER09/08
Gracias




Noelia Fandos   Sonia Santander   Irene Rubio   Sarah Fiddyment

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  • 4. Origen de las CEPCs Médula ósea Población heterogénea y escasa (0,01-0,0001% de las células mononucleares
  • 5. CEPCs en el modelo de trabajo actual Permite una perspectiva regenerativa basada en la intervención sobre las CEPCs
  • 6. Actividad de células progenitoras Mobilización Migración Proliferación Adhesión Integración
  • 8. CEPCs in vitro Hirschi, K. K. et al. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2008;28:1584-1595
  • 10. Marcadores de CEPCs Azul: DAPI / Verde: Lectina Ulex europaeus / Rojo: AcLDL
  • 11. Marcadores de CEPCs CD3 CD14 CD31 CD34 CD45 CD105 CD117 CD133 CD144 CD146 CXCR4 KDR
  • 12. Funcionalidad de CEPCs in vitro HUVEC CEPCs HUVEC/CEPCs Sonda Fluorescente Sonda Fluorescente Superposición Verde Roja Incorporación a monocapas de células HUVEC
  • 13. Funcionalidad de CEPCs in vitro HUVEC/CEPCs HUVEC CEPCs HUVEC/CEPCs Campo Claro SFV SFV/SFR Superposición Formación de estructuras tubulares
  • 14. Funcionalidad de CEPCs in vivo Modelo de isquemia femoral unilateral y seguimiento de la perfusión del tejido mediante imagen basada en laser-doppler Próximamente disponible en UATI de Valoración Funcional
  • 15. Uso de nanopartículas Ferritina Proteína multimérica (450 kDa) 24 subunidades de 19-21 kDa 12 nm de diámetro Almacenamiento fisiológico de Fe Objetivo Incorporar a nanopartículas de ferritina LPGFPC péptidos que promuevan el anclaje de CEPCs para su aplicación en tejidos GTFALRGDNGQ isquémicos o como adyuvantes en esquemas de terapia celular
  • 16. CEPCs e hipoxia 140 120 100 80 % 60 40 20 0 Normoxia 1 Hipoxia Efecto en proliferación celular
  • 17. CEPCs e hipoxia CD31 CD105 CD144 CD146 VEGF-R2 CD34 CD117 CD133 CXCR4 Marcadores de superficie Rojo: hipoxia / Azul: Normoxia
  • 18. Colaboraciones y agradecimientos Miguel Pocoví [Universidad de Zaragoza - Dpto. Bioquimica] Fernando Civeira/Estíbaliz Jarauta [HUMS - Medicina Interna/LIM] Isabel Calvo/Juan Sánchez-Rubio/Mª Cruz Ferrer [HUMS - Cardiología/Hemodinámica] Pilar Martín-Duque [I+CS/ARAID/HUMS - UIT] Ana Isabel Gracia/Carlos Gómez-Moreno [INA/Universidad de Zaragoza] Mª Ángeles Navarro [I+CS/HUMS - UIT] Jesús Osada [Universidad de Zaragoza - Dpto. Bioquímica] José Martínez [Hospital Sant Pau - ICCC-CSIC] Iñaki Ochoa [CIBER-BBN - Universidad de Zaragoza/GEMM] Pedro Moreo/Víctor Alastrué [EBERS Medical Technology] María Royo [UATI Microscopía e Imagen-I+CS] Javier Godino/Mª Carmen Carreras [UATI Citometría y Separación Celular-I+CS] Eduardo Romanos [UATI Valoración Funcional-I+CS] PS09/00355 PIPAMER09/08
  • 19. Gracias Noelia Fandos Sonia Santander Irene Rubio Sarah Fiddyment